Современные тренды в поиске маркеров рецептивности эндометрия – от отдельных параметров к комплексному подходу

Довгань А.А., Зиганшина М.М., Долгушина Н.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия
Ключевым этапом в достижении желанной беременности является имплантация – процесс, отражающий взаимодействие бластоцисты и эндометрия. Изучению рецептивности эндометрия посвящено множество исследований последних десятилетий, однако универсальный маркер, позволяющий прогнозировать успешность имплантации, до сих пор не установлен. Анализ имеющихся литературных данных позволяет заключить, что ни один из существующих подходов, основанных на использовании ультразвуковых методов исследования, включая оценку толщины эндометрия, эндометриального паттерна, объема и особенностей васкуляризации эндометрия, не предоставляет возможность в полной мере оценить рецептивную способность эндометрия. Молекулярные исследования рецептивности эндометрия также нельзя признать высокоэффективными на сегодняшний момент. В связи с этим можно отметить важность отказа от поиска единственного маркера рецептивности, отдав предпочтение формированию диагностических панелей, сочетающих в себе наиболее эффективные маркеры, комплексный анализ которых будет обладать более высокой диагностической ценностью. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, опубликованных за последние 10 лет по базам данных Scopus, Web of Science, MedLine, The Cochrane Library, EMBASE, Global Health, CyberLeninka, Pubmed.
Заключение. Рассматривая комплекс показателей, учитывающих толщину, объем, эхо-структуру, кровоток, морфологические особенности и молекулярные маркеры, характеризующие эти параметры в эндометрии, по-видимому, можно приблизиться к пониманию сложных, многокомпонентных процессов в рецептивном эндометрии.

Ключевые слова

бесплодие
вспомогательные репродуктивные технологии (ВРТ)
имплантация эмбриона
рецептивность эндометрия
ERA
гликаны

Количество проводимых программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) неуклонно растет. По данным ежегодного отчета Российской Ассоциации Репродукции Человека (РАРЧ), в 2018 г. на территории Российской Федерации был проведен миллионный зарегистрированный цикл ВРТ. Тем не менее эффективность программ ВРТ составляет в среднем 30–40% и остается неизменной на протяжении многих лет [1]. Ключевым этапом в достижении желанной беременности является имплантация – процесс, отражающий взаимодействие бластоцисты и эндометрия. Успешность имплантации зависит от двух факторов: имплантационного потенциала эмбриона и рецептивной способности эндометрия. Но даже при переносе эуплоидных эмбрионов после преимплантационного генетического тестирования на анеуплоидии частота наступления беременности (ЧНБ) не во многом превосходит ЧНБ в циклах с переносом эмбрионов (ПЭ), чей имплантационный потенциал был оценен только морфологически [1]. Таким образом, возникает необходимость поиска маркеров рецептивности эндометрия, использование которых поможет прогнозировать успешность имплантации. В настоящее время с целью оценки состояния эндометрия применяются как неинвазивные, так и инвазивные диагностические процедуры.

Неинвазивные методы диагностики рецепторного статуса эндометрия

В клинической практике широко используется метод ультразвукового исследования (УЗИ) структурных изменений эндометрия в программах ВРТ. При помощи ультразвуковой диагностики можно оценить толщину, объем, эхо-структуру (эндометриальный паттерн) и особенности кровотока эндометрия.

