Современные представления о молекулярных механизмах формирования задержки роста плода

Хачатрян З.В., Кан Н.Е., Макарова Н.П.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им академика. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва
Проведен систематический анализ данных, представленных в современной научной литературе, о молекулярных механизмах формирования задержки роста плода и их значении в акушерстве. Внутриутробная среда может потенциально влиять на биологическую активность плода и приводить к нарушению роста и развитию отдаленных осложнений. Рассмотрены механизмы, лежащие в основе плацентарной недостаточности, сигнального пути JAK-STAT, оси «соматотропный гормон – инсулиноподобный фактор роста 1». В статье приведены данные об эпигенетической регуляции данных механизмов и важности их дальнейшего изучения с целью разработки в будущем новых терапевтических подходов.

Ключевые слова

задержка роста плода
некроптоз
белки теплового шока
лептин
инсулиноподобный фактор роста – 1
эпигенетика

Задержка роста плода (ЗРП) характеризуется патологическим ограничением генетически запрограммированного роста плода, которое свидетельствует о его страдании [1]. Согласно концепции внутриутробного программирования, недостаточное поступление питательных веществ, дефицит энергии и изменение эпигенетических механизмов регуляции влияют на метаболизм плода и осложняют не только перинатальный период, но и имеют отдаленные последствия [2–4]. ЗРП имеет мультифакториальную этиологию [5]. На протяжении всего процесса гестации у каждой беременной может возникнуть индивидуальное сочетание различных патогенетических механизмов, в исходе которых возможно формирование ЗРП. Стоит отметить, что в связи с отсутствием эффективных методов лечения крайне важным является поиск не только лечебных, но и профилактических мероприятий. В настоящий момент изучение молекулярных механизмов, лежащих в основе данного осложнения беременности, представляет большой интерес среди исследователей медико-биологических специальностей. В будущем, благодаря разработке методов, направленных на модификацию этих механизмов, возможно внедрение новых терапевтических инструментов с целью коррекции данного осложнения беременности.

Роль взаимодействующих с рецептором протеинкиназ 1 и 3 и сиртуина 2 в регуляции процессов некроптоза в плаценте

Несмотря на то что плацентарная недостаточность ассоциирована с высоким риском акушерских и перинатальных осложнений [6], понимание молекулярных механизмов, лежащих в основе развития данной патологии, остается ограниченным. При нормально протекающей беременности формирование плаценты происходит благодаря строго контролируемым процессам инвазии вневорсинчатого цитотрофобласта в спиральные артерии с последующим их преобразованием. Для обеспечения этих процессов необходим строгий баланс между пролиферацией клеток трофобласта и их апоптозом. В последние годы стало ясно, что апоптоз является нормальным компонентом формирования плаценты, и попадание апоптотического материала в материнский кровоток не приводит к развитию системной воспалительной реакции [7]. Такие плацента-ассоциированные осложнения беременности, как преэклампсия и ЗРП, характеризуются дисбалансом между этими процессами [8]. Одним из объяснений данных изменений является возникновение небольших зон некроза в синцитиотрофобласте, которые приводят к высвобождению в материнский кровоток, наряду с апоптотическим материалом, продуктов некроза. Неконтролируемая клеточная гибель может способствовать развитию системной воспалительной реакции. Однако совсем недавно был выявлен программируемый тип некротической гибели клеток – некроптоз [9]. Ключевыми участниками сигнального пути некроптоза являются взаимодействующие с рецептором протеинкиназы 1 и 3 (RIPK 1 и 3), никотинамидадениндинуклеотид-зависимая деацетилаза сиртуин 2 (SIRT 2) и псевдокиназа смешанного происхождения (MLKL) [10–12]. Запуск некроптоза возможен внеклеточными цитокинами и другими белками, которые обладают способностью активации RIPK1 и -3. При некроптозе происходит строго регулируемое образование внутриклеточного комплекса, который активирует SIRT2, что приводит к деацетилированию RIPK1 [10]. Данный процесс позволяет активировать псевдокиназу MLKL путем ее фосфорилирования RIPK3. MLKL, связываясь с фосфатидилинозитолфосфатами на клеточной мембране, модифицирует приток калия и натрия по ионным каналам и увеличивает осмотическое давление, что, в конечном счете, приводит к разрыву плазматической мембраны [12, 13]. N.J. Hannan и соавт. было проведено исследование плацент при плацентарной недостаточности и при физиологической беременности. Согласно полученным данным, SIRT2 и RIPK1 были обнаружены в цитоплазме цитотрофобласта, синцитиотрофобласта и в сосудистых стенках во всех плацентах из группы патологии. Таким образом, авторы, путем обнаружения ключевых участников сигнального пути некроптоза, подтвердили его наличие при плацентарной недостаточности [14].

