Характеристика изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости при заболеваниях шейки матки, ассоциированных с ВПЧ-инфекцией

Зардиашвили М.Д., Франкевич В.Е., Назарова Н.М., Бугрова А.Е., Кононихин А.С., Бржозовский А.Г., Стародубцева Н.Л., Асатурова А.В., Сухих Г.Т.

1ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва 2Московский физико-технический институт, Долгопрудный, Россия 3Учреждение РАН ГНЦ РФ – Институт медико-биологических проблем РАН, Москва 4Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН, Москва
Цель исследования. Характеристика изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости для оценки степени тяжести ВПЧ-ассоциированных поражений шейки матки у пациенток репродуктивного возраста.
Материал и методы. В исследовании приняли участие 30 пациенток, имеющих различные формы ВПЧ-ассоциированных поражений шейки матки (ASCUS, LSIL и HSIL). Из образцов цервиковагинальной жидкости (ЦВЖ) выделялись белки для дальнейшего протеомного анализа методом тандемной хромато-масс-спектрометрии (ВЭЖХ-МС/МС). Полуколичественный анализ данных, включающий идентификацию и аннотацию белков, осуществлялся с использованием программных пакетов MaxQuant и Perseus.
Результаты. Были определены белковые панели, специфичные для различных форм ВПЧ-ассоциированных поражений шейки матки (ASCUS, LSIL и HSIL). Первая группа белков (P4HB, HSPA8, C4BPA и др.) характеризует ранние изменения, ассоциированные с ВПЧ-инфекцией и связанные с поражением эпителия шейки матки, в том числе проникновение вируса в клетку и его транскрипцию, нарушение функции системы комплемента. Вторая группа белков (PRDX5, YWHAE, LRG1 и др.) принимает непосредственное участие в развитии неоплазий шейки матки и их прогрессировании, характеризует поздние изменения, в частности, снижение процесса апоптоза, нарушение дифференцировки и созревания эпителия, трансформацию атипических клеток.
Заключение. Таким образом, анализ протеома ЦВЖ позволяет изучать молекулярные механизмы патогенеза ВПЧ-ассоциированных заболеваний шейки матки и дифференцировать изменения эпителия на ранних этапах развития.

Ключевые слова

цервикальные интраэпителиальные неоплазии
ВПЧ
протеомика
масс-спектрометрия
цервиковагинальная жидкость

Вирус папилломы человека (ВПЧ) высокого онкогенного риска является главным этиологическим фактором развития неоплазий и рака шейки матки (РШМ) [1]. Известно, что РШМ занимает одну из лидирующих позиций в структуре онкологических заболеваний и смертности у женщин, что является важной медицинской и социальной проблемой. По данным ВОЗ, ежегодно в мире выявляются 493,2 тысячи новых случаев РШМ [2].

Известно, что в большинстве случаев ВПЧ способно самостоятельно элиминироваться из организма. При персистенции ВПЧ в течение 3 лет у 27% женщин развиваются цервикальные интраэпителиальные неоплазии (ЦИН) тяжелой степени [3]. Это обуславливает важность диагностики ВПЧ-ассоциированных заболеваний шейки матки на ранних этапах их развития [4]. В связи с этим особое значение приобретают различные исследования и анализ молекулярного состава биологических жидкостей (цервиковагинальная жидкость, фоликулярная жидкость, кровь, моча и др.) и тканей современными точными и высокоспецифичными методами, в частности, методом масс-спектрометрии (МC). МС – это метод качественного и количественного определения веществ в пробе. Масс-спектрометрия позволяет изучать молекулярные механизмы патогенеза неоплазий и злокачественных заболеваний репродуктивной системы и выявлять изменения на ранних этапах [5].