Толщина эндометрия

Измерение толщины эндометрия с помощью УЗИ производится вдоль продольной оси матки от передней к задней стенке миометрия. Этот технически доступный и простой метод позволяет оценивать динамику прироста толщины эндометрия на протяжении менструального цикла. Несмотря на широкое использование данного метода, единого мнения о целесообразности использования показателя толщины эндометрия как критерия оценки рецептивности до сих пор не существует. Zhao J. et al. оценивали толщину эндометрия у пациенток, проходящих лечение в программе экстракорпорального оплодотворения (ЭКО), в начале стимуляции гонадотропинами и в день введения триггера овуляции. У пациенток, достигших беременности, динамика прироста толщины эндометрия была выше по сравнению с пациентками, у которых беременность не наступила [2]. Имеются данные об успешном использовании показателя толщины эндометрия с целью прогноза исходов программ переноса размороженных эмбрионов [3]. Другая точка зрения основана на обосновании отсутствия экономической выгоды и клинической значимости проведения дальнейшего ультразвукового мониторинга динамики прироста толщины эндометрия после достижения уровня 5 мм и более. Анализ циклов ВРТ с использованием донорских ооцитов не выявил значимых различий в ЧНБ в группах обследуемых женщин с разной толщиной эндометрия [4]. С недостаточным приростом толщины эндометрия в динамике менструального цикла связывают формирование так называемого «тонкого» эндометрия, критерии которого остаются дискуссионными. В большинстве исследований, где оценивалась ЧНБ в зависимости от толщины эндометрия, сообщается о рассчитанном пороговом уровне 7 мм [5, 6]. Однако имеются сообщения о других критериях этого показателя: 8 мм [7], 9 мм [8] и 10 мм [9]. Анализ ЧНБ на ПЭ в исследовании Liu K.E. et al. выявил прямую линейную зависимость в снижении вероятности наступления беременности с каждым миллиметром эндометрия ниже показателей 7 мм в криоциклах и 8 мм при переносе нативных эмбрионов [10]. Casper R.F. и Haas J. et al. представили данные относительно компактизации эндометрия, согласно которым динамическая оценка изменения толщины эндометрия от конца пролиферативной фазы до ПЭ для оценки его рецептивности является более информативной по сравнению с измерением толщины эндометрия в отдельно взятых временных точках. Уменьшение толщины эндометрия в естественной или сформированной циклической гормональной терапией лютеиновой фазе происходит за счет уплотнения эндометрия в результате секреторных изменений, вызванных прогестероном. Среди пациенток, проходивших лечение в программе переноса размороженного эмбриона на фоне циклической гормональной терапии, ЧНБ была значительно выше в группе, где отмечалась компактизация эндометрия после введения препаратов прогестерона, по сравнению с группой пациенток, в которой толщина эндометрия не изменялась или увеличивалась [11, 12]. Однако, несмотря на значительное число отдельных сообщений об эффективности использования показателя толщины эндометрия, метаанализ, проведенный Craciunas L. et al., не выявил клинически значимых различий в толщине эндометрия между пациентками, достигшими и не достигшими беременности после программ ВРТ [13].

Эндометриальный паттерн

Оценка эхо-структуры эндометрия, или так назывемого эндометриального паттерна, в программах ВРТ также широко используется в клинической практике. Предполагается, что наличие трехлинейной структуры эндометрия по данным УЗИ в день введения триггера овуляции в программах переноса нативных эмбрионов [2, 14] или в 1-й день приема препаратов прогестерона в программах переноса размороженных эмбрионов [15] значимо для прогнозирования наступления беременности. Однако результаты исследований остаются противоречивыми, и некоторыми авторами ценность данного параметра как маркера рецептивности подвергается сомнению [16, 17].

Объем эндометрия

Для оценки рецептивности эндометрия, по данным ряда исследований, могут выступать показатели объема эндометрия. Измерение объема эндометрия производится посредством техники трехмерного сканирования, в частности использования компьютерной программы VOCAL (Virtual Organ Computer Aided AnaLysis). В исследовании Mayer R.B. et al. объем эндометрия измерялся за 30 минут до переноса размороженных эмбрионов. У пациенток, достигших беременности, объем эндометрия был значимо больше, чем у пациенток, не достигших беременности [18]. Однако измерение объема эндометрия в день назначения препаратов прогестерона в криоциклах не показало прогностической ценности [19]. Противоречивые данные относительно диагностической значимости объема эндометрия как маркера рецептивности были получены в программах переноса нативных эмбрионов. Объем эндометрия, измеренный в день назначения триггера овуляции в исследовании Merce L.T. et al., был значительно выше в группе пациенток, достигших беременности [20]. В исследовании Zhang T. et al. объем эндометрия в день введения триггера, напротив, не различался [17]. Не было выявлено значимых различий в показателях объема эндометрия в день ПЭ между пациентками, достигшими и не достигшими впоследствии беременности [21]. Отсутствие различий в объеме эндометрия в день введения триггера овуляции и в день ПЭ выявлено также по данным метаанализа [13]. Таким образом, использование показателей объема эндометрия, полученных при трехмерном УЗИ, как маркеров эндометриальной рецептивности в настоящее время признано малоэффективным.

Васкуляризация эндометрия

Общеизвестно, что кровоснабжение эндометрия непосредственно влияет на пролиферацию эндометрия и тесно связано с его толщиной и рецептивностью [22]. Измерение эндометриального и субэндометриального кровотока с использованием трехмерного УЗИ в сочетании с энергетическим допплером и программой VOCAL позволяет определить такие показатели, как индекс васкуляризации, индекс кровотока и васкуляризационно-потоковый индекс. В исследовании Wang L. et al. отмечается высокая прогностическая ценность показателей васкуляризации на результаты программ переноса нативных эмбрионов [23]. Схожие данные были получены при оценке кровотока в программах переноса размороженных эмбрионов [19]. Тем не менее в исследовании Zhang T. et al. показатели васкуляризации у пациенток в программе переноса нативных эмбрионов в день введения триггера не различались [17], так же, как и в криоциклах в работе Mayer R.B. et al. [18]. В настоящее время изучается перспектива измерения показателей кровотока эндометрия при помощи пятимерного УЗИ. В пилотном исследовании Elsokkary M. et al. оценивался кровоток пациенток в программах переноса нативных эмбрионов в день введения триггера. Наблюдалась прямая зависимость между индексом васкуляризации, индексом кровотока, васкуляризационно-потоковым индексом и наступлением беременности [16].

