Роль преимплантационного генетического тестирования эмбрионов на анеуплоидии в исходах программ вспомогательных репродуктивных технологий у различных групп пациентов

Перминова С.Г., Савостина Г.В., Екимов А.Н., Белова И.С.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия
Цель: Изучить влияние результата преимплантационного генетического тестирования на анеуплоидии (ПГТ-А) на исходы программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) в различных группах пациентов.
Материалы и методы: В обсервационном исследовании было проанализировано 800 циклов ЭКО с криоконсервацией эмбрионов и последующими криопротоколами. Все пациенты в зависимости от данных клинико-анамнестического анамнеза были распределены на 4 группы. В I группу были включены женщины старшего репродуктивного возраста, во II группу – пациенты с привычным выкидышем, в III группу – женщины с повторными неудачными попытками имплантации, и IV группу составили супружеские пары с тяжелой патозооспермией. Каждая из четырех групп была разделена на две подгруппы: подгруппы «a» включали программы ЭКО с ПГТ-А, подгруппы «b» (контрольные) – программы ЭКО без ПГТ-А.
Результаты: Частота клинической беременности у женщин старшего репродуктивного возраста была статистически значимо выше в подгруппе Ia, по сравнению с таковой в подгруппе Ib (р=0,002; ОР (95% ДИ)=3,18 (1,45; 6,97)). У женщин с привычным выкидышем не было выявлено статистически значимых различий в частоте клинической беременности в подгруппах IIa и IIb. Однако отмечено статистически значимое снижение частоты репродуктивных потерь в подгруппе IIa, по сравнению с подгруппой IIb (р=0,031; ОР (95% ДИ)=0,39 (0,16; 0,96)). У пациенток с повторными неудачными попытками имплантации выявлено статистически значимое увеличение частоты клинической беременности в подгруппе IIIa, по сравнению с таковой в подгруппе IIIb (p=0,008; ОР (95% ДИ)=1,98 (1,19; 3,28)). Частота живорождения и ранних репродуктивных потерь cтатистически значимо не различались подгруппах IIIа и IIIb. В группе пациентов с тяжелой патозооспермией не было выявлено статистически значимых различий в частоте клинической беременности между подгруппами IVа и IVb, а также в частоте ранних репродуктивных потерь и в частоте живорождения.
Заключение: В проведенном исследовании продемонстрировано улучшение исходов программ ВРТ
у женщин старшего репродуктивного возраста; почти трехкратное уменьшение вероятности ранних репродуктивных потерь у женщин с привычным выкидышем, увеличение частоты клинической беременности у пациенток с повторными неудачными попытками имплантации. Однако не было выявлено статистически значимых улучшений результативности программ ВРТ у супружеских пар с тяжелой патозооспермией. Полученные результаты указывают на целесообразность применения ПГТ-А в отдельных группах пациентах. Однако проведение многоцентровых рандомизированных контролируемых исследований с качественным дизайном позволит дать более полную информацию о роли ПГТ-А в исходах программ ВРТ.

Вклад авторов: Перминова С.Г., Савостина Г.В. – концепция и дизайн статьи; Савостина Г.В. – сбор и обработка материала, написание текста; Перминова С.Г., Екимов А.Н., Белова И.С. – редактирование.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов.
Финансирование: Статья подготовлена без финансовой поддержки.
Одобрение Этического комитета: Исследование было одобрено комиссией по этике биомедицинских исследований ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.
Согласие пациентов на публикацию: Пациенты подписали информированное согласие на публикацию своих данных.
Обмен исследовательскими данными: Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Перминова С.Г., Савостина Г.В., Екимов А.Н., Белова И.С. Роль преимплантационного генетического тестирования эмбрионов на анеуплоидии в исходах программ вспомогательных репродуктивных технологий у различных групп пациентов.
Акушерство и гинекология. 2023; 3: 73-82
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.288

Ключевые слова

преимплантационное генетическое тестирование эмбрионов на анеуплоидии
старший репродуктивный возраст
привычный выкидыш
тяжелая патозооспермия

Выбор эмбриона с оптимальным имплантационным потенциалом является одной из главных нерешенных проблем в клинической практике вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Ни один из существующих на сегодняшний день неинвазивных методов оценки качества эмбрионов не позволяет достоверно определить его имплантационный потенциал и исключить наличие хромосомных аномалий. Известно, что даже при переносе морфологически качественного эмбриона в эндометрий, структурно соответствующий фазе менструального цикла, беременность наступает далеко не во всех случаях, и даже при успешной имплантации может прекратить свое развитие на ранних сроках [1]. Без сомнений, значительный вклад в этиологию неудач имплантации и ранних репродуктивных потерь беременности вносят хромосомные аномалии эмбрионов [2]. При этом значительная часть морфологически нормальных эмбрионов могут быть анеуплоидными [3]. Частота образования анеуплоидных эмбрионов в программах ВРТ достаточно высока и варьирует в пределах 54–84% в зависимости от возраста и анамнеза супружеской пары [3]. Поэтому в определенных клинических случаях традиционной оценки морфологических и морфокинетических критериев эмбрионов оказывается недостаточно для селективного переноса эмбриона в полость матки и улучшения исходов программ ВРТ.

