Дозревание ооцитов in vitro

DOI

https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.11.64-70

Михайлова Н.Д., Мишиева Н.Г., Кириллова А.О., Мартазанова Б.А., Джинчарадзе Л.Г.
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения России, Москва, Россия

In vitro maturation (IVM) – это вспомогательная репродуктивная технология (ВРТ), подразумевающая аспирацию незрелых ооцитов и их последующее созревание in vitro. Данная технология имеет особое значение для пациенток с синдромом поликистозных яичников, поскольку позволяет избежать развития такого грозного осложнения, как синдром гиперстимуляции яичников, а также для пациенток с синдромом резистентных яичников, невосприимчивых к стимуляции гонадотропинами, и пациенток с онкологическими заболеваниями за счет возможности полностью отказаться от какой-либо стимуляции. Тем не менее технология IVM уступает в эффективности классическому экстракорпоральному оплодотворению (ЭКО). Для повышения эффективности классической IVM была разработана инновационная эмбриологическая методика – двухступенчатая система созревания in vitro с капацитацией (CAPA-IVM), включающая подготовительный этап pre-IVM, который способствует приобретению компетентности ооцитами, и дальнейшее культивирование и дозревание ооцитов в среде IVM. Данная технология хорошо себя зарекомендовала, но имеет достаточно ограниченное применение и на данном этапе требует дальнейшего изучения.
Заключение: В представленном обзоре литературы отображены опыт и эффективность применения методик IVM и CAPA-IVM, в том числе в сравнении с классическим ЭКО, у различных категорий пациенток на основании отечественных и зарубежных публикаций системы Pubmed по данной теме. Вопрос выбора оптимальной тактики ведения таких пациенток также требует дальнейшего изучения.

бесплодие

СПКЯ

IVM

CAPA-IVM

гинекология

ВРТ

ЭКО

Полный текст статьи
доступен в "Библиотеке Врача"