Учитывая противоречивые данные о прогностической ценности ультразвуковых маркеров рецептивности эндометрия в программах ВРТ, стоит заключить, что, несмотря на ряд преимуществ: неинвазивность исследования, возможность использования в цикле, планируемом для ПЭ, возможность наблюдения трансформации всех параметров эндометрия в динамике, эффективность использования полученных данных в качестве надежных маркеров рецептивности не доказана. Отмена ПЭ в случаях, когда вероятность наступления беременности минимальная (критически «тонкий» эндометрий, минимальный объем, неудовлетворительные показатели допплерометрии), несомненно, является важным аспектом. Но отсутствие наступления беременности у пациенток в программах ВРТ с удовлетворительными ультразвуковыми параметрами эндометрия мотивирует на поиск маркеров успешной имплантации с высокой прогностической ценностью.

Инвазивные методы диагностики рецепторного статуса эндометрия

Аспирационная биопсия эндометрия является малоинвазивной процедурой, не требующей наркоза. Информативность данной методики не уступает диагностическому выскабливанию полости матки [24, 25]. Эндометрий, полученный в ходе данной процедуры, может быть исследован множеством предлагаемых на сегодня методов: гистологическим, иммуногистохимическим, молекулярно-генетическим методами исследования.

Гистологическое датирование эндометрия

В 1950 г. Noyes R.W. et al. на основании гистологического анализа эндометрия описали специфические морфологические и функциональные особенности, характерные для ткани эндометрия на протяжении нормального менструального цикла [26]. Долгие годы метод гистологического датирования эндометрия являлся золотым стандартом диагностики рецептивного статуса. Однако исследования последних лет свидетельствуют о недостаточной предиктивности этого метода и обозначают необходимость поиска новых подходов к датированию и оценке рецептивности для рутинной практики [27, 28].

Пиноподии. Одним из основных структурных изменений эндометрия во время лютеиновой фазы является образование апикальных выпячиваний на эпителиальных клетках эндометрия, называемых пиноподиями. Эти куполообразные структуры образуются под действием прогестерона и регрессируют при стимуляции эстрогенами. Изначально предполагалось, что пиноподии формируются в период «окна имплантации», поэтому рассматривалась их роль в качестве потенциальных маркеров восприимчивости эндометрия [29]. Однако пиноподии были выявлены за пределами «окна имплантации» [30], что поставило под сомнение возможность их использования для прогнозирования имплантации. По данным различных авторов, пиноподии экспрессируют на своей поверхности молекулы адгезии, в том числе интегрины [31], а также лейкемия-ингибирующий фактор [32] и различные гликаны [33], которые непосредственно вовлечены во взаимодействие бластоцисты и эндометрия. По результатам различных исследований, использование пиноподий как маркера рецептивности может улучшить исходы программ ВРТ [34, 35]. В ходе исследования Jin X.Y. et al. обнаружили значительную разницу в количестве пиноподий, проводя подсчет в разных полях зрения одного и того же образца. Предполагается, что для получения воспроизводимых результатов необходимо подсчитать не менее 60 полей зрения [34]. На сегодняшний день существуют работы, в которых подсчет количества пиноподий осуществлялся с помощью компьютерной программы. Данный подход обеспечивает более объективный анализ, исключив при этом человеческий фактор [36].

Рецепторы гормонов

В течение нормального менструального цикла содержание в эндометрии рецепторов к эстрогенам (ER) и прогестерону (PR) претерпевает закономерные колебания, синхронные с изменением концентрации эстрадиола и прогестерона в периферической крови. Под влиянием нарастающей концентрации эстрадиола количество ER и PR постепенно увеличивается и достигает своего максимума в периовуляторный период. В лютеиновую фазу цикла персистирующее влияние прогестерона вызывает децидуализацию эндометрия и наблюдается постепенное снижение экспрессии ER и PR [37, 38]. Нормальная циклическая экспрессия рецепторов играет важную роль в восприимчивости эндометрия и может служить маркером рецептивности успешной имплантации эмбриона в программах ВРТ. В исследовании Dixit S.G. et al. оценивалась экспрессия ER и PR в эндометрии у пациенток с бесплодием и здоровых пациенток. Уровень экспрессии рецепторов был значительно ниже у пациенток с бесплодием [39]. По результатам исследования Шуршалиной А.В. и соавт. выявлено, что важным маркером рецептивности эндометрия является соотношение PR и ERα в среднюю секреторную фазу менструального цикла; при этом определяющим прогностическим фактором является соотношение PR/ERα в строме эндометрия. Наиболее благоприятный прогноз, свидетельствующий о высокой вероятности имплантации, соответствует соотношению PR/ERα в интервале от 2 до 3 [40]. Однако имеются и альтернативные исследования, свидетельствующие об отсутствии клинической значимости определения PR, ERα и соотношения PR/ERα при бесплодии, в частности при «тонком» эндометрии [41].