Внедрение в клиническую практику преимплантационного генетического тестирования на анеуплоидии (ПГТ-А) открыло новые перспективы в диагностике хромосомных аномалий эмбрионов на доимплантационном этапе и вселило надежду на улучшение исходов программ ВРТ у пациентов с высокой вероятностью образования анеуплоидных эмбрионов. По мере своего развития ПГТ-А претерпело значительные изменения: были усовершенствованы техники биопсии эмбрионов, разработаны новые методы анализа молекулярного кариотипа, позволяющие с высокой точностью исследовать весь хромосомный набор эмбриона [4].

Однако на сегодняшний день роль ПГТ-А в исходах программ ВРТ является предметом острых дискуссий. Результаты многочисленных исследований продемонстрировали спорные данные в отношении влияния ПГТ-А на эффективность программ ВРТ у разных групп пациентов [5–8].

Согласно утвержденным клиническим рекомендациям по диагностике и лечению бесплодия от 2019 г. [9], проведение ПГТ-А может быть рекомендовано в следующих клинических случаях: старший репродуктивный возраст женщины; привычный выкидыш; повторные неудачные попытки имплантации; тяжелые нарушения сперматогенеза у мужчин.

Возраст женщины является ключевым фактором, ассоциированным с образованием анеуплоидных эмбрионов. Так, если в возрасте 26–30 лет частота образования анеуплоидных эмбрионов у женщин составляет 20–27%, то к 45 годам она достигает уже 95,5% [10]. На сегодняшний день нет сомнений в наличии высокой положительной корреляции между возрастом матери и частотой эмбриональных анеуплоидий [10]. Согласно данным литературы, проведение ПГТ-А пациентам старшего репродуктивного возраста улучшает исходы программ ВРТ. Однако результаты исследований в других группах пациентов не столь однозначны [11].

Частота ранних репродуктивных потерь в программах ВРТ составляет примерно 10–15% [12]. Одной из ведущих причин привычного выкидыша принято считать генетический фактор; при этом, чем меньше срок гестации, тем выше вероятность хромосомной анеуплоидии эмбриона [13]. Так, по результатам молекулярного кариотипирования в 65–70% случаев спонтанного самопроизвольного прерывания беременности до 10-й недели гестации диагностируются хромосомные аномалии абортивного материала [14]. Согласно опубликованным данным, проведение ПГТ-А может снизить риск спонтанного прерывания беременности в программах ВРТ [11].

Несмотря на колоссальное развитие ВРТ, около 60% женщин не способны забеременеть после первой программы экстракорпорального оплодотворения (ЭКО), а 20% пациенток – после третьей программы ЭКО [15]. Повторные неудачные попытки имплантации диагностируются примерно у каждой третьей женщины, использующей методы ВРТ для лечения бесплодия. Их причины могут быть ассоциированы с эмбриональным, маточным, ооцитарным, иммунологическими факторами, тромбофилическими состояниями, генетическими нарушениями у родителей, а также с тяжелой патозооспермией партнера [16, 17]. Считается, что роль эмбриона в повторных неудачных попытках имплантации составляет около 30-50%. Весомый вклад, по-видимому, вносят хромосомные аномалии эмбриона [18]. Существуют данные, свидетельствующее о двукратном увеличении частоты образования анеуплоидных эмбрионов с вовлечением 13, 16, 18, 21, 22, Х или Y хромосомы у женщин с повторными неудачными попытками имплантации в анамнезе, по сравнению с группой контроля [19].

Целесообразность проведения ПГТ-А при тяжелых нарушениях сперматогенеза у мужчин является спорной. Известно, что у пациентов с тяжелой олигоастенотератозооспермией отмечается высокая частота хромосомных аберраций, включая количественные и структурные аномалии кариотипа, которые могут приводить к сбоям в течении ключевых этапов первого мейотического деления и, как следствие, к образованию сперматозоидов и эмбрионов с несбалансированными хромосомными перестройками [20, 21]. Также было показано, что частота эуплоидных эмбрионов снижается, как у мужчин с низким содержанием морфологически нормальных сперматозоидов, так и с повышенной фрагментацией ДНК сперматозоидов [22–24]. Однако несколько недавно опубликованных исследований продемонстрировало отсутствие положительного влияния ПГТ-А на исходы программ ВРТ в данной группе пациентов [6–8].

Цель данного исследования: оценить влияние результата ПГТ-А на исходы программ ВРТ в различных группах пациентов.

Материалы и методы

В обсервационном исследовании было проанализировано 800 циклов ЭКО с криоконсервацией эмбрионов и последующими криопротоколами, проведенными на базе НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова в период с 2018 по 2021 гг.