Роль белков теплового шока в патогенезе задержки роста плода

В продолжение обсуждения механизмов, лежащих в основе плацентарной недостаточности, нельзя не упомянуть о белках теплового шока (HSP) – классе функционально сходных белков, действующих как внутриклеточные шапероны в отношении других белков. Согласно последним данным, в патогенезе ЗРП особый интерес представляют HSP27, HSP70. При нормально протекающей беременности в плаценте отмечается повышенная экспрессия HSP27,

которая приводит к ингибированию апоптоза путем дезактивации фермента каспазы-3. При ЗРП наблюдается противоположная картина – снижение экспрессии HSP27 приводит к активации каспазы-3 и усилению апоптоза в плаценте [15]. HSP70 – белок, стимулирующий синтез таких провоспалительных цитокинов, как фактор некроза опухоли альфа (TNF-α) и интерлейкин-6 [16, 17]. Существуют данные о том, что повышенная экспрессия данного белка приводит к ингибированию клеточной пролиферации и TNF-опосредованному апоптозу, что было подтверждено в экспериментальных исследованиях [18, 19].

Роль лептина в патогенезе задержки роста плода

Необходимо отметить, что любые изменения со стороны матери, плаценты или плода могут потенциально влиять на биологическую активность плода и приводить к нарушению роста. ЗРП ассоциирована не только с перинатальными осложнениями, но и с развитием во взрослом периоде таких метаболических нарушений, как ожирение, сахарный диабет 2 типа, артериальная гипертензия [20]. Таким образом, изучение механизмов, лежащих в основе данных процессов, может помочь в разработке в будущем новых терапевтических подходов.

Сигнальный путь янус-киназа – сигнальный преобразователь и активатор транскрипции (JAK-STAT), играя важную роль в различных процессах онтогенеза, является одним из консервативных путей регуляции у высших эукариот. Рецепторы лептина принадлежат к семейству цитокинов класса 1 с шестью сплайсированными изоформами, но только полная изоформа OB-R имеет важное значение для сигнального пути JAK-STAT [21]. ЗРП связана с более высокой экспрессией белка лептина и повышением связывающих способностей к нему у новорожденных. В условиях гипоксии наблюдается повышенная экспрессия гена лептина, что вызывает увеличение синтеза белка лептина в клетках трофобласта. Повышение концентрации белка приводит к увеличению концентрации рецепторов, связывающих лептин, в пуповинной крови. Лептин, связываясь со специфическими рецепторами в гипоталамусе, изменяет экспрессию ряда нейропептидов, участвующих в нейроэндокринной регуляции [22]. Таким образом, у новорожденных с малыми размерами к сроку гестации в связи с повышенной экспрессией рецепторов к лептину наблюдается снижение его уровня, что в будущем может приводить к развитию различных метаболических нарушений.

Лептин индуцирует синтез трансформирующего фактора роста бета (TGF-β) посредством активации JAK-STAT-пути [23]. TGF-β представляет собой многофункциональный цитокин с множеством биологических эффектов, участвующий в регуляции пролиферации и дифференцировки клеток трофобласта [24]. В патогенезе ЗРП представляет интерес регуляция TGF-β активности ферментов ацил-сфингозин-аминогидролазы-1 (ASAH1) и сфингозин-киназы-1, -2 (SPHK1/2). Нарушение регуляции данных ферментов приводит к накоплению сфингозина, что вызывает неадекватный ангиогенез и некроз клеток трофобласта [25].

Существует ряд работ, сообщающих о влиянии TGF-β на развитие легких у плода. Атипичная экспрессия и активация TGF-β увеличивают экспрессию таких транскрипционных факторов, как GATA-6 и тиреоидный фактор транскрипции-1 (TTF-1) в легочном эпителии, что приводит к развитию бронхолегочной дисплазии у новорожденных [26]. Предполагается, что сигнальный путь TGF-β – костный морфогенетический белок (BMP) путем повышения резистентности дыхательных путей может способствовать развитию бронхиальной астмы [27].