Диагностический потенциал протеомного состава цервиковагинальной жидкости (ЦВЖ) обусловлен тем, что помимо продуктов жизнедеятельности микроорганизмов, населяющих нижний отдел женского генитального тракта, ЦВЖ включает в себя отслоившиеся эпителиальные клетки, шеечную слизь, секрет желез эндометрия и маточных труб, воду, муцин, белки, углеводы и неорганические вещества [6]. ЦВЖ имеет огромное значение в поддержании гомеостаза и в иммунной защите женского полового тракта. В виду простоты забора материала для исследования и благодаря изобилию молекулярного состава, ЦВЖ представляет большой интерес для изучения. Ранние исследования доказали роль ЦВЖ в защите организма от вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) в связи с наличием в ее составе ряда белков и пептидов, в частности кальгранулина А/В, лизоцима, человеческого нейтрофильного пептида, елафина и некоторых гистонов [7, 8]. Белковый состав ЦВЖ подвергается изменению при различных заболеваниях генитального тракта женщины, в том числе при поражении эпителия шейки матки, ассоциированные с папилломовирусной инфекцией.

Целью данной работы была характеристика изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости при ВПЧ-ассоциированных поражениях шейки матки различной степени тяжести у пациенток репродуктивного возраста.

Материал и методы исследования

В одномоментное проспективное исследование было включено 30 женщин, в возрасте от 21 до 45 лет (средний возраст 30,5 года), обратившихся в научно-поликлиническое отделение ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, по поводу наличия патологии шейки матки.

Критерии включения: ВПЧ-инфекция, ВПЧ-ассоциированные заболевания шейки матки, регулярный менструальный цикл, подписанное информированное согласие на участие в исследовании.

Критерии исключения: наличие хронических заболеваний в стадии обострения, прием гормональной терапии, беременность, период лактации, наличие инфекций, передающихся половым путем, нарушение функции почек, печени, легких в стадии декомпенсации.

Комплексное обследование женщин включало: сбор клинико-анамнестических данных, определение гинекологического статуса, типирование, цитологическое исследование, расширенная кольпоскопия, протеомное исследование цервиковагинальной жидкости.Для оценки кольпоскопической картины применяли единую Международную кольпоскопическую классификацию, одобренную на 14-м Всемирном конгрессе IFCPC в Рио-де-Жанейро (2011 г.). Использовалась цитологическая оценка мазков с шейки матки по системе Бетесда [9].

Участники исследования дали добровольное письменное согласие на его проведение, подробности проводимого исследования были им разъяснены.

Пробоподготовка образцов для протеомного анализа

Забор ЦВЖ для последующего протеомного анализа осуществлялся путем орошения влагалища и шейки матки 5 мг раствором натрия хлорида 0,9%. Жидкость центрифугировалась при 2000 g в течение 10 мин при 4°C, супернатант замораживали и хранили до анализа при -80°С. Белки растворяли в буфере (0,2 M Tris-HCl, pH 8,5, 2,5 mM EDTA, 8 M мочевина), восстанавливали дитиотреитолом (0,1 М) 45 мин при 39°С, алкилировали йодацетамидом (0,05 М) 45 мин при 20°С и осаждали ледяным ацетоном с трифторуксусной кислотой (0,1%). Центрифугировали при 14000g 15 минут, осадок промывали этанолом, растворяли в 100 мМ аммоний-бикарбонатном буфере и добавляли трипсин в соотношении 1/50. Гидролизовали в течение 16 часов при 37°С, реакцию останавливали добавлением муравьиной кислоты до конечной концентрации 0,5%. Концентрацию белка в ЦВЖ определяли по методу Брэдфорда.

Тандемная хромато-масс-спектрометрия (ВЭЖХ-МС/МС)

Полученная пептидная смесь разделялась на высокоэффективном жидкостном хроматографе Agilent 1100 (Agilent Technologies, USA). Использовалась колонка, содержащая обратнофазный сорбент С18 (диаметр частиц 3 мкм, диаметр пор 100 Å). Для разделения использовался 120 минутный градиент (H20/ACN) от 0–15 мин с 3% ACN; 15–110 мин с 90% ACN; 115–120 мин с 3% ACN при скорости потока 300 нл/мин. Macc-спектрометрический анализ проводился на приборе 7 Тл LTQ-FT Ultra mass spectrometer (Thermo Electron, Bremen, Germany) с электроспрейным источником ионов.