На основании анамнеза супружеских пар было сформировано 4 группы пациентов:

  • I группу составили 165 супружеских пар со старшим репродуктивным возрастом женщины (38 лет и более), которые были разделены на 2 подгруппы: Iа (основная) включала 100 программ ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А и 52 криопротокола, Ib (контрольная) – 100 программ ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А и 61 криопротокол.
  • II группу составили 178 супружеских пар с бесплодием и привычным выкидышем в анамнезе (2 и более самопроизвольных прерываний беременности на сроке до 22 недель), которые были разделены на 2 подгруппы: IIа (основная) включала 100 циклов ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А и 90 криопротоколов, IIb (контрольная) – 100 циклов ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А и 84 криопротокола.
  • III группу составили 168 супружеских пар с повторными неудачными попытками имплантации (3 и более неудачных попыток селективного переноса «свежих» или размороженных эмбрионов), которые были разделены на 2 подгруппы: IIIа (основная) включала 100 циклов ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А и 88 криопротоколов, IIIb (контрольная) – 100 циклов ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А и 114 криопротоколов.
  • IV группу составили 164 супружеские пары с тяжелыми нарушениями сперматогенеза у мужчин (тяжелая олигоастенотератозооспермия), которые были разделены на 2 подгруппы: IVа (основная) включала 100 циклов ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А и 79 криопротоколов, IVb (контрольная) – 100 циклов ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А и 98 криопротоколов.

Критериями включения в исследуемые группы послужили: отсутствие наступления беременности в течение 1 года и более, нормальный кариотип супругов. Для I группы – возраст женщины 38 лет и более; для II группы – 2 и более самопроизвольных прерываний беременности на сроке до 22 недель в анамнезе, возраст женщины менее 35 лет; для III группы – наличие 3 и более неудачных попыток селективного переноса «свежих» или размороженных эмбрионов, возраст женщины менее 35 лет; для IV группы – концентрация сперматозоидов – менее 5 млн/мл, количество прогрессивно подвижных сперматозоидов (а+b) – менее 29%, количество морфологически нормальных форм сперматозоидов – 2% и менее по результатам спермограммы, возраст женщины менее 35 лет.

Критериями невключения в исследуемые группы послужили: хронический эндометрит, верифицированный при гистологическом исследовании, толщина эндометрия менее 7 мм, наружный генитальный эндометриоз III–IV cтадии, синдром поликистозных яичников, антифосфолипидный синдром, тромбофилии высокого риска тромбоэмболических осложнений, а также все состояния, являющиеся противопоказаниями к проведению ВРТ и беременности в соответствии с приказом МЗ РФ от 31 июля 2020 г. № 803н.

Всем супружеским парам проведено полное клинико-лабораторное обследование в соответствии с приказом МЗ РФ от 31 июля 2020 г. № 803н.

Овариальная стимуляция проводилась по стандартным протоколам с антагонистом гонадотропин-рилизинг-гормона (антГнРГ) или с агонистом гонадотропин-рилизинг-гормона (аГнРГ). Все эмбрионы культивировались в индивидуальных каплях в мультигазовых инкубаторах. Оценка качества полученных эмбрионов проводилась на 5-е сутки культивирования на основании морфологических критериев в соответствии с классификацией Гарднера (ESHRE 2011 «модифицированная» классификация D. Gardner). В основных группах всем эмбрионам хорошего и отличного качества (3ВВ и выше) проводилась биопсия клеток трофэктодермы с последующей криоконсервацией эмбриона. Полученные клетки трофэктодермы переносили в пробирки типа Eppendorf, содержащие лизирующий буфер, для последующего ПГТ-А, которое проводилось методом высокопроизводительного секвенирования ДНК нового поколения (NGS, next-generation sequencing). Эуплоидный по результатам ПГТ-А эмбрион переносили в полость матки в рамках криопротокола на фоне циклической гормональной терапии или в естественном менструальном цикле при достижении толщины эндометрия более 7 мм. В контрольных группах эмбрионы хорошего и отличного качества подвергались криоконсервации для последующего селективного переноса в полость матки в рамках криопротокола. На 10-й день после переноса эмбриона в полость матки проводился анализ крови на β-субъединицу хорионического горнадотропина человека (ХГЧ). Для диагностики клинической беременности при положительном результате анализа крови на β-ХГЧ через 21 день после переноса выполняли трансвагинальное ультразвуковое исследование. Дальнейшее наблюдение и ведение беременности осуществлялось в индивидуальном порядке лечащим врачом.

Статистический анализ

Проведен статистический анализ исходов программ ВРТ с ПГТ-А и без него в различных группах пациентов. Статистическая обработка данных выполнена с использованием программ IBM SРSS Statistics. Для описания категориальных бинарных данных использовали абсолютные значения и процентные доли от общего числа в группе. Определение вида распределения данных проводилась с помощью построения диаграмм размаха. Непрерывные переменные c ассиметричным распределением представлены в виде медианы и межквартильных значений (Ме (Q1; Q3)). Для оценки различий в исследуемых группах использовали непараметрический критерий Манна–Уитни. Сравнение результатов исходов программ ВРТ в основных и контрольных группах проводили с помощью критерия Хи-квадрат (χ2). За величину порогового уровня статистически значимых различий показателей в исследуемых группах принимали значения p≤0,05.

Результаты

Клинико-лабораторные данные пациентов представлены в таблице 1.

77-1.jpg (418 KB)

Исходы криопротоколов у пациенток старшего репродуктивного возраста представлены в таблице 2. Всего в Ia подгруппе (основная) было проанализировано 86 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,2) и 52 криопротокола. В контрольной Ib подгруппе – 79 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,3) и 61 криопротокол.