Роль инсулиноподобных факторов роста в патогенезе задержки роста плода

В последнее время внимание ученых сосредоточено на изучении оси «соматотропный гормон (Growth Hormone, GH) – инсулиноподобный фактор роста 1 (IGF-1)» и ее эпигенетической регуляции. IGF-1 и IGF-2 представляют собой регуляторные пептиды, структурно схожие с инсулином. С ранних сроков гестации данные белки, взаимодействуя с рецепторами IGF-1, -2 и инсулина (IGF-1R, IGF-2R и InsR), регулируют процессы формирования плаценты и роста плода. На этапе внутриутробного развития преобладает IGF-2, однако было отмечено, что делеция любого гена IGF приводит к ограничению роста плода [28]. Несмотря на разные функции, IGF-1 и IGF-2 находятся в тесной взаимосвязи друг с другом. IGF-1 влияет на рост плода, участвуя в процессах транспорта питательных веществ к нему, в то время как IGF-2 регулирует процессы пролиферации и дифференцировки в плаценте [29]. IGF-1 и IGF-2 усиливают усвояемость глюкозы и аминокислот в клетках трофобласта [30].

В регуляции оси «GH–IGF-1» важную роль играют эпигенетические механизмы – квазистабильные, обратимые и наследуемые модификации изменений структуры хроматина или ДНК с их последующей фенотипической экспрессией. Эпигенетическая регуляция приводит к изменению активности гена без изменений его кодирующей последовательности.

Благодаря совершенствованию молекулярно-генетических методов исследования, стала возможной оценка эпигенетической регуляции. Тем не менее многие вопросы работы данной системы остаются невыясненными. В настоящее время наиболее изучены следующие эпигенетические механизмы: метилирование цитозиновых оснований ДНК [31, 32], модификация гистонов [33], ремоделирование хроматина [34] и регуляция экспрессии генов малыми некодирующими РНК (miRNA) [35]. Уровень сывороточного IGF-1 в значительной степени зависит от его продукции в печени и регулируется эпигенетическими механизмами, которые реализуются через элементы отклика GH (Growth Hormone response elements – GHRE) [36]. Элементы отклика – короткие последовательности ДНК в пределах промоторной области гена, регулирующие генную экспрессию путем связывания с факторами транскрипции. Среди последних исследований наиболее интересной представляется последовательность интрона-2 в элементах отклика GH (IN2GHRE), которая усиливает транскрипцию гена IGF-1.

В свою очередь, сигнальный преобразователь и активатор транскрипции (STAT) 5 – другой элемент отклика GH – активирует IN2GHRE [37–39]. Анализ триметилирования гистона Н3 по лизину 4 (Н3К4me3) и диметилирования гистона Н3 по лизину 36 (H3K36me3), осуществляющих эпигенетическую регуляцию оси GH–IGF-1 путем модификации гистонов, имеет большое значение для понимания механизмов развития не только во внутриутробном, но и в постнатальном периоде [40, 41]. Q. Fu и соавт. предполагают, что при ЗРП наблюдается нарушение IN2GHRE путем триметилирования Н3К4me3 и диметилирования H3K36me3, а также метилирования CpG – островков ДНК данного локуса [42]. Таким образом, при ЗРП наблюдается изменение IGF-1 гена по всей его длине. Эти паттерны имеют большое значение для поддержания оптимальной работы оси GH–IGF-1. Важно, что многие из эпигенетических изменений не только играют роль в пренатальном, но и сохраняются в постнатальном периоде. Наблюдающиеся при ЗРП изменения нормальных эпигенетических меток, а следовательно, и экспрессии генов, содержащих GHRE, приводят к нарушению различных функций и развитию патологических состояний [43]. Более углубленное изучение позволит в будущем ввести полученные знания об эпигенетических механизмах регуляции данной системы в разработку терапии различных нарушений роста плода.

Заключение

ЗРП остается одной из самых актуальных проблем акушерства, занимая важное место в структуре перинатальной заболеваемости и смертности. Несмотря на это, многие вопросы патогенеза данного осложнения беременности остаются невыясненными. Накопление и совершенствование медицинских знаний относительно молекулярных механизмов развития ЗРП могут определить новые цели в разработке не только эффективных методов профилактики и лечения данного осложнения беременности, но и методов диагностики. Отсутствие эффективных методов лечения и профилактики ЗРП может быть обусловлено эпигенетическими механизмами, лежащими в основе данного осложнения беременности. Обратимый и неспецифичный характер эпигенетических факторов и их роль в качестве посредников между геномом и окружающей средой делают их одними из самых перспективных терапевтических мишеней.