Транскриптомные маркеры эндометриальной рецептивности

В соответствии с современной тенденцией персонализации медицинской помощи новым этапом в изучении рецептивности эндометрия стала разработка инновационной методики, основанной на анализе экспрессии 238 генов в биоптатах эндометрия [42]. Предварительно подобранная панель генов, представленных на едином чипе, позволяет оценить восприимчивость эндометрия к бластоцисте в «окно имплантации». Аспирационная биопсия ткани эндометрия с последующим биоинформационным анализом экспрессии генов дифференцирует эндометрий на пререцептивный, рецептивный и пострецептивный. Данный метод получил название Endometrial Receptivity Array (ERA, эррей эндометриальной рецептивности). Авторы считают, что использование ERA позволит определить точное время «окна имплантации» и выполнить персонализированный ПЭ, тем самым повышая шансы на наступление беременности [42]. Также утверждается, что точность ERA превосходит обычное гистологическое датирование эндометрия, а вариабельность результата от цикла к циклу минимальна [43]. В последние несколько лет эффективность использования ERA изучалась многими исследователями. Ruiz-Alonso M. et al. утверждают, что у пациенток с повторными неудачами имплантации по результатам ERA смещение «окна имплантации» наблюдается чаще, чем у пациенток без повторных неудач имплантации в анамнезе [44]. Аналогичные выводы были сделаны в исследовании Mahajan N. et al. [45]. Tan J. et al. установили, что ЧНБ у пациенток с неудачами имплантации выше после выполненного персонализированного ПЭ [46]. В исследовании Patel A.J. et al. применение ERA также повысило частоту наступления беременности у пациенток с повторными неудачами имплантации в анамнезе [47]. Hashimoto T. et al. рекомендуют использовать ERA для поиска персонального «окна имплантации» у пациенток, имеющих в анамнезе более трех попыток ПЭ хорошего качества, не завершившихся наступлением беременности [48]. Однако при оценке эффективности персонализированного ПЭ в группах пациенток, где эмбриональный фактор неудач имплантации был исключен, результаты были противоположными. Применение ERA не увеличило ЧНБ у пациенток с переносом эуплоидного эмбриона после преимплантационного генетического тестирования на анеуплоидии, а также у пациенток, проходящих лечение в программах ВРТ с использованием донорских ооцитов [49]. У пациенток с хорошим прогнозом поиск персонального «окна имплантации» также не увеличил ЧНБ [50]. Учитывая высокую стоимость ERA и инвазивность процедуры забора эндометрия, для внедрения методики в широкую клиническую практику требуются дальнейшие исследования.

Гликаны гликокаликса и внеклеточного матрикса

Одним из многообещающих подходов к оценке рецептивности эндометрия является изучение состава гликокаликса эндометрия, поскольку именно гликаны гликокаликса составляют молекулярную границу между клетками и отвечают за межклеточные контакты, прикрепление, миграцию и инвазию клеток [51]. Исследования показали, что гликаны выступают в качестве функциональных групп, которые опосредуют межклеточные контакты при имплантации и плацентации путем взаимодействия с эндогенными лектинами (L-селектином), экспрессированными на бластоцисте [52]. Цикл работ, посвященный изучению экспрессии молекул адгезии в нормальном эндометрии, свидетельствует о том, что перспективными маркерами рецептивности у человека являются высокогликозилированный муцин MUC-1 и рецептор гиалуронана CD 44 [53]. Идентифицированы гликаны в составе MUC-1, изучено их связывание с эндогенными галектинами человека и показаны различия гликоформ MUC-1 у фертильных женщин и пациенток с бесплодием [54]. Также было установлено, что L-селектин и его углеводные лиганды участвуют в адгезии бластоцисты к эндометрию в месте имплантации. Р- и Е-селектины включаются в процессы иммунного распознавания между материнскими и фетальными тканями. Особая роль отводится углеводному лиганду – эпитопу MECA-79 (SO3→6GlcNAc), поскольку его экспрессия выявлена в области пиноподий в среднюю стадию секреции [33]. Высокая экспрессия углеводных лигандов L-селектина в секреторном эндометрии, выявляемая иммуногистохимическим окрашиванием антителами к эпитопу углеводной природы MECA-79, ассоциирована с успешными попытками переноса нативных эмбрионов [55]. Уровень экспрессии МЕСА-79 в эпителии у фертильных женщин был значимо выше, чем у бесплодных [56]. У пациенток с повторными неудачами имплантации экспрессия MECA-79 может являться предиктором рецептивности эндометрия [57].