78-1.jpg (211 KB)

Всего в основной подгруппе (Ia) было получено и отправлено на ПГТ-А 211 эмбрионов из 305 бластоцист 5-х и 6-х суток культивирования, что составило 211/305 (69,2%). При этом доля эуплоидных эмбрионов составила 58/211 (27,5%). По результатам анализа исходов 52 криопротоколов в основной группе частота наступления клинической беременности составила 19/52 (36,5%), биохимических беременностей зафиксировано не было. Доля ранних репродуктивных потерь составила 3/19 (15,8%). Также однократно были зарегистрированы преждевременные роды – 1/19 (5,3%). Частота живорождения составила 16/19 (84,2%).

При анализе исходов в контрольной подгруппе (Ib) частота клинической беременности на перенос составила 7/61 (11,5%). Доля биохимических беременностей составила 1/61 (1,6%). Доля ранних репродуктивных потерь – 1/7 (14,3%), частота живорождения – 5/7 (71,4%). Также была зарегистрирована одна внематочная беременность – 1/7 (14,3%).

Таким образом, частота клинической беременности в Ia подгруппе была статистически значимо выше таковой в Ib подгруппе (р=0,002; ОР (95% ДИ)=3,18 (1,45; 6,97)). Однако не было выявлено статистически значимого увеличения родов живым плодом в Ia подгруппе, по сравнению с Ib подгруппой. Также не было выявлено статистически значимых различий в частоте ранних репродуктивных потерь.

Исходы криопротоколов у пациенток с привычным выкидышем представлены в таблице 3. Всего в основной (IIa подгруппе) было проанализировано 90 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,1) и 90 криопротоколов. В контрольной подгруппе (IIb) – 88 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,1) и 84 криопротокола.

Всего в IIa подгруппе было получено и отправлено на ПГТ-А 341 эмбрион из 583 бластоцисты 5-х и 6-х суток культивирования, что составило 58,5%. При этом доля эуплоидных эмбрионов составила 162/341 (47,5%). В рамках криопротокола было перенесено 90/162 (55,6%) эмбрионов. Частота наступления клинической беременности составила 28/90 (31,1%), биохимической беременности – 2/90 (2,2%). Частота ранних репродуктивных потерь составила 5/28 (17,9%), частота преждевременных родов – 2/28 (7,2%); частота живорождения – 23/28 (82,1%).

При анализе исходов в IIb подгруппе частота клинической беременности составила 24/84 (28,6%), биохимических беременностей – 1/84 (1,2%); частота ранних репродуктивных потерь – 11/24 (45,8%), частота поздних выкидышей – 1/24 (4,7%), частота преждевременных родов – 1/24 (4,7%); частота живорождения – 12/24 (50,0%).

Таким образом, не было выявлено статистически значимых различий в частоте клинической беременности в IIa и IIb подгруппах. Частота живорождения в IIa подгруппе статистически значимо выше, по сравнению с таковой в IIb подгруппе (р=0,015; ОР (95% ДИ) = 1,64 (1,06; 2,54)). Выявлено статистически значимое снижение частоты репродуктивных потерь в IIa подгруппе по сравнению с IIb подгруппой (р=0,031; ОР (95% ДИ)=0,39 (0,16; 0,96)).

Исходы криопротоколов у пациенток с повторными неудачными попытками имплантации представлены в таблице 4. Всего в основной группе было проанализировано 80 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,1) и 88 криопротоколов. В контрольной группе – 76 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,1) и 114 криопротоколов.

79-1.jpg (212 KB)

Всего в IIIa подгруппе было получено и отправлено на ПГТ-А 277 эмбрионов из 424 бластоцист 5-х и 6-х суток культивирования, что составило 65,33%. При этом доля эуплоидных эмбрионов составила 150/277 (54,2%). Частота наступления клинической беременности в основной подгруппе составила 29/88 (33,0%), биохимических беременностей зарегистрировано не было. Частота ранних репродуктивных потерь составила 2/29 (6,9%); частота живорождения – 27/29 (93,1%), среди них был зарегистрирован один случай рождения ребенка с врожденным пороком сердца (дефект межжелудочковой перегородки).

При анализе исходов в IIIb подгруппе частота клинической беременности составила 19/114 (16,7%); частота биохимических беременностей – 4/114 (3,5%). Частота ранних репродуктивных потерь составила 2/19 (10,5%), частота живорождения – 17/19 (89,4%).

Таким образом, выявлено статистически значимое увеличение частоты клинической беременности в IIIa подгруппе, по сравнению с таковой в IIIb подгруппе (p=0,007; ОР (95% ДИ)=1,98 (1,19; 3,28)). Частота живорождения и ранних репродуктивных потерь значимо не различались в основной и контрольной подгруппах.

Исходы криопротоколов у пациенток с тяжелой патозооспермией супруга представлены в таблице 5. Всего в основной подгруппе было проанализировано 85 супружеских пар, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,1) и 79 криопротоколов. В контрольной подгруппе – 92 супружеских пары, 100 циклов программ ЭКО/ИКСИ без ПГТ-А (среднее значение циклов на пациентку – 1,1) и 98 криопротоколов.

