Моделирование воспалительного процесса в репродуктивных органах самок мышей инбредных линий C57BL/6 и I/St при аэрозольном инфицировании Mycobacterium tuberculosis

Каюкова С.И., Донников А.Е., Бочарова И.В., Туманова Е.Л., Мнихович М.В., Никоненко Б.В.

1) ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», Москва, Россия

2) ФБГУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия

3) ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва, Россия

4) ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека», Москва, Россия

Цель. Создать модель воспалительного процесса в репродуктивных органах самок мышей с различной генетически детерминированной восприимчивостью к туберкулезной инфекции при аэрозольном инфицировании Mycobacterium tuberculosis (Mtb).

Материалы и методы. Самок мышей инбредных линий I/St (восприимчивая) и C57BL/6 (устойчивая) заражали аэрозольно Mtb H37Rv. Затем изучали развитие воспалительного процесса в репродуктивных органах и состояние вагинальной микробиоты.

Результаты. У мышей линии C57BL/6 к 3-му дню инфицирования Mtb регистрировали дисбаланс вагинальной флоры с тенденцией к формированию умеренного дисбиоза. У мышей линии I/St достоверно значимых изменений вагинальной микробиоты не отмечали, независимо от сроков инфицирования Mtb. Гистологическое исследование показало постепенное развитие воспалительного процесса в репродуктивных органах обеих линий, более выраженного у мышей I/St.

Заключение. При аэрозольном инфицировании Mtb в репродуктивных органах самок мышей последовательно развивается воспалительный процесс, более выраженный у линии I/St, высокочувствительной к туберкулезу.

Ключевые слова

M. tuberculosis
инбредные мыши
воспаление
репродуктивные органы
вагинальная микробиота

В настоящее время легочные и внелегочные формы туберкулеза у человека хорошо изучены и подробно описаны [1–3]. Экспериментальное моделирование туберкулеза легких у мышей проводилось многократно [4–11]. Изучение репродуктивных органов в эксперименте до недавнего времени проводили посредством моделирования генитального туберкулеза, используя внутривагинальный, внутриматочный, алиментарный и внутрибрюшинный пути введения Mycobacterium tuberculosis (Mtb) [12, 13]. Эти методики носят искусственный характер, далекий от реального механизма вовлечения половых органов в туберкулезный процесс у человека. В литературе имеется крайне малое количество экспериментальных работ, посвященных изменениям в репродуктивных органах при туберкулезе органов дыхания, в том числе с использованием самок мышей [14].

Примечательность лабораторной мыши для изучения репродуктивных проблем заключается в полной идентичности ее половой системы человеческому организму. У самки мыши имеются половые органы: яичники, маточные трубы (рога), матка, влагалище. Гистологическое строение половых органов мыши также аналогично эпителию человеческого организма [15]. Оценка влияния туберкулезной инфекции на органы половой системы представляет огромный научный интерес и внесет вклад в понимание патогенеза репродуктивных нарушений при активном туберкулезе органов дыхания.

Целью настоящего исследования явилось создание модели воспалительного процесса в репродуктивных органах самок мышей с различной генетически детерминированной восприимчивостью к туберкулезной инфекции при аэрозольном инфицировании Mtb.

Материалы и методы

Работа выполнена на самках мышей инбредных линий C57BL/6 и I/St, поддерживаемых в питомнике лабораторных животных ФГБНУ «ЦНИИТ». Мышей разводили в соответствии с методическими указаниями Министерства здравоохранения РФ № 755, INH Office of Laboratory Animal Welfare (OLAW). Все экспериментальные процедуры были одобрены Этическим комитетом ЦНИИТ по уходу за животными (протоколы IACUC № 4, 9, 14). Самки весом 20–22 г, которые не были в контакте с самцами, были заражены в аэрозольной камере Glas-Col (США) в дозе 100 КОЕ/легкое. Mtb вирулентного штамма H37Rv была любезно предоставлена Gilles Marchal (Институт Пастера, Париж) и сохранена в отделе иммунологии ФГБНУ «ЦНИИТ». Общее количество мышей (n=27) разделили на группы: 1-я – интактные мыши (n=3); 2-я – мыши линии C57BL/6 (n=12), которых последовательно выводили из эксперимента через 3 (n=3), 7 (n=3), 15 (n=3), 35 (n=3) дней от момента инфицирования; 3-я группа – мыши линии I/St (n=12), которых последовательно выводили из эксперимента через 3 (n=3), 7 (n=3), 15 (n=3), 35 (n=3) дней от момента инфицирования.

