Современные представления об этиопатогенезе врастания плаценты и перспективы его прогнозирования молекулярными методами диагностики
Цель исследования. Провести систематический анализ данных, имеющихся в современной литературе, факторах риска, патогенезе и маркерах, определяемых лабораторными методами диагностики, сигнализирующих о наличии врастании плаценты.Виницкий А.А., Шмаков Р.Г.
Материалы и методы. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, найденных в Pubmed по данной теме, опубликованных за последние 5 лет.
Результаты. Приведены основные молекулярные механизмы, приводящие к врастанию плаценты, описаны факторы риска и лабораторные маркеры, позволяющие с определенной степенью достоверности установить диагноз врастания плаценты.
Заключение. Существует множество теорий, которые рассматривают патогенез врастания плаценты с разных позиций. Наиболее распространенная постулирует о значимости гипоксического фактора со сниженным сосудистым компонентом рубцовой ткани на матке, что в какой-то степени объясняет широкую распространенность данной патологии среди женщин, которым было ранее выполнено кесарево сечение. Перспективным является направление прогнозирования и диагностики врастания плаценты путем детекции лабораторных маркеров: ряда белков, фетальной ДНК, мРНК, тем самым дополняя методы инструментальной визуализации.
Ключевые слова
врастание плаценты
рубец на матке
кесарево сечение
про-мозговой натрийуретический пептид
фетальная ДНК
мРНК
микроРНК
хорионический гонадотропин
плацентарный лактоген
Список литературы
1. Wong H.S., Cheung Y.K., Zuccollo J., Tait J., Pringle K.C. Evaluation of sonographic diagnostic criteria for placenta accreta. J. Clin. Ultrasound. 2008; 36(9): 551-9.
2. Wu S., Kocherginsky M., Hibbard J.U. Abnormal placentation: twenty-year analysis. Am. J. Obstet. Gynecol. 2005; 192(5): 1458-61.
3. Silver R.M., Landon M.B., Rouse D.J., Leveno K.J., Spong C.Y., Thom E.A. et al. Maternal morbidity associated with multiple repeat cesarean deliveries. Obstet. Gynecol. 2006; 107(6): 1226-32.
4. Klar M., Michels K.B. Cesarean section and placental disorders in subsequent pregnancies–a meta-analysis. J. Perinat. Med. 2014; 42(5): 571-83.
5. Silver R.M. Implications of the first cesarean: perinatal and future reproductive health and subsequent cesareans, placentation issues, uterine rupture risk, morbidity, and mortality. Semin. Perinatol. 2012; 36(5): 315-23.
6. Creanga A.A., Bateman B.T., Butwick A.J., Raleigh L., Maeda A., Kuklina E., Callaghan W.M. Morbidity associated with cesarean delivery in the United States: is placenta accreta an increasingly important contributor? Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 213(3): 384. e1-11.
7. Fitzpatrick K.E., Sellers S., Spark P., Kurinczuk J.J., Brocklehurst P., Knight M. Incidence and risk factors for placenta accreta/increta/percreta in the UK: a national case-control study. PLoS One. 2012; 7(12): e52893.
8. Tantbirojn P., Crum C.D., Parast M.M. Pathophysiology of placenta creta: the role of deciduas and extravillous cytotrophoblast. Placenta. 2008; 29(7): 639-45.
9. Cohen M., Wuillemin C., Irion O., Bischof P. Role of deciduas in trophoblastic inva-sion. Neuro Endocrinol. Lett. 2010; 31(2): 193-7.
10. Liu Z.K., Liu H.Y., Fang W.N., Yang Y., Wang H.M., Peng J.P. Insulin-like growth factor binding protein 7 modulates estrogen-induced trophoblast proliferation and invasion in HTR-8 and JEG-3 cells. Cell Biochem. Biophys. 2012; 63(1): 73-84.
11. Goh W., Yamamoto S.Y., Thompson K.S., Bryant-Greenwood G.D. Relaxin, its receptor (RXFP1), and insulin-like peptide 4 expression through gestation and in placenta accreta. Reprod. Sci. 2013; 20(8): 968-80.
12. Давыдов А.И., Агрба И.Б., Волощук И.Н., Киличева И.И. Клиническая оценка экспрессии иммуногистохимических маркеров в патогенезе врастания плаценты. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2013; 12(2): 9-15.
13. Jauniaux E., Jurkovic D. Placenta accreta: pathogenesis of a 20th century iatrogenic uterine disease. Placenta. 2012; 33(4): 244-51.
14. Laban M., Ibrahim E.A., Elsafty M.S., Hassanin A.S. Placenta accreta is associated with decreased decidual natural killer (dNK) cells population: a comparative pilot study. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2014; 181: 284-8.
15. Wehrum M.J., Buhimschi I.A., Salafia C., Thung S., Bahtiyar M.O., Werner E.F. et al. Accreta complicating complete placenta previa is characterized by reduced systemic levels of vascular endothelial growth factor and by epithelial-tomesenchymal transition of the invasive trophoblast. Am. J. Obstet. Gynecol. 2011; 204(5): 411. e1-411. e11.
16. Muttukrishna S., Suri S., Groome N., Jauniaux E. Relationships between TGFbeta proteins and oxygen concentrations inside the first trimester human gestational sac. PLoS One. 2008; 3(6): e2302.
17. Tseng J.J., Chou M.M. Differential expression of growth-, angiogenesis- and invasion-related factors in the development of placenta accreta. Taiwan J. Obstet. Gynecol. 2006; 45(2): 100-6.
