Потенцирование активности антибиотиков метаболитами нормальной вагинальной микрофлоры
Цель исследования. Изучение влияния метаболитов лактобацилл, выделенных от здоровых женщин, и пробиотического штамма LCR35 на чувствительность к антибиотикам.Сгибнев А.В., Кремлева Е.А.
Материал и методы. Изучали влияние Н2О2, лактата и сурфактантов, полученных от 24 вагинальных Lactobacillus spp., и метаболитов LCR35 на чувствительность к антибиотикам 172 штаммов условно-патогенных бактерий.
Результаты. Наиболее эффективными в повышении чувствительности бактерий к антибиотикам были пероксид водорода и сурфактанты, но не молочная кислота. LCR35 повышала чувствительность к антибиотикам всех тест-штаммов, в большей мере – G. vaginalis, E.coli и Klebsiella spp.
Заключение. Обнаружен феномен потенцирования действия антибиотиков метаболитами вагинальных лактобацилл и пробиотического штамма LCR35. Для эффективной терапии воспалительных заболеваний необходимо учитывать состояние нормальной микрофлоры на момент применения антибиотиков, при необходимости восполняя ее дефицит пробиотическими штаммами, способными к продукции «ассистентов антибиотиков».
Ключевые слова
антибиотикорезистентность
лактобациллы
молочная кислота
пероксид водорода
поверхностно-активные вещества
Список литературы
1. Women and health: today’s evidence, tomorrow’s agenda. Geneva: World Health Organization; 2009. Available at: http://apps.who.int/iris/bitstream/10665/44168/1/9789241563857_eng.pd
2. Додова Е.Г., Аполихина И.А., Горбунова Е.А., Бородина Е.А. Комплексное лечение воспалительных заболеваний нижних отделов генитального тракта у женщин. Акушерство и гинекология. 2015; 6: 129-35.
3. Levy S.B., Marshall B. Antibacterial resistance worldwide: causes, challenges and responses. Nat. Med. 2004; 10(12, Suppl.): S122-9.
4. Bancroft E.A. Antimicrobial resistance: it’s not just for hospitals. JAMA. 2007; 298(15):1803-4.
5. Roca I., Akova M., Baquero F., Carlet J., Cavaleri M., Coenen S. et al. The global threat of antimicrobial resistance: science for intervention. New Microbes New Infect. 2015; 6: 22-9.
6. Worthington R.J., Melander C. Combination approaches to combat multidrug-resistant bacteria. Trends Biotechnol. 2013; 31(3):177-84.
7. Viens A.M., Littmann J. Is Antimicrobial resistance a slowly emerging disaster? Public Health Ethics. 2015; 8(3): 255-65.
8. Mandal S.M., Roy A., Ghosh A.K., Hazra T.K., Basak A., Franco O.L. Challenges and future prospects of antibiotic therapy: from peptides to phages utilization. Front. Pharmacol. 2014; 5: 105.
9. Mishra R.K., Segal E., Lipovsky A., Natan M., Banin E., Gedanken A. New life for an old antibiotic. ACS Appl. Mater. Interfaces. 2015; 7(13): 7324-33.
10. Macklaim J.M., Clemente J.C., Knight R., Gloor G.B., Reid G. Changes in vaginal microbiota following antimicrobial and probiotic therapy. Microb. Ecol. Health Dis. 2015; 26: 27799.
11. Bodean O., Munteanu O., Cirstoiu C., Secara D., Cirstoiu M. Probiotics - a helpful additional therapy for bacterial vaginosis. J. Med. Life. 2013; 6(4): 434-6.
12. Sgibnev A., Kremleva E. Vaginal protection by H2O2-producing lactobacilli. Jundishapur J. Microbiol. 2015; 8(10): e22913.
13. Aldunate M., Srbinovski D., Hearps A.C., Latham C.F., Ramsland P.A., Gugasyan R. et al. Antimicrobial and immune modulatory effects of lactic acid and short chain fatty acids produced by vaginal microbiota associated with eubiosis and bacterial vaginosis. Front. Physiol. 2015; 6: 164.