Всего в IVa подгруппе было получено и отправлено на ПГТ-А 286 эмбрионов из 429 бластоцист 5-х и 6-х суток культивирования, что составило 66,7%. При этом доля эуплоидных эмбрионов составила 158/286 (55,2%). Частота наступления клинической беременности составила 30/79 (38,0%), биохимических беременностей – 2/79 (2,5%). Частота ранних репродуктивных потерь составила 3/30 (10,0%), также был зарегистрирован поздний выкидыш – 1/30 (3,3%). Частота живорождения составила 27/30 (90,0%).

В IVb подгруппе частота беременности составила 39/98 (39,8%). Биохимических беременностей диагностировано не было. Частота ранних репродуктивных потерь составила 5/39 (12,8%), частота преждевременных родов – 1/39 (2,6%), частота живорождения – 34/39 (87,2%).

Таким образом, не было выявлено статистически значимых различий в частоте клинической беременности, а также в частоте ранних репродуктивных потерь и в частоте живорождения между IVa и IVb подгруппами.

Обсуждение

В последние годы отмечается тенденция к увеличению использования ПГТ-А в программах ВРТ. Так, если в 2016 г. частота проведения программ ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А составила 6%, в 2017 и 2018 гг. – 8%, то в 2019 г. уже 19% [2]. Считается, что применение ПГТ-А у супружеских пар с высоким риском образования анеуплоидных эмбрионов увеличивает частоту клинической беременности и живорождения, а также снижает частоту ранних репродуктивных потерь [11]. Однако все больше исследований демонстрируют спорные данные о влиянии ПГТ-А на исходы программ ВРТ в данных группах пациентов [11]. На сегодняшний день недостаточно достоверных данных, подтверждающих положительное влияние ПГТ-А на исходы программ ВРТ. В связи с этим целесообразность применения ПГТ-А в различных группах пациенток требует обсуждений.

В недавнем крупном обсервационном исследовании, включавшем 2538 женщин старшего репродуктивного возраста, было продемонстрировано положительное влияние ПГТ-А на исходы программ ВРТ. Отмечалось значительное увеличение частоты живорождения, снижение частоты ранних репродуктивных потерь и многоплодных беременностей в основной группе, по сравнению с контролем [25]. В нашем исследовании получены аналогичные результаты: у пациенток в возрасте 38 лет и старше частота клинической беременности была статистически значимо выше в группе ЭКО/ИКСИ+ПГТ-А, по сравнению с контролем. Вероятность родов живым плодом была выше в группе с ПГТ-А, по сравнению с контролем. Полученные данные подтверждают, что именно образование анеуплоидных эмбрионов у пациенток старшего репродуктивного возраста играет основную роль в неудачах ВРТ. Применение ПГТ-А в данной группе пациенток может нивелировать негативное влияние возраста на исход программы ВРТ при переносе эуплоидного эмбриона.

В крупнейшем на сегодняшний день исследовании, включавшем пациенток с идиопатическим привычным выкидышем разных возрастных групп, не было выявлено снижения частоты ранних репродуктивных потерь при использовании ПГТ-А [5]. Однако было продемонстрировано увеличение частоты клинических беременностей и живорождения при использовании ПГТ-А у женщин всех возрастных групп, в том числе младше 35 лет. Полученные результаты противоречат данным другого рандомизированного исследования, в котором частота клинических беременностей была выше только у женщин в возрасте от 35 до 40 лет, которые подвержены высокому риску образования анеуплоидных эмбрионов [26]. При этом ни в одной возрастной группе не было выявлено достоверных различий в частоте выкидышей и живорождения при использовании ПГТ-А, по сравнению с контролем. В нашем исследовании частота ранних репродуктивных потерь и живорождения была статистически значимо ниже в группе с ПГТ-А, по сравнению с контрольной. При этом частота наступления клинической беременности не различалась в обеих группах. Спорные результаты исследований могут быть связаны с различными методами проведения ПГТ-А. На результатах исследования также может сказаться ретроспективный анализ данных пациентов, недостаточное обследование пар, направленное на выявление других, не связанных с анеуплоидией, причин невынашивания. По-видимому, использование ПГТ-А может быть целесообразным в группе пациентов с привычным выкидышем при условии исключения других причин невынашивания беременности.

У пациентов с повторными неудачными попытками имплантации, согласно данным Sato et al. (2019), статистически значимых различий в показателях живорождения и частоте ранних репродуктивных потерь при использовании ПГТ-А и без него выявлено не было [27]. Однако частота имплантации была существенно выше в группе пациентов с ПГТ-А, по сравнению с контролем. Аналогичные результаты получены и в других исследованиях [28, 29]. Amelia Pantou et al. (2022) в своем исследовании продемонстрировали положительное влияние ПГТ-А и на частоту наступления клинической беременности, и на частоту живорождения [30]. В нашем исследовании также выявлено увеличение частоты наступления беременности при использовании ПГТ-А, по сравнению с контролем. Однако не было выявлено достоверных различий в частоте живорождения и ранних репродуктивных потерь между группами. По-видимому, перенос качественного здорового эмбриона играет более важную роль в исходах программ ВРТ, по сравнению с акушерско-гинекологическим анамнезом и, в том числе, с состоянием эндометрия. Однако на сегодняшний день опубликовано лишь небольшое количество исследований, направленных на оценку влияния ПГТ-А в данной группе пациентов. И, несмотря на то, что все они подтверждают улучшение исходов ВРТ после ПГТ-А, необходимо проведение многоцентровых рандомизированных контролируемых исследований с большей выборкой пациентов и более персонализированным подходом к выбору кандидатов для участия в работе.