Вагинальную флору анализировали с помощью тест-системы «Фемофлор», основанной на методе полимеразной цепной реакции в режиме реального времени [14, 16]. Для этого до инфицирования (день 0), а также через 3, 7, 15, 35 дней после инфицирования у каждой мыши были взяты индивидуальные образцы вагинальных мазков и помещены в гуанидин тиоцианат-фенол-хлороформ (тризол). Для гистологического исследования один маточный рог помещали в 10% формалин. Из фиксированных образцов готовили срезы и окрашивали гематоксилин-эозином. Морфологическое исследование органов репродуктивной системы соотносили с фазой эстрального цикла. Наиболее объективные данные получали у мышей в фазе метаэструса и диэструса. Степень выраженности эндометрита при гистологическом исследовании определяли согласно методике Эллиниди В.Н. и соавт. [17] с учетом морфологических признаков: наличие воспалительных инфильтратов из лимфоцитов, макрофагов, эозинофилов с расположением вокруг желез и кровеносных сосудов, наличие в инфильтратах плазматических клеток, наличие очагового фиброзирования стромы эндометрия, наличие склеротических изменений стенок спиральных артерий эндометрия, формирование сосудов капиллярного и синусоидного типов.

Каждый морфологический признак оценивали в 1 балл. Поражение эндометрия оценивали в 10 полях зрения. По сумме баллов оценивали степень выраженности эндометрита: от 1 до 4 баллов – легкая степень, от 5 до 7 баллов – средняя степень, 8–10 баллов – тяжелая степень.

Для микробиологического и молекулярно-генетического исследования на наличие Mtb и ДНК Mtb другой маточный рог помещали в фосфатный буфер и гомогенизировали; в 1 мл тризола вносили по 100 мкл гомогената.

Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием лицензионной программы Microsoft Excel, статистического пакета IBM SPSS Statistics v.21 (2012 г.). В качестве меры центральной тенденции была выбрана медиана (Me), а в качестве интервальной оценки – верхний (Q3) и нижний квартили (Q1). Результаты представлены в виде Me (L–H). Для оценки значимости межгрупповых различий применялся U-критерий Манна-Уитни для несвязанных совокупностей. Статистически значимыми считались различия при р<0,05 (95-й уровень значимости).

Результаты и обсуждение

При исследовании животных 1-й (контрольной) группы было показано, что вагинальная флора характеризуется общей бактериальной массой (ОБМ) – 103–104 геном-эквивалента/мл, наличием единичных лактобацилл и аэробно-анаэробным типом биотопа. Микробиологическое и молекулярно-генетическое исследования вагинальных мазков, легких, маточных рогов выявили отсутствие Mtb, ДНК Mtb. Морфологическое исследование срезов легких и маточных рогов показало наличие нормального гистологического строения данных органов.

Анализ вагинальной микробиоты у мышей 2-й группы (C57BL/6) показал достоверное увеличение ОБМ уже на 3-е сутки инфицирования Mtb – с 2,8 (2,5;3,2) до 5,2 (4,6;6,0) (р=0,043), несколько снижаясь к 35-му дню после заражения Mtb до 3,8 (4,6;3,5). Среди мышей 3-й группы (I/St) ОБМ практически не менялась на протяжении всего периода наблюдения: до инфицирования – 3,8 (3,0;4,9), на 35-й день инфицирования Mtb – 3,2 (2,8;3,6). Вагинальный микробиоценоз у самок мышей 2-й группы (C57BL/6) через 3 дня после инфицирования Mtb характеризовался достоверным повышением Enterobacteriaceae spp. – с 2,2 (1,0;2,5) до 4,2 (3,3;4,9) (р=0,017) с последующим снижением через 35 дней после инфицирования Mtb до 2,3 (2,2;3,2). Отмечали также через 35 дней после инфицирования Mtb рост Eubacterium spp. – с 1,2 (0,0;2,6) до 2,3 (0,0;2,6); Megasphaera spp. – с 0,0 (0,0;0,0) до 1,2 (0;1,4); Gardnerella vaginalis – с 1,4 (0,0;2,8) до 3,2 (0;3,5), без статистически значимой разницы. Напротив, у мышей 3-й группы (I/St) через 35 дней после инфицирования по сравнению с данными до инфицирования наблюдали снижение Enterobacteriaceae spp. – с 3,4 (2,9;3,8) до 1,6 (0,0;2,4) и Candida spp. – с 3,0 (3,0;3,1) до 2,6 (0,0;3,0); незначительное повышение массы Lachnobacterium spp. /Clostridium spp. с 1,2 (0,3;2,3) до 1,7 (0,0;2,6), без статистически значимой разницы. У мышей обеих линий, независимо от сроков инфицирования, не выявляли Lactobacillus spp., Peptostreptococcus spp., Sneathia spp./Leptotrihia spp./Fusobacterium spp., Atopobium vaginae spp., Ureaplasma urealyticum.