Заключение

Учитывая противоречивость полученных данных относительно оценки рецептивности эндометрия неинвазивными методами, можно заключить, что ни один из существующих подходов, основанных на использовании УЗИ, не позволяет в полной мере оценить рецептивную способность эндометрия. Молекулярные исследования рецептивности эндометрия также нельзя признать высокоэффективными на сегодняшний момент. Для повышения эффективности программ ВРТ в дополнение к инструментальным исследованиям необходим поиск универсального молекулярного маркера, основываясь на значении которого можно будет предсказать успешность имплантации. Однако вопрос: «существует ли универсальный маркер рецептивности?» – остается дискуссионным. Очевидно, что акцент исследований должен сместиться от единичных маркеров в область сигнатур – сочетаний наиболее эффективных маркеров, имеющих высокие показатели диагностической ценности. В этой связи наибольший интерес представляет использование эрреев – различных панелей, по результатам тестирования которых можно выявить наиболее эффективные маркеры. Такие эрреи должны обязательно включать молекулы внеклеточного матрикса, гликокаликса клетки, молекулы адгезии, а также ферменты их биосинтеза. Рассматривая комплекс показателей, учитывающих толщину, объем, эхо-структуру, кровоток, морфологические особенности и молекулярные маркеры, характеризующие эти параметры в эндометрии, по-видимому, можно приблизиться к пониманию сложных, многокомпонентных процессов в рецептивном эндометрии.