Согласно данным нескольких исследований, у пациентов с мужским фактором бесплодия значительно возрастает частота образования мозаичных эмбрионов [31]. По результатам исследования Rossella Mazzilli et al. (2017), эмбрионы, полученные от пациентов с тяжелой патозооспермией, характеризуются сниженной скоростью оплодотворения и более медленным эмбриональным развитием на доимплантационном этапе [32]. Однако тяжелый мужской фактор не оказывал влияния на плоидность эмбрионов и их имплантационный потенциал. В недавнем исследовании Mehmet Resit Asoglu et al. (2022), включавшем пациентов с тяжелым мужским фактором было продемонстрировано отсутствие положительного влияния ПГТ-А на исходы программ ВРТ: не было статистически значимых различий ни в частоте клинической беременности, ни в частоте живорождения [33]. В нашем исследовании также не было продемонстрировано положительного влияния на исходы программ ВРТ у пациентов с тяжелой патозооспермией. По-видимому, тяжелый мужской фактор бесплодия не является критическим фактором в этиологии образования анеуплоидных эмбрионов. Это может быть связано с репаративной способностью ооцитов восстанавливать кариотип до момента активации зиготического генома или с тем фактом, что анеуплоидии отцовского генеза могут приводить к остановке в эмбриональном развитии на более ранних этапах [11]. Однако необходимы дальнейшие исследования для оценки влияния ПГТ-А на результативность программ ВРТ в данной группе пациентов.

Следует отметить, что отсутствие положительного влияния ПГТ-А на исходы программ ВРТ может быть связано и с ограничениями самого метода. Так, наиболее оптимальным среди всех существующих методов ПГТ-А является NGS, а самым безопасным с точки зрения инвазивности способом забора материала – биопсия клеток трофэктодермы. И хотя точность NGS стремится к 99%, не исключается получение ложноположительных результатов [11], что связано, по-видимому, с высокой частотой мозаицизма в эмбрионах человека и доказанной способностью бластоцисты к самокоррекции, то есть к активации апоптоза анеуплоидных клеток в процессе эмбрионального развития [11]. При этом в мозаичных, по результатам ПГТ-А, эмбрионах, доля анеуплоидных клеток в биопсийном материале не всегда отражает истинный хромосомный статус всего эмбриона. Так в исследовании Saifitdinova A.F. et al. (2020) показано, что в различных участках трофэктодермы и в клетках внутренней клеточной массы мозаичного эмбриона доля и вид мозаицизма могут различаться [34]. Согласно предварительным результатам исследования, если в бластоцисте методом ПГТ-А выявлен мозаичный набор хромосом, то вероятность эуплоидного хромосомного набора в других частях эмбриона мала. Следовательно, к переносу мозаичных эмбрионов в полость матки также следует относиться с осторожностью.

Заключение

ПГТ-А находится в фокусе современных научных исследований, направленных на оценку эффективности, безопасности, целесообразности применения в клинической практике и объективности результатов. На сегодняшний день это единственный метод, позволяющий с высокой точностью определить плоидность эмбриона и улучшить выбор эмбриона с оптимальным имплантационным потенциалом. Несмотря на это, роль ПГТ-А в улучшении исходов программ ВРТ все еще обсуждается. В нашем исследовании продемонстрировано улучшение исходов программ ВРТ у женщин старшего репродуктивного возраста, почти трехкратное уменьшение вероятности ранних репродуктивных потерь у женщин с привычным выкидышем, увеличение частоты клинической беременности у пациенток с повторными неудачными попытками имплантации. Однако не было выявлено статистически значимых улучшений результативности программ ВРТ у супружеских пар с тяжелой патозооспермией. Полученные результаты указывают на целесообразность применения ПГТ-А в отдельных группах пациентов. Однако проведение многоцентровых рандомизированных контролируемых исследований с качественным дизайном позволит дать более полную информацию о роли ПГТ-А в исходах программ ВРТ.