Таким образом, у самок мышей обеих линий регистрируются разные изменения вагинальной микробиоты: статистически значимый дисбаланс с тенденцией к формированию умеренного дисбиоза на ранних сроках инфицирования Mtb у мышей линии C57BL/6 и отсутствие статистически значимых изменений у мышей линии I/St, независимо от сроков инфицирования Mtb (рис. 1–2).

Проведено морфологическое исследование репродуктивных органов на 3-е сутки после аэрозольного инфицирования Mtb у мышей 2-й и 3-й групп (C57BL/6, I/St). В обеих группах установлено нормальное строение эндометрия: слизистая оболочка покрыта высоким призматическим эпителием, имеются железы пролиферативного типа. Эпителиоциты расположены у основания клетки, с интенсивным окрашиванием и немногочисленными митозами. Цитоплазма базофильная. Апикальный край эпителиальных клеток ровный, четко очерченный. Строма состоит из веретенообразных клеток, отмечаются интерстициальный отек, полнокровные сосуды, умеренно выраженная периваскулярная и перигландулярная лимфоцитарно-плазмоцитарная инфильтрация.

Через 7 дней после аэрозольного инфицирования Mtb у мышей 3-й группы (линии I/St) выявляли картину хронического неспецифического эндометрита в виде выраженной перигландулярной инфильтрации лимфоцитами, эозинофилами с примесью плазмоцитов (рис. 3, а), что позволяет говорить о хроническом эндометрите легкой степени выраженности (1+2). Имеет место очаговый воспалительный процесс, в большей части исследуемого материала воспалительные изменения выражены минимально. Во 2-й группе мышей (линии C57BL/6) подобных гистологических изменений в репродуктивных органах не наблюдали (рис. 3, б).

Через 15 дней после аэрозольного инфицирования Mtb у мышей 2-й и 3-й групп (C57BL/6 и I/St) в экссудате, расположенном перигландулярно, периваскулярно и очагово, среди интерстициального отека отмечаются увеличение эозинофилов и их гнездное расположение, преимущественно вокруг сосудов, местами контактируя с перицитами. Выраженность межлинейных изменений не существенная.

Через 35 дней после аэрозольного инфицирования Mtb у мышей 3-й группы (линии I/St) в эндометрии отмечается более выраженная и распространенная воспалительная реакция. Слизистая оболочка эндометрия покрыта высоким призматическим эпителием. В эпителии некоторых желез обнаруживаются субнуклеарные вакуоли. Строма сочная, разрыхлена, состоит из веретенообразных клеток; ядра клеток крупные, округлые; определяются фокусы фиброза и периваскулярная, перигландулярная лимфо-плазмоцитарная инфильтрация. Сосуды несколько извитые, расположены на поверхности эндометрия, перигландулярно и периваскулярно, с очаговым фиброзом. Местами отмечается очаговое скопление лимфоцитов в строме, по типу формирования лимфоидных фолликулов (рис. 3, в). В данной группе имеет место хронический эндометрит тяжелой степени выраженности (4+3), распространенный воспалительный процесс в эндометрии. У мышей 2-й группы (линии C57BL/6) гистологические признаки воспаления в репродуктивных органах были менее выраженными (рис. 3, г) – склеротические изменения стенок спиральных артерий эндометрия не определяли (3+3); хронический эндометрит средней степени выраженности. При исследовании легких мышей 2-й и 3-й групп через 35 дней после инфицирования Mtb обнаружены гистологические признаки туберкулезного поражения (рис 3, д, е).

При микробиологическом и молекулярно-генетическом исследованиях репродуктивных органов мышей 2-й и 3-й групп (C57BL/6 и I/St) Mtb и ДНК Mtb обнаружены не были. Микробиологическое исследование легочной ткани мышей 2-й и 3-й групп показало высокую бактериальную нагрузку через 35 дней после аэрозольного инфицирования Mtb – 5,12 (4,98;5,32) у C57BL/6 и 6,39 (6,21;6,47) у I/St.