Список литературы

  1. Mifsud W., Sebire N.J. Placental pathology in early‐onset and late‐onset fetal growth restriction. Fetal Diagn. Ther. 2014; 36(2): 117-28. doi: 10.1159/000359969.
  2. Kwon E.J., Kim Y.J. What is fetal programming?: a lifetime health is under the control of in utero health. Obstet. Gynecol. Sci. 2017; 60(6): 506-19. doi: 10.5468/ogs.2017.60.6.506
  3. Banister C.E., Koestler D.C., Maccani M.A., Padbury J.F., Houseman E.A., Marsit C.J. Infant growth restriction is associated with distinct patterns of DNA methylation in human placentas. Epigenetics. 2011; 6(7): 920-7. doi: 10.4161/epi.6.7.16079.
  4. Стрижаков А.Н., Игнатко И.В., Байбулатова Ш.Ш., Богомазова И.М. Антенатальное метаболическое и эндокринное программирование при беременности высокого риска. Акушерство и гинекология. 2016; 10: 39-47.
  5. Devaskar S.U., Chu A. Intrauterine growth restriction: hungry for an answer. Physiology (Bethesda). 2016; 31(2): 131-46. http://dx.doi.org/10.1152/physiol.00033.2015
  6. Ananth C.V., Lavery J.A., Vintzileos A.M., Skupski D.W., Varner M., Saade G. et al. Severe placental abruption: clinical definition and associations with maternal complications. Am. J. Obstet. Gynecol. 2016; 214(2): 272. e1-272. e9. doi: 10.1016/j.ajog.2015.09.069.
  7. Huppertz B., Kadyrov M., Kingdom J.C. Apoptosis and its role in the trophoblast. Am. J. Obstet. Gynecol. 2006; 195(1): 29-39. DOI: 10.1371/journal.pone.0064351
  8. Sibley C.P. Treating the dysfunctional placenta. J. Endocrinol. 2017; 234(2): R81-97. https://doi.org/10.1186/s12958-019-0494-7
  9. Conrad M., Angeli J.P., Vandenabeele P., Stockwell B.R. Regulated necrosis: disease relevance and therapeutic opportunities. Nat. Rev. Drug Discov. 2016; 15(5): 348-66. http://dx.doi.org/10.1038/nrd.2015.6
  10. Narayan N., Lee I.H., Borenstein R., Sun J., Wang R., Tong G. et al. The NAD4 dependent deacetylase SIRT2 is required for programmed necrosis. Nature. 2012; 492(7428): 199-204. doi: 10.1038/nature11700.
  11. Silke J., Rickard J.A., Gerlic M. The diverse role of RIP kinases in necroptosis and inflammation. Nat. Immunol. 2015; 16(7): 689-97. doi: 10.1038/ni.3206.
  12. Chen X., Li W., Ren J., Huang D., He W.T., Song Y. et al. Translocation of mixed lineage kinase domain-like protein to plasma membrane leads to necrotic cell death. Cell Res. 2014; 24(1): 105-21. http://dx.doi.org/10.1038/cr.2013.171
  13. Polykratis A., Hermance N., Zelic M., Roderick J., Kim C., Van T.M. et al. Cutting edge: RIPK1 Kinase inactive mice are viable and protected from TNF-induced necroptosis in vivo. J. Immunol. 2014; 193(4): 1539-43. doi: 10.4049/jimmunol.1400590.
  14. Hannan N.J., Beard S., Binder N.K., Onda K., Kaitu’u-Lino T.J., Chen Q. et al. Key players of the necroptosis pathway RIPK1 and SIRT2 are altered in placenta from preeclampsia and fetal growth restriction. Placenta. 2017; 51: 1-9. doi: 10.1016/j.placenta.2017.01.002
  15. Bahr B., Galan H.L., Arroyo J.A. Decreased expression of phosphorylated placental heatshock protein 27 in human and ovine intrauterine growth restriction (IUGR). Placenta. 2014; 35(6): 404-10. doi: 10.1016/j.placenta.2014.03.001
  16. Clerico E.M., Meng W., Pozhidaeva A., Bhasne K., Petridis C., Gierasch L.M. Hsp70 molecular chaperones: multifunctional allosteric holding and unfolding machines. Biochem. J. 2019; 476(11): 1653-77. doi: 10.1042/BCJ20170380.
  17. Li W., Zhong X., Zhang L., Wang Y., Wang T. Heat shock protein 70 expression is increased in the liver of neonatal intrauterine growth retardation piglet. Asian-Australas. J. Anim. Sci. 2012; 25(8): 1096-101. https://doi.org/10.1007/s12192-012-0326-6