Список литературы

  1. Российская Ассоциация Репродукции Человека. Отчет за 2018 год. Доступно по: http://www.rahr.ru/registr_otchet.php
  2. Кулакова Е.В., Калинина Е.А., Трофимов Д.Ю., Макарова Н.П., Хечумян Л.Р., Дударова А.Х. Вспомогательные репродуктивные технологии у супружеских пар с высоким риском генетических нарушений. Преимплантационный генетический скрининг. Акушерство и гинекология. 2017; 8: 21-7.
  3. Fesahat F., Montazeri F., Hoseini S.M. Preimplantation genetic testing in assisted reproduction technology. J. Gynecol. Obstet. Hum. Reprod. 2020; 49(5): 101723. https://dx.doi.org/10.1016/j.jogoh.2020.101723.
  4. Киселева Ю.Ю., Кодылева Т.А., Кириллова А.О. Использование скрининговых тестов на выявление наиболее распространенных мутаций перед программой вспомогательных репродуктивных технологий. Проблемы репродукции. 2017; 23(2): 47-9.
  5. Bhatt S.J., Marchetto N.M., Roy J., Morelli S.S., McGovern P.G. Pregnancy outcomes following in vitro fertilization frozen embryo transfer (IVF-FET) with or without preimplantation genetic testing for aneuploidy (PGT-A) in women with recurrent pregnancy loss (RPL, with recurrent pregnancy loss (RPL): a SART-CORS study. Hum. Reprod. 2021; 36(8): 2339-44.https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deab117.
  6. Asoglu M.R., Celik C., Serefoglu E.C., Findikli N., Bahceci M. Preimplantation genetic testing for aneuploidy in severe male factor infertility. Reprod. Biomed. Online. 2020; 41(4): 595-603. https://dx.doi.org/10.1016/j.rbmo.2020.06.015.
  7. Rubio C., Bellver J., Rodrigo L., Castillón G., Guillén A., Vidal C. et al. In vitro fertilization with preimplantation genetic diagnosis for aneuploidies in advanced maternal age: a randomized, controlled study. Fertil. Steril. 2017; 107(5):1122-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.03.011.
  8. Munné S., Kaplan B., Frattarelli J.L., Child T., Nakhuda G., Shamma F.N. et al.; STAR Study Group. Preimplantation genetic testing for aneuploidy versus morphology as selection criteria for single frozen-thawed embryo transfer in good-prognosis patients: a multicenter randomized clinical trial. Fertil. Steril. 2019; 112(6): 1071-9.e7. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.07.1346.
  9. Министерство здравоохранения Российской Федерации. Женское бесплодие (современные подходы к диагностике и лечению). Клинические рекомендации. Протокол лечения. М.; 2019.
  10. Бейк Е.П., Коротченко О.Е., Гвоздева А.Д., Сыркашева А.Г., Долгушина Н.В. Роль преимплантационного генетического скрининга в повышении эффективности программ вспомогательных репродуктивных технологий у пациенток позднего репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2018; 4: 78-84.
  11. Greco E., Litwicka K., Minasi M.G., Cursio E., Greco P.F., Barillari P. Preimplantation genetic testing: where we are today. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(12): 4381. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21124381.
  12. Dhillon R.K., Hillman S.C., Morris R.K., McMullan D., Williams D., Coomarasamy A. et al. Additional information from chromosomal microarray analysis (CMA) over conventional karyotyping when diagnosing chromosomal abnormalities, in miscarriage: a systematic review and meta-analysis. BJOG. 2014; 121(1): 11-21. https://dx.doi.org/10.1111/1471-0528.12382.
  13. Philipp T., Philipp K., Reiner A., Beer F., Kalousek D.K. Embryoscopic and cytogenetic analysis of 233 missed abortions: factors involved in the pathogenesis of developmental defects of early failed pregnancies. Hum. Reprod. 2003; 18(8): 1724-32. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deg309.
  14. McQueen D.B., Lathi R.B. Miscarriage chromosome testing: Indications, benefits and methodologies. Semin. Perinatol. 2019; 43(2): 101-4.https://dx.doi.org/10.1053/j.semperi.2018.12.007.
  15. Liu L., Zhou F., Lin X., Li T., Tong X., Zhu H., Zhang S. Recurrent IVF failure with elevated progesterone on the day of hCG administration. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2013; 171(1): 78-83. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2013.08.025.
  16. Тетруашвили Н.К. Привычный выкидыш. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2017; 4: 70-87.
  17. Bashiri A., Halper K.I., Orvieto R. Recurrent implantation failure-update overview on etiology, diagnosis, treatment and future directions. Reprod. Biol. Endocrinol. 2018;.16(1): 121. https://dx.doi.org/10.1186/s12958-018-0414-2.
  18. Idelevich A., Vilella F. Mother and embryo cross-communication. Genes. 2020; 11(4): 376. https://dx.doi.org/10.3390/genes11040376.
  19. Tong J., Niu Y., Wan A., Zhang T. Next-Generation Sequencing (NGS)-based preimplantation genetic testing for aneuploidy (PGT-A) of trophectoderm biopsy for Recurrent Implantation Failure (RIF) patients: a retrospective study. Reprod. Sci. 2021; 28(7): 1923-9. https://dx.doi.org/10.1007/s43032-021-00519-0.
  20. Rodrigo L., Meseguer M., Mateu E., Mercader A., Peinado V., Bori L. et al. Sperm chromosomal abnormalities and their contribution to human embryo aneuploidy. Biol. Reprod. 2019; 101(6): 1091-101. https://dx.doi.org/10.1093/biolre/ioz125.
  21. Saei P., Bazrgar M., Gourabi H., Kariminejad R., Eftekhari-Yazdi P., Fakhri M. Frequency of sperm aneuploidy in oligoasthenoteratozoospermic (OAT) patients by comprehensive chromosome screening: a proof of concept. J. Reprod. Infertil. 2021; 22(1): 57-64. https://dx.doi.org/10.18502/jri.v22i1.4996.