Биоинформационный анализ данных

Полученные данные были проанализированы с помощью программного пакета MaxQuant. Для MS/MS поиска в него включалось до 8 главных пиков в 100 Da окне. Идентификация сформированных списков проводилась по прямой и обратной версии базы данных SwissProt, с максимальным допустимым отклонением от массы предшественника 6 ppm, Карбамидометилированием цистеинов в качестве фиксированной модификации а ацитилированием N-конца белков и окислением метионинов – как вариабельных модификаций. Пептиды идентифицировались минимум по 7 аминокислотам с установленным значением исключения при ложном поиске равным 0,01. В работе использовались только те белки, которые идентифицировались минимум по 2 пептидным фрагментам, причем один из них должен быть уникальным. Для полуколичественного анализа использовался метод «без метки» с дополнительной опцией «match between the runs». Статистический анализ полученных проводился с помощью программного пакета Perseus.

Результаты и обсуждение

Были сформированы 4 группы, в зависимости от результатов цитологического исследования (NILM, ASCUS, LSIL, HSIL): I группа – контрольная – 7 (23%) пациенток с NLIM, ВПЧ-негативные; 23 (77%) – ВПЧ-позитивные, разделены на 3 груп­пы: II группа – 11 (49%) пациенток с ACSUS, III группа – 7 (30%) пациенток с LSIL, IV группа – 5 (21%) пациенток с HSIL. Основная часть обследуемых пациенток были репродуктивного возраста, соматически не отягощены и подходили под все критерии включения в исследование. Возраст менархе в среднем составил ±12,7 года. Средний возраст начала половой жизни ±19,2 года. Общее количество беременностей составило 65, из которых родами завершились 25 (38%), абортами – 40 (62%). У 10 (33%) пациенток было более 4 половых партнеров. Из перенесенных гинекологических заболеваний в анамнезе выявлена высокая частота ИППП (66%). Клинико-анамнестический анализ показал, что приблизительно половина женщин с ВПЧ-инфекцией имели ранний половой дебют (до 18 лет в 48% случаев).

При изучении возрастного распределения выяснилось, что у женщин в возрасте до 30 лет чаще встречались ВПЧ высокоонкогенного типа (52,1%), ВПЧ высокого риска выявлен в 90,9% случаев в группе ASCUS и в 100% – LSIL и HSIL. Наиболее распространенным типами были ВПЧ 16 (34,8%), 31 (17,4%), 52, 58, 56 (13%), 18, 35 (8,7%), остальные типы встречались менее 5%. У 69% пациенток вирусная нагрузка была более 3,2 lоg (в среднем – 5,6 (5,2–6,2 lоg) без существенных различий между группами.

Всем пациенткам была проведена расширенная кольпоскопия. Нормальная кольпоскопическая картина наблюдалась у 7 (23%) пациенток, слабовыраженные и выраженные изменения при кольпоскопии – у 23 (87%) включали наличие ацетобелого эпителия (АБЭ), интенсивность проявления которого коррелировала со степенью тяжести процесса: слабовыраженные изменения выявлялись у 18 (60%), выраженные – у 5 (17%) .

В результате исследования в образцах ЦВЖ было выявлено 515 различных белков. Для определения меж- и внутригрупповых изменений протеомного состава проводился сравнительный анализ усредненных значений интенсивности белков по группам (рис. 1). В дальнейшем был введен критерий, в соответствии с которым потенциальный маркерный белок должен был встречаться как минимум в трех повторах в одной группе. В результате в анализе из 515 белков принимало участие 295. Отдельно проводилась оценка белков, характерных только для определенной группы, и оценка белковой композиции, характерной для всех четырех групп, для выявления достоверно изменяющихся белков.