Список литературы

  1. Российская Ассоциация Репродукции Человека. Регистр ВРТ. Отчет за 2018 год. 2020.
  2. Zhao J., Zhang Q., Wang Y., Li Y. Endometrial pattern, thickness and growth in predicting pregnancy outcome following 3319 IVF cycle. Reprod. Biomed. Online. 2014; 29(3): 291-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2014.05.011.
  3. Shaodi Z., Qiuyuan L., Yisha Y., Cuilian Z. Analysis of endometrial thickness threshold and optimal thickness interval in cleavage embryo hormone replacement freeze-thawed embryo transfer (HRT-FET). Gynecol. Endocrinol. 2020; 36(11): 1-5. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2020.1742686.
  4. Arce H., Velilla E., López-Teijón M. Association between endometrial thickness in oocyte donation cycles and pregnancy success rates. Reprod. Fertil. Dev. 2016; 28(9): 1288-94. https://dx.doi.org/10.1071/RD14459.
  5. Nishihara S., Fukuda J., Ezoe K., Endo M., Nakagawa Y., Yamadera R. et al. Does the endometrial thickness on the day of the trigger affect the pregnancy outcomes after fresh cleaved embryo transfer in the clomiphene citrate-based minimal stimulation cycle? Reprod. Med. Biol. 2020; 19(2): 151-7. https://dx.doi.org/10.1002/rmb2.12315.
  6. Richter K.S., Bugge K.R., Bromer J.G., Levy M.J. Relationship between endometrial thickness and embryo implantation, based on 1,294 cycles of in vitro fertilization with transfer of two blastocyst-stage embryos. Fertil. Steril. 2007; 87(1): 53-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.05.064.
  7. Chan J.M., Sukumar A.I., Ramalingam M., Ranbir Singh S.S., Abdullah M.F. The impact of endometrial thickness (EMT) on the day of human chorionic gonadotropin (hCG) administration on pregnancy outcomes: a 5-year retrospective cohort analysis in Malaysia. Fertil. Res. Pract. 2018; 4(1): 1-9. https://dx.doi.org/10.1186/s40738-018-0050-8.
  8. Pan Y., Hao G., Wang Q., Liu H., Wang Z., Jiang Q. et al. Major factors affecting the live birth rate after frozen embryo transfer among young women. Front. Med. 2020; 7: 94. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2020.00094.
  9. Gallos I.D., Khairy M., Chu J., Rajkhowa M., Tobias A., Campbell A. et al. Optimal endometrial thickness to maximize live births and minimize pregnancy losses: analysis of 25,767 fresh embryo transfers. Reprod. Biomed. Online. 2018; 37(5): 542-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2018.08.025.
  10. Liu K.E., Hartman M., Hartman A., Luo Z.C., Mahutte N. The impact of a thin endometrial lining on fresh and frozen-thaw IVF outcomes: an analysis of over 40 000 embryo transfers. Hum. Reprod. 2018; 33(10): 1883-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dey281.
  11. Haas J., Smith R., Zilberberg E., Nayot D., Meriano J., Barzilay E. et al. Endometrial compaction (decreased thickness) in response to progesterone results in optimal pregnancy outcome in frozen-thawed embryo transfers. Fertil. Steril. 2019; 112(3): 503-9. e1. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.05.001.
  12. Casper R.F. Frozen embryo transfer: evidence-based markers for successful endometrial preparation. Fertil. Steril. 2020; 113(2): 248-51. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.12.008.
  13. Craciunas L., Gallos I., Chu J., Bourne T., Quenby S., Brosens J.J. et al. Conventional and modern markers of endometrial receptivity: a systematic review and meta-analysis. Hum. Reprod. Update. 2019; 25(2): 202-23. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmy044.
  14. Zhao J., Zhang Q., Li Y. The effect of endometrial thickness and pattern measured by ultrasonography on pregnancy outcomes during IVF-ET cycles. Reprod. Biol. Endocrinol. 2012; 10: 100. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-10-100.
  15. Yang W., Zhang T., Li Z., Ren X., Huang B., Zhu G. et al. Combined analysis of endometrial thickness and pattern in predicting clinical outcomes of frozen embryo transfer cycles with morphological good-quality blastocyst. Medicine (United States). 2018; 97(2): e9577. https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000009577.
  16. Elsokkary M., Eldin A.B., Abdelhafez M., Rateb A., Samy M., Eldorf A. et al. The reproducibility of the novel utilization of five-dimensional ultrasound and power Doppler in the prediction of endometrial receptivity in intracytoplasmic sperm-injected women: a pilot prospective clinical study. Arch. Gynecol. Obstet. 2019; 299(2): 551-8. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-018-5001-4.
  17. Zhang T., He Y., Wang Y., Zhu Q., Yang J., Xiaoming X. et al. The role of three-dimensional power Doppler ultrasound parameters measured on hCG day in the prediction of pregnancy during in vitro fertilization treatment. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2016; 203: 66-71. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2016.05.016.
  18. Mayer R.B., Ebner T., Weiss C., Allerstorfer C., Altmann R., Oppelt P. et al. The role of endometrial volume and endometrial and subendometrial vascularization parameters in a frozen embryo transfer cycle. Reprod. Sci. 2019; 26(7): 1013-8. https://dx.doi.org/10.1177/1933719118804421.
  19. Mishra V.V., Agarwal R., Sharma U., Aggarwal R., Choudhary S., Bandwal P. Endometrial and subendometrial vascularity by three-dimensional (3D) power Doppler and its correlation with pregnancy outcome in frozen embryo transfer (FET) cycles. J. Obstet. Gynecol. India. 2016; 66(Suppl. 1): 521-7. https://dx.doi.org/10.1007/s13224-016-0871-5.
  20. Mercé L.T., Barco M.J., Bau S., Troyano J. Are endometrial parameters by three-dimensional ultrasound and power Doppler angiography related to in vitro fertilization/embryo transfer outcome? Fertil. Steril. 2008; 89(1): 111-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.02.029.