  18. Huang B.P., Lin C.S., Wang C.J., Kao S.H. Upregulation of heat shock protein 70 and the differential protein expression induced by tumor necrosis factor-alpha enhances migration and inhibits apoptosis of hepatocellular carcinoma cell HepG2. Int. J. Med. Sci. 2017; 14(3): 284-93. DOI: 10.7150/ijms.17861
  19. Zhong X., Wang T., Zhang X., Li W. Heat shock protein 70 is upregulated in the intestine of intrauterine growth retardation piglets. Cell Stress Chaperones. 2010; 15(3): 335-42. doi: 10.1007/s12192-009-0148-3
  20. Varvarigou A.A. Intrauterine growth restriction as a potential risk factor for disease onset in adulthood. J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2010; 23(3): 215-24. DOI: 10.1515/JPEM.2010.23.3.215
  21. Dodington D.W., Desai H.R., Woo M. JAK/STAT – emerging players in metabolism. Trends Endocrinol. Metab. 2018; 29(1): 55-65. DOI: 10.1016/j.tem.2017.11.001
  22. Tzschoppe A., Struwe E., Rascher W., Dörr H.G., Schild R.L., Goecke T.W. et al. Intrauterine growth restriction (IUGR) is associated with increased leptin synthesis and binding capability in neonates. Clin. Endocrinol. (Oxf.). 2011; 74(4): 459-66. doi: 10.1111/j.1365-2265.2010.03943.x.
  23. Mullen M., Gonzalez-Perez R.R. Leptin-induced JAK/STAT signaling and cancer growth. Vaccines (Basel). 2016; 4(3): 26. Article (PDF Available) in Vaccines 4(3):26 · July 2016 with 60 Reads DOI: 10.3390/vaccines4030026
  24. Yi Y., Cheng J.C., Klausen C., Leung P.C.K. TGF-β1 inhibits human trophoblast cell invasion by upregulating cyclooxygenase-2. Placenta. 2018; 68: 44-51. doi: 10.1016/j.placenta.2018.06.313.
  25. Chauvin S., Yinon Y., Xu J., Ermini L., Sallais J., Tagliaferro A. et al. Aberrant TGFβ signalling contributes to dysregulation of sphingolipid metabolism in intrauterine growth restriction. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2015; 100(7): E986-96. doi: 10.1210/jc.2015-1288
  26. Vähätalo R., Asikainen T.M., Karikoski R., Kinnula V.L., White C.W., Andersson S.,et al. Expression of transcription factor GATA-6 in alveolar epithelial cells is linked to neonatal lung disease. Neonatology. 2011; 99(3): 231-40. doi: 10.1159/000317827
  27. Alcázar M.A., Dinger K., Rother E., Östreicher I., Vohlen C., Plank C. et al. Prevention of early postnatal hyperalimentation protects against activation of transforming growth factor-β/bone morphogenetic protein and interleukin-6 signaling in rat lungs after intrauterine growth restriction. J. Nutr. 2014; 144(12): 1943-51. doi: 10.3945/jn.114.197657
  28. Martín-Estal I., de la Garza R. G., Castilla-Cortázar I. Intrauterine growth retardation (IUGR) as a novel condition of insulin-like growth factor-1 (IGF-1)deficiency. Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 2016; 170: 1-35.DOI: 10.1007/112_2016_1
  29. Sferruzzi-Perri A.N., Owens J.A., Pringle K.G., Roberts C.T. The neglected role of insulin-like growth factors in the maternal circulation regulating fetal growth. J. Physiol. 2011; 589(Pt 1): 7-20. doi: 10.1113/jphysiol.2010.198622.
  30. Baumann M.U., Schneider H., Malek A., Palta V., Surbek D.V., Sager R. et al. Regulation of human trophoblast GLUT1 glucose transporter by insulin-like growth factor I (IGF-I). PLoS One. 2014; 9(8): e106037. doi: 10.1371/journal.pone.0106037
  31. Illingworth R.S., Gruenewald-Schneider U., Webb S., Kerr A.R., James K.D., Turner D.J. et al. Orphan CpG islands identify numerous conserved promoters in the mammalian genome. PLoS Genet. 2010; 6(9): e1001134. doi: 10.1371/journal.pgen.1001134.