Для поиска потенциальной панели белков-биомаркеров были проанализированы белки, характерные для каждой из групп и белки, встречающиеся только в одной группе. Был введен дополнительный критерий, в соответствии с которым белок должен был присутствовать как минимум у двух пациенток. Из 295 белков уникальными для группы ASCUS являются 12 белков, в том числе белок LRG1, отвечающий за регуляцию пролиферации эндотелиальных клеток; белок C4BPA, который на фоне персистенции ВПЧ дополнительно угнетает работу системы комплемента; белки-шапероны P4HB и HSPA8, которые характеризуют ранние изменения, ассоциированные с ВПЧ-инфекцией, в том числе проникновении вируса в клетку и его транскрипцию [10]; белки PRDX5 и YWHAE, связанные с нарушением регуляции апоптоза и усилением пролиферации атипических клеток. Также среди уникальной панели белков для группы ASCUS был выявлен белок ACTN4, считающийся в настоящее время одним из потенциальных маркеров неоплазий шейки матки [4]. Было показано, что повышение активности ACTN4 происходит при злокачественных трансформациях, и связано со снижением прочности межклеточных связей [11, 12].

Однако, несмотря на то, что в подобных исследованиях ACTN4 выявлялся при различных типах неоплазий, в нашем исследовании белок присутствовал только в группе ASCUS. Для групп HSIL специфичными оказались 2 белка, среди которых представляет интерес белок CPM, принимающий участие, как в деградации внеклеточных белков, так и в контроле активности белковых гормонов и факторов роста. Для группы контроля специфичным оказался белок MUC16, который обеспечивает синтез муцина, дополнительно защищающего клетки от вирусной инвазии (табл. 1).

С учетом вариабельности протеомного состава было решено сузить спектр анализируемых белков для выявления изменений среди белков, присутствующих во всех трех группах минимум в трех повторах. В результате 128 белков встречались во всех группах. Проанализировав данную выборку с использованием базы данных Gene Ontology, было показано, что 66 белков участвуют в метаболических процессах, причем большая их часть – в протеолизе, 29 белков ассоциированы с биологической регуляцией, 30 – с иммунными процессами и 26 стресс-белков, генез которых в рамках данного исследования не изучался (рис. 2). По классам большую часть белков представляют ингибиторы протеаз, которые, возможно, оказывают влияние на развитие патологического процесса, ингибируя апоптотические ферменты.

Далее был проведен ANOVA-тест с отклонением p-value менее 0,01: из 128 характерных белков было выявлено 37 достоверно изменяющихся в различных группах. Среди них присутствуют белки, которые представляют интерес в качестве потенциальных маркеров опухолевых изменений. Белки KLK6 и FBLN1 выполняют защитную функцию при развитии злокачественного новообразования, в частности, KLK6 ингибирует эпителиально- мезенхимальную трансформацию [13], а FBLN1 подавляет инвазию опухолевых клеток [14]. Также у пациентов в группах с неоплазиями шейки матки снижается уровень белка SERPINB3 [15], участвующего в иммунном ответе против опухолевых клеток и индуцирующего эпителиально- мезенхимальные трансформации, и повышается уровень SERPINB4, являющегося ингибитором протеазы и участвующим в модуляции иммунного ответа организма против опухолевых клеток [16].

Среди белков, значимо изменяющиеся в группах ASCUS, LSIL, HSIL, стоит отметить увеличение уровня белков TGM1 и ANXA3, участвующих в клеточной пролиферации и миграции эндотелиальных клеток соответственно (табл. 2). Наблюдается повышение уровня белка GM2A, коррелирующее с активностью опухолевых клеток [17]. Увеличение уровня белка SERPINB13, одной из функций которого является снижение апотоза кератиноцитов, может быть связано с выработкой атипическими клетками кератина и дальнейшим его накоплением [18].

Проводился анализ достоверно изменяющихся белков для каждой из трех групп ASCUS, LSIL, HSIL, попарно с NILM (табл. 2). Были выявлены 9 белков, которые достоверно изменяются во всех трех группах, среди них белки FBLN1, KLK6. Среди данных потенциальных биомаркеров неопластической трансформации эпителия шейки матки следует особо отметить белок S100A9 [19].