18. Hannon T., Innes B.A., Lash G.E., Bulmer J.N., Robson S.C. Effects of local decidua on trophoblast invasion and spiral artery remodeling in focal placenta creta – an immunohistochemical study. Placenta. 2012; 33(12): 998-1004.
19. Adler E., Madankumar R., Rosner M., Reznik S.E. Increased placental trophoblast inclusions in placenta accreta. Placenta. 2014; 35(12): 1075-8.
20. Gielchinskya Y., Rojansky N., Fasouliotis S. J., Ezra Y. Placenta accreta-summary of 10 years: a survey of 310 cases. Placenta. 2002; 23(2-3): 210-4.
21. Umemura K., Ishioka S., Endo T., Ezaka Y., Takahashi M., Saito T. Roles of microRNA-34a in the pathogenesis of placenta accreta. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2013; 39(1): 67-74.
22. Vinograd A., Wainstock T., Mazor M., Mastrolia S.A., Beer-Weisel R., Klaitman V. et al. A prior placenta accreta is an independent risk factor for post-partum hemorrhage in subsequent gestations. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2015; 187(1): 20-4.
23. Gyamfi-Bannerman C., Gilbert S., Landon M.B., Spong C.Y., Rouse D.J., Varner M.W. et al. Risk of uterine rupture and placenta accreta with prior uterine surgery outside of the lower segment. Obstet Gynecol. 2012; 120(6): 1332-7.
24. Al-Serehi A., Mhoyan A., Brown M., Benirschke K., Hull A., Pretorius D.H. Placenta accreta: an association with fibroids and Asherman syndrome. J. Ultrasound Med. 2008; 27(11): 1623-8.
25. Engelbrechtsen S., Langhoff-Roos J., Kjer J.J., Istre O. Placenta accreta: adherent placenta due to Asherman syndrome. Clin. Case Rep. 2015; 3(3): 175-8.
26. Usta I.M., Hobeika E.M., Musa A.A., Gabriel G.E., Nassar A.H. Placenta previa-accreta: risk factors and complications. Am. J. Obstet. Gynecol. 2005; 193(3, Pt 2): 1045-9.
27. Bowman Z.S., Simons M., Sok C., Draper M.L. Cervical insufficiency and placenta accrete after prior pelvic radiation. J. Obstet. Gynaecol. 2014; 34(8): 735.
28. Pridjian G., Rich N.E., Montag A.G. Pregnancy hemoperitoneum and placenta percreta in a patient with previous pelvic irradiation and ovarian failure. Am. J. Obstet. Gynaecol. 1990; 162(5): 1205-6.
29. Esh-Broder E., Ariel I., Abas-Bashir N., Bdolah Y., Celnikier D.H. Placenta accreta is associated with IVF pregnancies: a retrospective chart review. BJOG. 2011; 118(9): 1084-9.
30. Ersoy A.O., Oztas E., Ozler S., Ersoy E., Erkenekli K., Uygur D. et al. Can venous ProBNP levels predict placenta accreta? J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2016; 29(24): 4020-4.
31. Samuel A., Bonanno C., Oliphant A., Batey A., Wright J.D. Fraction of cell-free fetal DNA in the maternal serum as a predictor of abnormal placental invasion-a pilot study. Prenat. Diagn. 2013; 33(11): 1050-3.
32. Sekizawa A., Jimbo M., Saito H., Iwasaki M., Sugito Y., Yukimoto Y. et al. Increased cell-free fetal DNA in plasma of two women with invasive placenta as a novel molecular marker. Clin. Chem. 2002; 48(2): 353-4.
33. Masuzaki H., Miura K., Yoshiura K., Yamasaki K., Miura S., Yoshimura S. et al. Placental mRNA in maternal plasma and its clinical application to the evaluation of placental status in a pregnant woman with placenta previa-percreta. Clin. Chem. 2005; 51(5): 923-5.
34. Ng E.K., Tsui N.B., Lau T.K., Leung T.N., Chiu R.W., Panesar N.S. et al. mRNA of placental origin is readily detectable in maternal plasma. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003; 100(8): 4748-53.
35. Chiu R.W., Lui W.B., Cheung M.C., Kumta N., Farina A., Banzola I. et al. Time profile of appearance and disappearance of circulating placenta-derived mRNA in maternal plasma. Clin. Chem. 2006; 52(2): 313-6.
36. El Behery M.M., Rasha L.E., El Alfy Y. Cell-free placental mRNA in maternal plasma to predict placental invasion in patients with placenta accreta. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2010; 109(1): 30-3.
37. Kawashima A., Sekizawa A., Ventura W., Koide K., Hori K., Okai T. et al. Increased levels of cell-free human placental lactogen mRNA at 28-32 gestational weeks in plasma of pregnant women with placenta previa and invasive placenta. Reprod. Sci. 2014; 21(2): 215-20.
38. Naghshineh E., Khorvash E., Kamali S. A comparison of cell-free placental messenger ribonucleic acid and color Doppler ultrasound for the prediction of placental invasion in patients with placenta accreta. Adv. Biomed. Res. 2015; 4: 31.
Поступила 26.08.2016
Принята в печать 02.09.2016
Об авторах / Для корреспонденции
Виницкий Александр Анатольевич, аспирант родильного отделения ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (925) 362-02-32. E-mail: drvinitskiy@gmail.com
Шмаков Роман Георгиевич, д.м.н., главный врач ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-73-00. E-mail: r_shmakov@oparina4.ru
Для цитирования: Виницкий А.А., Шмаков Р.Г. Современные представления об этиопатогенезе врастания плаценты и перспективы его прогнозирования молекулярными методами диагностики. Акушерство и гинекология. 2017; 2: 5-10.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.2.5-10
Также по теме