14. O’Hanlon D.E., Moench T.R., Cone R.A. Vaginal pH and microbicidal lactic acid when lactobacilli dominate the microbiota. PloS One. 2013; 8(11): e80074.
15. Sambanthamoorthy K., Feng X., Patel R., Patel S., Paranavitana C. Antimicrobial and antibiofilm potential of biosurfactants isolated from lactobacilli against multi-drug-resistant pathogens. BMC Microbiology. 2014; 14: 197.
16. Shokouhfard M., Kermanshahi R.K., Shahandashti R.V., Feizabadi M.M., Teimourian S. The inhibitory effect of a Lactobacillus acidophilus derived biosurfactant on biofilm producer Serratia marcescens. Iran. J. Basic Med. Sci. 2015; 18(10): 1001-7.
17. Whitman W.B., Goodfellow M., Kämpfer P., Busse H.-J., Trujillo M.E., Ludwig W. Bergey’s manual of systematic bacteriology. 2nd ed. vol. 5(Pt A and B). New York: Springer-Verlag; 2012.
18. Willumsen P.A., Karlson U. Screening of bacteria, isolated from PAH-contaminated soils, for production of biosurfactants and bioemulsifiers. Biodegradation. 1997; 7(5): 415-23.
19. CLSI. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically : approved standard. 10th ed. CLSI document M07-A10. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2015.
20. Савичева А.М., Рыбина Е.В. Исследование in vitro роста, размножения, антибиотикорезистентности, конкурентных взаимоотношений штамма Lactobacillus casei rhamnosus. Акушерство и гинекология. 2014; 7: 79-83.
21. Borges S., Silva J., Teixeira P. The role of lactobacilli and probiotics in maintaining vaginal health. Arch. Gynecol. Obstet. 2014; 289(3): 479-89.
22. Dover S.E., Aroutcheva A.A., Faro S., Chikindas M.L. Natural antimicrobials and their role in vaginal health: a short review. Int. J. Probiotics Prebiotics. 2008; 3(4): 219-30.
23. Albesa I., Becerra M.C., Battán P.C., Páez P.L. Oxidative stress involved in the antibacterial action of different antibiotics. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004; 317(2): 605-9.
24. Dwyer D.J., Belenky P.A., Yang J.H., MacDonald I.C., Martell J.D., Takahashi N. et al. Antibiotics induce redox-related physiological alterations as part of their lethality. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014; 111(20): E2100-9.
25. Kohanski M.A., Dwyer D.J., Hayete B., Lawrence C.A., Collins J.J. A common mechanism of cellular death induced by bactericidal antibiotics. Cell. 2007; 130(5): 797-810.
26. Grant S.S., Hung D.T. Persistent bacterial infections, antibiotic tolerance, and the oxidative stress response. Virulence. 2013; 4(4): 273-83.
27. Bernier S.P., Létoffé S., Delepierre M., Ghigo J.M. Biogenic ammonia modifies antibiotic resistance at a distance in physically separated bacteria. Mol. Microbiol. 2011; 81(3): 705-16.
Поступила 07.02.2017
Принята в печать 17.02.2017
Об авторах / Для корреспонденции
Сгибнев Андрей Викторович, д.б.н., доцент, в.н.с. лаборатории по изучению механизмов формирования микробиоценозов человека; ФГБУН Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН. Адрес: 460000, Россия, Оренбург, ул. Пионерская, д. 11. Телефон: 8 (3532) 77-05-12. E-mail: andrej-sgibnev@yandex.ruКремлева Елена Александровна, д.м.н., в.н.с. лаборатории по изучению механизмов формирования микробиоценозов человека, ФГБУН Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН; доцент кафедры акушерства и гинекологии ГБОУ ВПО Оренбургский государственный медицинский университет
Минздрава России. Адрес: 460000, Россия, Оренбург, ул. Пионерская, д. 11. Телефон: 8 (3532) 77-05-12, 8 (919) 862-12-36. E-mail: kremlena1@mail.ru
Для цитирования: Сгибнев А.В., Кремлева Е.А.
Потенцирование активности антибиотиков метаболитами нормальной
вагинальной микрофлоры. Акушерство и гинекология. 2017; 3: 108-14.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.3.108-14
Также по теме