Таким образом, нами установлены гистологические признаки воспалительного процесса в репродуктивных органах самок мышей 3-й группы (линии I/St) на фоне условного нормоценоза через 35 дней после аэрозольного инфицирования Mtb. У самок мышей 2-й группы (линии C57BL/6) в этот же период времени отмечали менее выраженный воспалительный процесс в репродуктивных органах на фоне дисбаланса вагинальной флоры с тенденцией к формированию умеренного дисбиоза. Воспалительные изменения в репродуктивных органах у мышей 2-й и 3-й групп нарастали по мере прогрессирования туберкулезной инфекции в легких.

Заключение

Туберкулез является системной инфекцией, характеризующейся развитием параспецифических реакций в различных системах макроорганизма, в том числе и в репродуктивных органах. Аэрозольный путь инфицирования Mtb максимально приближает экспериментальную модель развития легочного туберкулеза к реальному патогенетическому механизму у человека. При этом огромное значение имеет индивидуальная восприимчивость к туберкулезной инфекции, которая обусловлена генетической предрасположенностью. Использование двух оппозитных инбредных линий мышей – устойчивой и чувствительной к туберкулезу (C57BL/6 и I/St) дает понимание, почему скорость и интенсивность воспалительного процесса в репродуктивных органах бывают индивидуальными. При этом немаловажным фактором является последовательность процессов во взаимоотношениях макро- и микроорганизма: прогрессивное увеличение бактериальной нагрузки и формирование туберкулезного поражения в легких; изменения в микробиоте влагалища от условного нормоценоза к умеренному дисбиозу; последовательное развитие воспалительного процесса в репродуктивных органах (матке и маточных рогах). Следует отметить, что, по результатам исследования вагинальной микробиоты, пока трудно сделать окончательные выводы, но мыши линий C57BL/6 и I/St показали межлинейные различия по этому признаку на ранних сроках инфицирования Mtb. Многократные микробиологические, молекулярно-генетические и морфологические исследования репродуктивных органов самок мышей в проведенных нами ранее экспериментальных моделях туберкулеза убедительно демонстрируют последовательное развитие воспалительного процесса, независимо от способа инфицирования Mtb и выбора линии мышей.

Список литературы

  1. Zumla A., Raviglione M., Hafner R., von Reyn C.F. Tuberculosis. N. Engl. J. Med. 2013; 368(8): 745-55. https://doi.org/10.1056/NEJMra1200894.
  2. Pang Y., An J., Shu W., Huo F., Chu N., Gao M. et al. Epidemiology of Extrapulmonary tuberculosis among inpatients, China, 2008-2017. Emerg. Infect. Dis. 2019; 25(3): 457-64. https://doi.org/10.3201/eid2503.180572.
  3. Wang H.Y., Lu J.J., Chang C.Y., Chou W.P., Hsieh J.C., Lin C.R., Wu M.H. Development of a high sensitivity TaqMan-based PCR assay for the specific detection of Mycobacterium tuberculosis complex in both pulmonary and extrapulmonary specimens. Sci. Rep. 2019; 9(1): 113. https://doi.org/10.1038/s41598-018-33804-1.
  4. Apt A.S. Are mouse models of human mycobacterial diseases relevant? Genetics says: ’yes!’. Immunology. 2011; 134(2): 109-15. https://doi.org/10.1111/j.1365-2567.2011.03472.x.
  5. O’Garra A., Redford P.S., McNab F.W., Bloom C.I., Wilkinson R.J., Berry M.P.R. The immune response in tuberculosis. Ann. Rev. Immunol. 2013; 31: 475-527. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-032712-095939.
  6. Nikonenko B.V., Apt A.S. Drug testing in mouse models of tuberculosis and nontuberculous mycobacterial infections. Tuberculosis (Edinb.). 2013; 93(3): 285-90. https://doi.org/10.1016/j.tube.2013.02.010.
  7. Nikonenko B., Reddy V.M., Bogatcheva E., Protopopova M., Einck L., Nacy C. Therapeutic efficacy of SQ641-NE against Mycobacterium tuberculosis. Antimicrob. Agents Chemother. 2014; 58(1): 587-9. https://doi.org/10.1128/AAC.01254-13.
  8. Nikonenko B.V., Bocharova I.V., Korotetskaya M.V., Averbach M.M., Apt A.S. Efficacy of isoniazid therapy in mice with opposite susceptibility to M. tuberculosis infection. Mycobact. Dis. 2017; 7(4): 2161-8. https://doi.org/10.4172/2161-1068.1000251.
  9. Logunova N., Korotetskaya M., Polshakov V., Apt A. The QTL within the H2 complex involved in the control of tuberculosis infection in mice is the classical class II H2-Ab1 gene. PLoS Genet. 2015; 11(11): e1005672. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1005672.
  10. Yeremeev V., Linge I., Kondratieva T., Apt A. Neutrophils exacerbate tuberculosis infection in genetically susceptible mice. Tuberculosis (Edinb.). 2015; 95(4): 447-51. https://doi.org/10.1016/j.tube.2015.03.007.
  11. Ammerman N.C., Swanson R.V., Tapley A., Moodley C., Ngcobo B., Adamson J. et al. Clofazimine has delayed antimicrobial activity against Mycobacterium tuberculosis both in vitro and in vivo. J. Antimicrob. Chemother. 2017; 72(2): 455-61. https://doi.org/10.1093/jac/dkw417.
  12. Orme I.M. The mouse as a useful model of tuberculosis. Tuberculosis (Edinb.). 2003; 83(1-3): 12-5.
  13. Palanisamy G.S., Smith E.E., Shanley C.A., Ordway D.J., Orme I.M., Basaraba R.J. Disseminated disease severity as a measure of virulence of Mycobacterium tuberculosis in the guinea pig model. Tuberculosis (Edinb.). 2008; 88(4): 295-306. https://doi.org/10.1016/j.tube.2007.12.003.
  14. Сухих Г.Т., Каюкова С.И., Бочарова И.В., Донников А.Е., Лепеха Л.Н., Демихова О.В., Уварова Е.В., Березовский Ю.С., Смирнова Т.Г. Особенности воспалительного процесса репродуктивных органов самок мышей линии C57BL/6 при экспериментальном туберкулезе. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2015; 160(12): 787-90.
  15. Ноздрачев А.Д., Поляков Е.Л., Маслюков П.М. Анатомия лабораторной мыши. Санкт-Петербург; 2012: 139-54.
  16. Ворошилина Е.С., Тумбинская Л.В., Донников А.Е., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? Акушерство и гинекология. 2011; 1: 57-65.
  17. Патент 2674155 С1 РФ. Способ определения стадии клинического течения хронического эндометрита, степени активности воспаления и выраженности фиброза с установлением прогноза имплантации и нарушения рецептивности эндометрия. Эллиниди В.Н., Феоктистов А.А., Обидняк Д.М., Кондрина Е.Ф. ФГБУ «Всероссийский Центр экстренной и радиационной медицины им. А.М. Никифорова». Заявлено 27.09.2017. Опубликовано 05.12.2018; Бюл. №34.