  21. Kim A., Jung H., Choi W.J., Hong S.N., Kim H.Y. Detection of endometrial and subendometrial vasculature on the day of embryo transfer and prediction of pregnancy during fresh invitro fertilization cycles. Taiwan. J. Obstet. Gynecol. 2014; 53(3): 360-5. https://dx.doi.org/10.1016/j.tjog.2013.05.007.
  22. Raine-Fenning N.J., Campbell B.K., Kendall N.R., Clewes J.S., Jonhson I.R. Quantifying the changes in endometrial vascularity throughout the normal menstrual cycle with three-dimensional power Doppler angiography. Hum. Reprod. 2004; 19(2): 330-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deh056.
  23. Wang L., Lv S., Mao W., Pei M., Yang X. Assessment of endometrial receptivity during implantation window in women with unexplained infertility. Gynecol. Endocrinol. 2020; 36(10): 971-21. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2020.1727433.
  24. Piriyev E., Mellin W., Römer T. Comparison of aspirating pipettes and hysteroscopy with curettage. Arch. Gynecol. Obstet. 2020; 301(6): 1485-92. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-020-05551-0.
  25. Utida G.M., Kulak J. Jr. Hysteroscopic and aspiration biopsies in the histologic evaluation of the endometrium, a comparative study. Medicine (United States). 2019; 98(40): e17183. https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000017183.
  26. Noyes R.W., Hertig A.T., Rock J. Dating the endometrial biopsy. Fertil. Steril. 2019; 112(4): e93-115. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.08.079.
  27. Murray M.J., Meyer W.R., Zaino R.J., Lessey B.A., Novotny D.B., Ireland K. et al. A critical analysis of the accuracy, reproducibility, and clinical utility of histologic endometrial dating in fertile women. Fertil. Steril. 2004; 81(5): 1333-43. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2003.11.030.
  28. Coutifaris C., Myers E.R., Guzick D.S., Diamond M.P., Carson S.A., Legro R.S. et al. Histological dating of timed endometrial biopsy tissue is not related to fertility status. Fertil. Steril. 2004; 82(5): 1264-72. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2004.03.069.
  29. Lopata A., Bentin-ley U., Enders A. "Pinopodes" and implantation. Rev. Endocr. Metab. Disord. 2002; 3(2): 77-86. https://dx.doi.org/ 10.1023/a:1015455709833.
  30. Quinn C., Ryan E., Claessens E.A., Greenblatt E., Hawrylyshyn P., Cruickshank B. et al. The presence of pinopodes in the human endometrium does not delineate the implantation window. Fertil. Steril. 2007; 87(5): 1015-21. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2006.08.101.
  31. Liu S., Hua T., Xin X., Shi R., Chi S., Wang H. Altered expression of hormone receptor, integrin β3 and pinopode in the endometrium of luteal phase defect women. Gynecol. Endocrinol. 2017; 33(4): 315-9. https://dx.doi.org/10.1080/09513590.2016.1259405.
  32. Kabir-Salmani M., Nikzad H., Shiokawa S., Akimoto Y., Iwashita M. Secretory role for human uterodomes (pinopods): secretion of LIF. Mol. Hum. Reprod. 2005; 11(8): 553-9. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gah218.
  33. Nejatbakhsh R., Kabir-Salmani M., Dimitriadis E., Hosseini A., Taheripanah R., Sadeghi Y. et al. Subcellular localization of L-selectin ligand in the endometrium implies a novel function for pinopodes in endometrial receptivity. Reprod. Biol. Endocrinol. 2012; 10: 46. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-10-46.
  34. Jin X.Y., Zhao L.J., Luo D.H., Liu L., Dai Y.D., Hu X.X. et al. Pinopode score around the time of implantation is predictive of successful implantation following frozen embryo transfer in hormone replacement cycles. Hum. Reprod. 2017; 32(12): 2394-403. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dex312.
  35. Aunapuu M., Kibur P., Järveots T., Arend A. Changes in morphology and presence of pinopodes in endometrial cells during the luteal phase in women with infertility problems: a pilot study. Medicina (Kaunas). 2018; 54(5): 69. https://dx.doi.org/10.3390/medicina54050069.
  36. Matson B.C., Pierce S.L., Espenschied S.T., Holle E., Sweatt I.H., Davis E.S. et al. Adrenomedullin improves fertility and promotes pinopodes and cell junctions in the peri-implantation endometrium. Biol. Reprod. 2017; 97(3): 466-77. https://dx.doi.org/10.1093/biolre/iox101.
  37. Patel B., Elguero S., Thakore S., Dahoud W., Bedaiwy M., Mesiano S. Role of nuclear progesterone receptor isoforms in uterine pathophysiology. Hum. Reprod. Update. 2015; 21(2): 155-73. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmu056.
  38. Salker M., Teklenburg G., Molokhia M., Lavery S., Trew G., Aojanepong T. et al. Natural selection of human embryos: impaired decidualization of endometrium disables embryo-maternal interactions and causes recurrent pregnancy loss. PLoS One. 2010; 5(4): e10287. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0010287.
  39. Dixit S.G., Ghatak S., Singh P., Bhattacharya S. Estrogen receptor, progesterone receptor and CD8+ expression in endometrium of women of unexplained infertility. J. Gynecol. Obstet. Hum. Reprod. 2018; 47(10): 533-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.jogoh.2018.05.006.
  40. Шуршалина Т.В., Демура А.В. Морфофункциональные перестройки эндометрия в «окно имплантации». Акушерство и гинекология. 2011; (7-2): 9-13.
  41. Куликова Г.В., Абдурахманова Н.Ф., Файзуллина Н.М., Асатурова А.В., Щеголев А.И., Зиганшина М.М., Долгушина Н.В. Рецептивность «тонкого» эндометрия у пациенток в программах вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и гинекология. 2019; 10: 100-7.