  32. Jang H.S., Shin W.J., Lee J.E., Do J.T. CpG and Non-CpG methylation in epigenetic gene regulation and brain function. Genes (Basel). 2017; 8(6): 148. doi: 10.3390/genes8060148.
  33. Ye J., Wu W., Li Y., Li L. Influences of the gut microbiota on DNA methylation and histone modification. Dig. Dis. Sci. 2017; 62(5): 1155-64. doi: 10.1007/s10620-017-4538-6.
  34. Sen P., Shah P.P., Nativio R., Berger S.L. Epigenetic mechanisms of longevity and aging. Cell. 2016; 166(4): 822-39. https://doi.org/10.1186/s13148-017-0365-z
  35. O’Brien J., Hayder H., Zayed Y., Peng C. Overview of MicroRNA biogenesis, mechanisms of actions, and circulation. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2018; 9: 402. DOI: 10.3389/fendo.2018.00402
  36. Rotwein P. Diversification of the insulin-like growth factor 1 gene in mammals. PLoS One. 2017; 12(12): e0189642. DOI: 10.1371/journal.pone.0189642
  37. Chia D.J., Varco-Merth B., Rotwein P. Dispersed chromosomal Stat5b-binding elements mediate growth hormone-activated insulin-like growth factor-I gene transcription. J. Biol. Chem. 2010; 285(23): 17636-47. doi: 10.1074/jbc.M110.117697
  38. Rotwein P. Mapping the growth hormone–Stat5b–IGF-I transcriptional circuit. Trends Endocrinol. Metab. 2012; 23(4): 186-93. doi: 10.1016/j.tem.2012.01.001.
  39. Klammt J., Neumann D., Gevers E.F., Andrew S.F., Schwartz I.D., Rockstroh D. et al. Dominant-negative STAT5B mutations cause growth hormone insensitivity with short stature and mild immune dysregulation. Nat. Commun. 2018; 9(1): 2105. doi: 10.1038/s41467-018-04521-0.
  40. Zhou Z., Liu Y.T., Ma L., Gong T., Hu Y.N., Li H.T. et al. Independent manipulation of histone H3 modifications in individual nucleosomes reveals the contributions of sister histones to transcription. Elife. 2017; 6: e30178. https://doi.org/10.1007/s00294-018-0910-0
  41. Chantalat S., Depaux A., Héry P., Barral S., Thuret J.Y., Dimitrov S. et al. Histone H3 trimethylation at lysine 36 is associated with constitutive and facultative heterochromatin. Genome Res. 2011; 21(9): 1426-37. doi: 10.1101/gr.118091.110.
  42. Fu Q., McKnight R.A., Callaway C.W., Yu X., Lane R.H., Majnik A.V. Intrauterine growth restriction disrupts developmental epigenetics around distal growth hormone response elements on the rat hepatic IGF-1 gene. FASEB J. 2015; 29(4): 1176-84. DOI: 10.1096/fj.14-258442
  43. Дегтярева Е.И., Григорян О.Р., Волеводз Н.Н., Андреева Е.Н., Клименченко Н.И., Мельниченко Г.А., Дедов И.И., Сухих Г.Т. Роль импринтинга генов при внутриутробной задержке роста плода. Акушерство и гинекология. 2015; 12: 5-10.

Поступила 20.06.2019

Принята в печать 21.06.2019

Об авторах / Для корреспонденции

Хачатрян Зарине Варужановна, аспирант ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7 (909) 656-24-56. E-mail: z.v.khachatryan@gmail.com. Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кан Наталья Енкыновна, д.м.н., профессор ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(926)220-86-55. E-mail: kan-med@mail.ru. Номер Researcher ID B-2370-2015. ORCID ID 0000-0001-5087-5946
Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Макарова Наталья Петровна, д.б.н., ведущий научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7(495) 438-77-00. E-mail: np_makarova@oparina4.ru. Адрес: 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Хачатрян З.В., Кан Н.Е., Макарова Н.П. Современные представления о молекулярных механизмах формирования задержки роста плода.
Акушерство и гинекология. 2019; 10: 22-26.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.10.22-26

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.