В результате в данной работе были определены белковые панели, специфичные для различных форм ВПЧ-ассоциированных поражений шейки матки (ASCUS, LSIL и HSIL). Первая группа белков (P4HB, HSPA8, C4BPA и др.) характеризуют ранние изменения, ассоциированные с ВПЧ-инфекцией, и связана с поражением эпителия шейки матки, в том числе с проникновением вируса в клетку и его транскрипцией, нарушением функции системы комплемента. Вторая группа белков (PRDX5, YWHAE, LRG1 и др.) принимает непосредственное участие в развитие неоплазий шейки матки и их прогрессировании и характеризует поздние изменения, в частности, снижение процесса апоптоза, нарушение дифференцировки и созревания эпителия, трансформации атипических клеток. Таким образом, анализ протеома ЦВЖ позволяет изучать молекулярные механизмы патогенеза ВПЧ-ассоциированных заболеваний шейки матки и дифференцировать изменения эпителия на ранних этапах развития.

Список литературы

1. Zur Hausen H. Papillomaviruses causing cancer: evasion from host-cell control in early events in carcinogenesis. J. Natl. Cancer Inst. 2000; 92(9): 690-8.

2. http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs380/en

3. Бурменская О.В., Назарова Н.М., Прилепская В.Н., Мзарелуа Г.М., Бестаева Н.В., Трофимов Д.Ю., Сухих Г.Т. Прогнозирование риска развития и прогрессирования цервикальных интраэпителиальных неоплазий, ассоциированных с папилломавирусной инфекцией. Акушерство и гинекология. 2016; 2: 92-8. http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.2.92-98

4. Van Raemdonck G.A., Tjalma W.A., Coen E.P., Depuydt C.E., Van Ostade X.W. Identification of protein biomarkers for cervical cancer using human cervicovaginal fluid. PLoS One. 2014; 9(9): e106488. doi: 10.1371/journal.pone.0106488. eCollection 2014.

5. Yang H., Lau W.B., Lau B., Xuan Y., Zhou S., Zhao L. et al. A mass spectrometric insight into the origins of benign gynecological disorders. Mass Spectrom Rev. 2017; 36(3): 450-70. doi: 10.1002/mas.21484.

6. Klein L.L., Jonscher K.R., Heerwagen M.H., Gibbs R.S., McManaman J.L. Shotgan proteomic analysis of vaginal fluid from woman in late pregnancy. Reprod. Sci. 2008; 15(3): 263-73.

7. Venkataraman N., Cole A.L., Svoboda P., Pohl J., Cole A.M. Cationic polypeptides are required for anti-HIV-1 activity of human vaginal fluid. J. Immunol. 2005; 175(11): 7560-7.

8. Good D.M., Thongboonkerd V., Novak J., Bascands J.L., Schanstra J.P., Coon J.J. et al. Body fluid proteomics for biomarker discovery: lessons from the past hold the key to success in the future. J. Proteome Res. 2007; 6(12): 4549-55.

9. Nayar R., Wilbur D.C. eds. The Bethesda System for Reporting Cervical Cytology. Definitions, criteria, and explanatory notes. 3rd ed. New York: Springer; 2015.

10. Bi S., Hong P.W., Lee B., Baum L.G. Galectin-9 binding to cell surface protein disulfide isomerase regulates the redox environment to enhance T-cell migration and HIV entry. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011; 108(26):10650-5.

11. Nakatsuji H., Nishimura N., Yamamura R., Kanayama H.O., Sasaki T. Involvement of actinin-4 in the recruitment of JRAB/MICAL-L2 to cell-cell junctions and the formation of functional tight junctions. Mol. Cell. Biol. 2008; 28(10): 3324-35. doi: 10.1128/MCB.00144-08.

12. Barbolina M.V., Adley B.P., Kelly D.L., Fought A.J., Scholtens D.M. et al. Motility-related actinin alpha-4 is associated with advanced and metastatic ovarian carcinoma. Lab. Invest. 2008; 88(6): 602-14. doi: 10.1038/labinvest.2008.25.

13. Pampalakis G., Prosnikli E., Agalioti T., Vlahou A., Zoumpourlis V., Sotiropoulou G. A tumor-protective role for human kallikrein-related peptidase 6 in breast cancer mediated by inhibition of epithelial-to-mesenchymal transition. Cancer Res. 2009; 69(9): 3779-87. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-1976.