  42. Díaz-Gimeno P., Horcajadas J.A., Martínez-Conejero J.A., Esteban F.J., Alamá P., Pellicer A. et al. A genomic diagnostic tool for human endometrial receptivity based on the transcriptomic signature. Fertil. Steril. 2011; 95(1): 50-60. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.04.063.
  43. Díaz-Gimeno P., Ruiz-Alonso M., Blesa D., Gómez E., Fernández-Sánchez M., Carranza F. et al. The accuracy and reproducibility of the endometrial receptivity array is superior to histology as a diagnostic method for endometrial receptivity. Fertil. Steril. 2013; 99(2): 508-17. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.09.046.
  44. Ruiz-Alonso M., Blesa D., Díaz-Gimeno P., Gómez E., Fernández-Sánchez M., Carranza F. et al. The endometrial receptivity array for diagnosis and personalized embryo transfer as a treatment for patients with repeated implantation failure. Fertil. Steril. 2013; 100(3): 818-24. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.05.004.
  45. Mahajan N. Endometrial receptivity array: clinical application. J. Hum. Reprod. Sci. 2015; 8(3): 121-9. https://dx.doi.org/10.4103/0974-1208.165153.
  46. Tan J., Kan A., Hitkari J., Taylor B., Tallon N., Warraich G. et al. The role of the endometrial receptivity array (ERA) in patients who have failed euploid embryo transfers. J. Assist. Reprod. Genet. 2018; 35(4): 683-92. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-017-1112-2.
  47. Patel J., Patel A., Banker J., Shah S., Banker M. Personalized embryo transfer helps in improving in vitro fertilization/ICSI outcomes in patients with recurrent implantation failure. J. Hum. Reprod. Sci. 2019; 12(1): 59. https://dx.doi.org/10.4103/jhrs.JHRS_74_18.
  48. Hashimoto T., Koizumi M., Doshida M., Toya M., Sagara E., Oka N. et al. Efficacy of the endometrial receptivity array for repeated implantation failure in Japan: a retrospective, two-centers study. Reprod. Med. Biol. 2017; 16(3): 290-6. https://dx.doi.org/10.1002/rmb2.12041.
  49. Neves A.R., Devesa M., Martínez F., Garcia-Martinez S., Rodriguez I., Polyzos N.P. et al. What is the clinical impact of the endometrial receptivity array in PGT-A and oocyte donation cycles? J. Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(9): 1901-8. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01535-5.
  50. Bassil R., Casper R., Samara N., Hsieh T.B., Barzilay E., Orvieto R. et al. Does the endometrial receptivity array really provide personalized embryo transfer? J. Assist. Reprod. Genet. 2018; 35(7): 1301-5. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-018-1190-9.
  51. Зиганшина М.М., Абурахманова Н.Ф., Павлович С.В., Гвоздева А.Д., Бовин Н.В., Сухих Г.Т. Гликом эндометрия в менструальном цикле и рецептивность эндометрия. Акушерство и гинекология. 2017: 12: 17-24.
  52. Clark G.F. A role for carbohydrate recognition in mammalian sperm-egg binding. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2014; 450(3): 1195-203. https://dx.doi.org/10.1016/j.bbrc.2014.06.051.
  53. Horne A.W., White J.O., Lalani E.N. Adhesion molecules and the normal endometrium. BJOG. 2002; 109(6): 610-7. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2002.t01-1-01017.x.
  54. Jeschke U., Walzel H., Mylonas I., Papadopoulos P., Shabani N., Kuhn C. et al. The human endometrium expresses the glycoprotein mucin-1 and shows positive correlation for Thomsen-Friedenreich epitope expression and galectin-1 binding. J. Histochem. Cytochem. 2009; 57(9): 871-81. https://dx.doi.org/10.1369/jhc.2009.952085.
  55. Wang B., Sheng J.Z., He R.H., Qian Y.L., Jin F., Huang H.F. High expression of L-selectin ligand in secretory endometrium is associated with better endometrial receptivity and facilitates embryo implantation in human being. Am. J. Reprod. Immunol. 2008; 60(2): 127-34. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2008.00604.x.
  56. Margarit L., Gonzalez D., Lewis P.D., Hopkins L., Davies C., Conlan R.S. et al. L-Selectin ligands in human endometrium: comparison of fertile and infertile subjects. Hum. Reprod. 2009; 24(11): 2767-77. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dep247.
  57. Foulk R.A., Zdravkovic T., Genbacev O., Prakobphol A. Expression of L-selectin ligand MECA-79 as a predictive marker of human uterine receptivity. J. Assist. Reprod. Genet. 2007; 24(7): 316-21. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-007-9151-8.

Поступила 12.10.2020

Принята в печать 23.10.2020

Об авторах / Для корреспонденции

Довгань Алина Анатольевна, аспирант отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия имени профессора Б.В. Леонова, ФГБУ «НМИЦ АГП
им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(929) 910-46-00. E-mail: lina.dovgan@gmail.com. ORCID: 0000-0002-4927-3590.
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Зиганшина Марина Михайловна, к.б.н., в.н.с. лаборатории клинической иммунологии, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(495)438-11-83. E-mail: mmz@mail.ru. ORCID: 0000-0003-1578-8403. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Долгушина Наталия Витальевна, д.м.н., заместитель директора – руководитель департамента организации научной деятельности,
ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(495)438-49-77. E-mail: n_dolgushina@oparina4.ru. ORCID: 0000-0003-1116-138X.
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Довгань А.А., Зиганшина М.М., Долгушина Н.В. Современные тренды в поиске маркеров рецептивности эндометрия – от отдельных параметров к комплексному подходу.
Акушерство и гинекология. 2020; 11: 26-32
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.11.26-32

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.