Pincus G., Enzmann E.V. The comparative behavior of mammalian eggs in vivo and in vitro: I. The activation of ovarian eggs. J. Exp. Med. 1935; 62(5): 665-75. https://dx.doi.org/10.1084/jem.62.5.665.
De Vos M., Smitz J., Thompson J.G., Gilchrist R.B. The definition of IVM is clear-variations need defining. Hum. Reprod. 2016; 31(11): 2411-5. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dew208.
Cha K.Y., Chian R.C. Maturation in vitro of immature human oocytes for clinical use. Hum. Reprod. Update. 1998; 4(2): 103-20. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/4.2.103.
Yang Z.Y., Chian R.C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertil. Steril. 2017; 108(4): 577-84. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.08.020.
Edwards R.G. Maturation in vitro of human ovarian oocytes. Lancet. 1965; 2(7419): 926-9. https://dx.doi.org/10.1016/s0140-6736(65)92903-x.
Cha K.Y., Koo J.J., Ko J.J., Choi D.H., Han S.Y., Yoon T.K. Pregnancy after in vitro fertilization of human follicular oocytes collected from nonstimulated cycles, their culture in vitro and their transfer in a donor oocyte program. Fertil. Steril. 1991; 55(1): 109-13. https://dx.doi.org/10.1016/s0015-0282(16)54068-0.
Trounson A., Wood C., Kausche A. In vitro maturation and the fertilization and developmental competence of oocytes recovered from untreated polycystic ovarian patients. Fertil. Steril. 1994; 62(2): 353-62. https://dx.doi.org/10.1016/s0015-0282(16)56891-5.
Child T.J., Phillips S.J., Abdul-Jalil A.K., Gulekli B., Tan S.L. A comparison of in vitro maturation and in vitro fertilization for women with polycystic ovaries. Obstet. Gynecol. 2002; 100(4): 665-70. https://dx.doi.org/10.1016/s0029-7844(02)02193-2.
Ho V.N.A., Braam S.C., Pham T.D., Mol B.W., Vuong L.N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Hum. Reprod. 2019; 34(6): 1055-64. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez060.
Patel S.S., Carr B.R. Oocyte quality in adult polycystic ovary syndrome. Semin. Reprod. Med. 2008; 26(2): 196-203. https://dx.doi.org/10.1055/s-2008-1042958.
Siristatidis C., Sergentanis T.N., Vogiatzi P., Kanavidis P., Chrelias C., Papantoniou N. et al. In vitro maturation in women with vs. without polycystic ovarian syndrome: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2015; 10(8): e0134696. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0134696.
Vuong L.N., Ho V.N.A., Ho T.M., Dang V.Q., Phung T.H., Giang N.H. et al. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum. Reprod. 2020; 35(11): 2537-47. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deaa240.
Wang P., Zhao J., Jin C., Yu R., Lin J., Zhu R. et al. Comparision of in vitro maturation applied in PCOS and non-PCOS patients undergo stimulated and unstimulated protocols. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2014; 49(12): 903-8.
Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil. Steril. 2021; 115(2): 298-304. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2020.11.018.
Fadini R., Dal Canto M.B., Mignini Renzini M., Brambillasca F., Comi R., Fumagalli D. et al. Effect of different gonadotrophin priming on IVM of oocytes from women with normal ovaries: a prospective randomized study. Reprod. Biomed. Online. 2009; 19(3): 343-51. https://dx.doi.org/10.1016/s1472-6483(10)60168-x.
Tannus S., Hatirnaz S., Tan J., Ata B., Tan S., Hatırnaz E. et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Arch. Gynecol. Obstet. 2018; 297: 199-204. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-017-4561-z.
Ho V.N.A., Pham T.D., Le A.H., Ho T.M., Vuong L.N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. J. Ovarian Res. 2018; 11(1): 70. https://dx.doi.org/10.1186/s13048-018-0445-5.
Lin Y., Zheng X., Ma C., Li X., Zhang X., Yang P. et al. Human chorionic gonadotropin priming does not improve pregnancy outcomes of PCOS-IVM cycles. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2020; 11: 279. https://dx.doi.org/10.3389/fendo.2020.00279.
Klement A.H., Navve D., Ghetler Y., Wiser A., Shavit T., Weitzner O. et al. Gonadotropin releasing hormone agonist triggering for in vitro maturation cycles. Hum. Fertil. (Camb). 2020; 1-11. https://dx.doi.org/10.1080/14647273.2020.1858511.
Walls M.L., Hunter T., Ryan J.P., Keelan J.A., Nathan E., Hart R.J. In vitro maturation as an alternative to standard in vitro fertilization for patients diagnosed with polycystic ovaries: a comparative analysis of fresh, frozen and cumulative cycle outcomes. Hum. Reprod. 2015; 30(1): 88-96. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deu248.
Mostinckx L., Segers I., Belva F., Buyl R., Santos-Ribeiro S., Blockeel C. et al. Obstetric and neonatal outcome of ART in patients with polycystic ovary syndrome: IVM of oocytes versus controlled ovarian stimulation. Hum. Reprod. 2019; 34(8): 1595-607. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez086.
Mackens S., Mostinckx L., Drakopoulos P., Segers., Santos-Ribeiro S., Popovic-Todorovic B. et al. Early pregnancy loss in patients with polycystic ovary syndrome after IVM versus standard ovarian stimulation for IVF/ICSI. Hum. Reprod. 2020; 35(12): 2763-73. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deaa200.
Яковлев П.П., Корнилов Р.Н., Павлова М.Н., Корнилов Н.В. Синдром резистентных яичников и дозревание ооцитов в пробирке. Акушерство и гинекология. 2020; 11: 226-31.
Grynberg M., Peltoketo H., Christin-Maître S., Poulain M., Bouchard P., Fanchin R. First birth achieved after in vitro maturation of oocytes from a woman endowed with multiple antral follicles unresponsive to follicle-stimulating hormone. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2013; 98(11): 4493-8. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2013-1967.
Galvão A., Segers I., Smitz J., Tournaye H., De Vos M. In vitro maturation (IVM) of oocytes in patients with resistant ovary syndrome and in patients with repeated deficient oocyte maturation. J. Assist. Reprod. Genet. 2018; 35(12): 2161-71. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-018-1317-z.
Flageole C., Toufaily C., Bernard D.J., Ates S., Blais V., Chénier S. et al. Successful in vitro maturation of oocytes in a woman with gonadotropin-resistant ovary syndrome associated with a novel combination of FSH receptor gene variants: a case report. J. Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(3): 425-32. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-018-1394-z.
Kornilov N.V., Pavlova M.N., Yakovlev P.P. The live birth in a woman with resistant ovary syndrome after in vitro oocyte maturation and preimplantation genetic testing for aneuploidy. J. Assist. Reprod. Genet. 2021; 38(6): 1303-9. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-021-02085-5.
De Vos M., Smitz J., Woodruff T.K. Fertility preservation in women with cancer. Lancet. 2014; 384(9950): 1302-10. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(14)60834-5.
Park C.W., Lee S.H., Yang K.M., Lee I.H., Lim K.T., Lee K.H. et al. Cryopreservation of in vitro matured oocytes after ex vivo oocyte retrieval from gynecologic cancer patients undergoing radical surgery. Clin. Exp. Reprod. Med. 2016; 43(2): 119-25. https://dx.doi.org/10.5653/cerm.2016.43.2.119.
Ковальская Е.В., Кириллова А.О., Буняева Е.С., Хабас Г.Н., Камалетдинов Н.С., Назаренко Т.А., Абубакиров А.Н. Эффективность дозревания ооцитов, полученных в ходе овариэктомии, у онкологических пациенток. Акушерство и гинекология. 2019; 9: 87-91.
Prasath E.B., Chan M.L., Wong W.H., Lim C.J., Tharmalingam M.D., Hendricks M. et al. First pregnancy and live birth resulting from cryopreserved embryos obtained from in vitro matured oocytes after oophorectomy in an ovarian cancer patient. Hum. Reprod. 2014; 29(2): 276-8. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det420.
Segers I., Mateizel I., Van Moer E., Smitz J., Tournaye H., Verheyen G. et al. In vitro maturation (IVM) of oocytes recovered from ovariectomy specimens in the laboratory: a promising "ex vivo" method of oocyte cryopreservation resulting in the first report of an ongoing pregnancy in Europe. J. Assist. Reprod. Genet. 2015; 32(8): 1221-31. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-015-0528-9.
Uzelac P.S., Delaney A.A., Christensen G.L., Bohler H.C., Nakajima S.T. Live birth following in vitro maturation of oocytes retrieved from extracorporeal ovarian tissue aspiration and embryo cryopreservation for 5 years. Fertil. Steril. 2015; 104(5): 1258-60. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2015.07.1148.
Кириллова А.О., Буняева Е.С., Ковальская Е.В., Камалетдинов Н.С., Хабас Г.Н., Фармаковская М.Д., Сироткина Е.А., Мишиева Н.Г., Назаренко Т.А., Абубакиров А.Н. Сохранение фертильности у пациенток с диагностированным во время беременности онкологическим заболеванием. Акушерство и гинекология. 2020; 4: 59-64.
Segers I., Bardhi E., Mateizel I., Van Moer E., Schots R., Verheyen G. et al. Live births following fertility preservation using in-vitro maturation of ovarian tissue oocytes. Hum. Reprod. 2020; 35(9): 2026-36. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deaa175.
Delattre S., Segers I., Van Moer E., Drakopoulos P., Mateizel I., Enghels L. et al. Combining fertility preservation procedures to spread the eggs across different baskets: a feasibility study. Hum. Reprod. 2020; 35(11): 2524-36. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deaa193.
Kirillova A., Kovalskaya E., Brovkina O., Ekimov A., Bunyaeva E., Gordiev M. et al. Cryopreservation of euploid blastocysts obtained after fertilization of in vitro matured ovarian tissue oocytes: a case report. J. Assist. Reprod. Genet. 2020; 37(4): 905-11. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-020-01729-2.
Zhao Y., Liao X., Krysta A.E., Bertoldo M.J., Richani D., Gilchrist R.B. Capacitation IVM improves cumulus function and oocyte quality in minimally stimulated mice. J. Assist. Reprod. Genet. 2020; 37(1): 77-88. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01610-x.
Sánchez F., Lolicato F., Romero S., De Vos M., Van Ranst H., Verheyen G. et al. An improved IVM method for cumulus-oocyte complexes from small follicles in polycystic ovary syndrome patients enhances oocyte competence and embryo yield. Hum. Reprod. 2017; 32(10): 2056-68. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dex262.
Sanchez F., Le A.H., Ho V.N.A., Romero S., Van Ranst H., De Vos M. et al. Biphasic in vitro maturation (CAPA-IVM) specifically improves the developmental capacity of oocytes from small antral follicles. J. Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(10): 2135-44. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01551-5.
Vuong L.N., Le A.H., Ho V.N.A., Pham T.D., Sanchez F., Romero S. et al. Live births after oocyte in vitro maturation with a prematuration step in women with polycystic ovary syndrome. J. Assist. Reprod. Genet. 2020; 37(2): 347-57. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-019-01677-6.
Kirillova A., Bunyaeva E., Van Ranst H., Khabas G., Farmakovskaya M., Kamaletdinov N. et al. Improved maturation competence of ovarian tissue oocytes using a biphasic in vitro maturation system for patients with gynecological malignancy: a study on sibling oocytes. J. Assist. Reprod. Genet. 2021; 38(6): 1331-40. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-021-02118-z.