14. Hayashido Y., Lucas A., Rougeot C., Godyna S., Argraves W.S., Rochefort H. Estradiol and fibulin-1 inhibit motility of human ovarian- and breast-cancer cells induced by fibronectin. Int. J. Cancer. 1998; 75(4): 654-8.

15. Quarta S., Vidalino L., Turato C., Ruvoletto M., Calabrese F., Valente M. et al. SERPINB3 induces epithelial-mesenchymal transition. J. Pathol. 2010; 221(3): 343-56. doi: 10.1002/path.2708.

16. Sun Y., Sheshadri N., Zong W.X. SERPINB3 and B4: From biochemistry to biology. Semin. Cell Dev. Biol. 2017; 62: 170-7. doi: 10.1016/j.semcdb.2016.09.005.

17. Shin J., Kim G., Lee J.W., Lee J.E., Kim Y.S., Yu J.H. et al. Identification of ganglioside GM2 activator playing a role in cancer cell migration through proteomic analysis of breast cancer secretomes. Cancer Sci. 2016; 107(6):828-35.

18. Welss T., Sun J., Irving J.A., Blum R., Smith A.I., Whisstock J.C. et al. Hurpin is a selective inhibitor of lysosomal cathepsin L and protects keratinocytes from ultraviolet-induced apoptosis. Biochemistry. 2003; 42(24): 7381-9.

19. Fang W.Y., Chen Y.W., Hsiao J.R., Liu C.S., Kuo Y.Z., Wang Y.C. et al. Elevated S100A9 expression in tumor stroma functions as an early recurrence marker for early-stage oral cancer patients through increased tumor cell invasion, angiogenesis, macrophage recruitment and interleukin-6 production. Oncotarget. 2015; 6(29): 28401-24. doi: 10.18632/oncotarget.4951.

Поступила 07.02.2017

Принята в печать 17.02.2017

Об авторах / Для корреспонденции

Зардиашвили Мака Джемаловна, аспирант ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (916) 337-53-51. E-mail: z-m-d@mail.ru
Франкевич Владимир Евгеньевич, к.ф-м.н., руководитель отдела системной биологии в репродукции ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-07-88, доб. 2198. E-mail: v_frankevich@oparina4.ru
Назарова Нисо Мирзоевна, д.м.н., в.н.с. ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-14-03. E-mail: grab2@yandex.ru
Бугрова Анна Евгеньевна, к.б.н., с.н.с. лаборатории протеомики репродукции человека ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (926) 562-65-90. E-mail: a_bugrova@oparina4.ru
Кононихин Алексей Сергеевич, к.ф.-м.н., научный сотрудник лаборатории протеомики репродукции человека ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (926)-562-65-90. E-mail: konoleha@yandex.ru
Бржозовский Александр Геннадьевич, аспирант лаборатории протеомики Учреждения РАН ГНЦ РФ – Институт медико-биологических проблем РАН.
Адрес: 123007, Россия, г. Москва, Хорошёвское шоссе, д. 76. Телефон: 8 (916) 770-51-68. E-mail: agb.imbp@gmail.com
Стародубцева Наталия Леонидовна, к.б.н., зав. лабораторией протеомики репродукции человека ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (916) 463-98-67. E-mail: n_starodubtseva@oparina4.ru
Асатурова Александра Вячеслововна, к.м.н., с.н.с. патологоанатомического отделения ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-23-11. E-mail: a_asaturova@oparina4.ru
Сухих Геннадий Тихонович, академик РАН, д.м.н., профессор, директор ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-18-00. E-mail: g_sukhikh@oparina4.ru

Для цитирования: Зардиашвили М.Д., Франкевич В.Е., Назарова Н.М., Бугрова А.Е., Кононихин А.С., Бржозовский А.Г., Стародубцева Н.Л., Асатурова А.В., Сухих Г.Т. Характеристика изменений протеомного состава цервиковагинальной жидкости при заболеваниях шейки матки, ассоциированных с ВПЧ-инфекцией. Акушерство и гинекология. 2017; 4: 88-94.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.4.88-94

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.