Поступила 19.03.2019

Принята в печать 19.04.2019

Об авторах / Для корреспонденции

Каюкова Светлана Ивановна, к.м.н., старший научный сотрудник ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза». Тел.: +7 (915)396-8534. E-mail: kajukovalnp@gmail.com.
Адрес: 107564 Россия, Москва, Яузская аллея, д. 2.
Донников Андрей Евгеньевич, к.м.н., зав. лабораторией молекулярно-генетических методов ФБГУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России.  Тел.: +7 (903)684-5247. E-mail: donnikov@dna-technology.ru.
Адрес: 117997 Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Бочарова Ирина Владимировна, к.б.н., заведующая виварием ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза». Тел.: +7 (915) 359-5598. E-mail: 3595598@mail.ru. Адрес: 107564 Россия, Москва, Яузская аллея, д. 2.
Туманова Елена Леонидовна, д.м.н., профессор, зав. кафедрой патологической анатомии и клинической патологической анатомии педиатрического факультета ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова». Тел.: +7 (903)769-62-85. E-mail: elena07tumanova@yandex.ru. Адрес: 117997 Россия, Москва, ул. Островитянова, д. 1.
Мнихович Максим Валерьевич, к.м.н., старший научный сотрудник ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека». Тел.: +7 (903)641-8285. E-mail: mnichmaxim@yandex.ru. Адрес: 117418 Россия, Москва, ул. Цюрупы, д. 3.
Никоненко Борис Владимирович, д.м.н., ведущий научный сотрудник ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза». Тел.: +7 (985)951-9578. E-mail: boris.nikonenko52@gmail.com. Адрес: 107564 Россия, Москва, Яузская аллея, д. 2.

Для цитирования: Каюкова С.И., Донников А.Е., Бочарова И.В., Туманова Е.Л., Мнихович М.В., Никоненко Б.В. Моделирование воспалительного процесса в репродуктивных органах самок мышей инбредных линий C57BL/6 и I/ST при аэрозольном инфицировании Mycobacterium tuberculosis. Акушерство и гинекология. 2019; 9:118-125.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.9.118-125

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.