  22. Киселева Ю.Ю., Азова М.М., Кодылева Т.А., Ушакова И.В., Кириллова А.О., Екимов А.Н., Ракитько А.С., Володяева Т.O., Мишиева Н.Г., Абубакиров A.Н. Результаты преимплатационного генетического скрининга эмбрионов у супружеских пар с фрагментацией ДНК сперматозоидов. Акушерство и гинекология. 2017; 8: 104-8.
  23. Киселева Ю.Ю., Азова М.М., Кодылева Т.А., Кириллова А.О., Екимов А.Н., Ракитько А.С., Мишиева Н.Г., Абубакиров А.Н. Увеличение анеуплоидий эмбрионов ассоциировано с пониженной долей морфологически нормальных сперматозоидов. Генетика. 2017; 53(12): 1458-62.
  24. Макарова Н.П., Лобанова Н.Н., Кулакова Е.В., Непша О.С., Екимов А.Н., Калинина Е.А. Влияние преимплантационного генетического тестирования на результаты программ вспомогательных репродуктивных технологий у супружеских пар с мужским фактором бесплодия. Акушерство и гинекология. 2021; 11: 154-64.
  25. Sacchi L., Albani E., Cesana A., Smeraldi A., Parini V., Fabiani M. et al. Preimplantation genetic testing for aneuploidy improves clinical, gestational, and neonatal outcomes in advanced maternal, age patients without compromising cumulative live-birth rate. J. Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(12): 2493-504. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01609-4.
  26. Sato T., Sugiura-Ogasawara M., Ozawa F., Yamamoto T., Kato T., Kurahashi H. et al. Preimplantation genetic testing for aneuploidy: A comparison of live birth rates in patients with, recurrent pregnancy loss due to embryonic aneuploidy or recurrent implantation failure. Hum. Reprod. 2019; 34(12): 2340-8.https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez229.
  27. Simopoulou M., Sfakianoudis K., Maziotis E., Tsioulou P., Grigoriadis S., Rapani A. et al. PGT-A: who and when? Α systematic review and network meta-analysis of RCTs. J. Assist. Reprod. Genet. 2021; 38(8): 1939-57.https://dx.doi.org/10.1007/s10815-021-02227-9.
  28. Greco E., Bono S., Ruberti A., Lobascio A.M., Greco P., Biricik A. et al. Comparative genomic hybridization selection of blastocysts for repeated implantation failure treatment: a pilot study. Biomed. Res. Int. 2014; 2014: 457913. https://dx.doi.org/10.1155/2014/457913.
  29. Sato T., Sugiura-Ogasawara M., Ozawa F., Yamamoto T., Kato T.,Kurahashi H. et al. Preimplantation genetic testing for aneuploidy: a comparison of live birth rates in patients with recurrent pregnancy loss due to embryonic aneuploidy or recurrent implantation failure. Hum. Reprod. 2019; 34(12): 2340-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez229. Erratum in: Hum Reprod. 2020; 35(1): 255.
  30. Pantou A., Mitrakos A., Kokkali G., Petroutsou K., Tounta G., Lazaros L. et al. The impact of preimplantation genetic testing for aneuploidies (PGT-A) on clinical outcomes in, high risk patients. J. Assist. Reprod. Genet. 2022; 39(6): 1341-9. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-022-02461-9.
  31. Tarozzi N., Nadalini M., Lagalla C., Coticchio G., Zacà C., Borini A. Male factor infertility impacts the rate of mosaic blastocysts in cycles of preimplantation genetic testing for aneuploidy. J. Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(10): 2047-55. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01584-w.
  32. Mazzilli R., Cimadomo D., Vaiarelli A., Capalbo A., Dovere L., Alviggi E. et al. Effect of the male factor on the clinical outcome of intracytoplasmic sperm injection combined with, preimplantation aneuploidy testing: observational longitudinal cohort study of 1,219 consecutive cycles. Fertil. Steril. 2017; 108(6): 961-72.e3. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.08.033.
  33. Lin X.H., Guo M.X., Wu D.D., Lu Y., Zhang J.L., Zhou C.L. et al. Preimplantation genetic testing for aneuploidy in severe male factor infertility: protocol for a multicenter randomised, controlled trial. BMJ Open. 2022; 12(7): e063030. https://dx.doi.org/10.1136/bmjopen-2022-063030.
  34. Saifitdinova A.F., Saifitdinova A.F., Glotov O.S., Polyakova I.V., Bichevaya N.K., Loginova Ju.A., Kuznetsova R.A. et al. Mosaicism in preimplantation human embryos. Integrative Physiology. 2020; 1(3): 225-30.https://dx.doi.org/10.33910/2687- 1270-2020-1-3-225-230.

Поступила 30.11.2022

Принята в печать 02.03.2023

Об авторах / Для корреспонденции

Перминова Светлана Григорьевна, д.м.н., доцент, в.н.с. научно-клинического отделения вспомогательных репродуктивных технологий им. Ф. Паулсена,
НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, perisvet@list.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Савостина Гузель Венеровна, аспирант, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, savostina2324@gmail.com,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Екимов Алексей Николаевич, врач-лабораторный генетик, руководитель группы преимплантационного генетического скрининга лаборатории молекулярно-генетических методов, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России, a_ekimov@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Белова Ирина Сергеевна, аспирант, НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова Минздрава России. irsenb@inbox.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Автор, ответственный за переписку: Гузель Венеровна Савостина, savostina2324@gmail.com

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.