Поступила 28.07.2021

Принята в печать 07.10.2021

Михайлова Нина Дмитриевна, аспирант 1-го гинекологического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(915)456-81-51, mihailnina@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Мишиева Нона Годовна, д.м.н., в.н.с. 1-го гинекологического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России, +7(495)438-26-22, nondoc555@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кириллова Анастасия Олеговна, к.б.н., с.н.с. 1-го гинекологического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)531-44-44, a_kozyreva@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Мартазанова Белла Арсамаковна, к.м.н., м.н.с. 1-го гинекологического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(967)123-88-24, bellamart88@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Джинчарадзе Лана Гиглаевна, аспирант 1-го гинекологического отделения, Национальный медицинский исследовательский центр им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(926)073-77-73, lanachka@list.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Вклад авторов: Мишиева Н.Г., Кириллова А.О. – разработка и дизайн исследования; Михайлова Н.Д. – обзор публикаций по теме статьи, анализ полученных данных, написание текста рукописи; Кириллова А.О.,
Мартазанова Б.А., Джинчарадзе Л.Г. – редактирование.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии возможных конфликтов интересов.
Финансирование: Исследование проведено без спонсорской поддержки в рамках диссертационной работы Михайловой Н.Д.
Для цитирования: Михайлова Н.Д., Мишиева Н.Г., Кириллова А.О., Мартазанова Б.А., Джинчарадзе Л.Г. Дозревание ооцитов in vitro.
Акушерство и гинекология. 2021; 11: 64-70
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.11.64-70

Дозревание ооцитов in vitro

Михайлова Н.Д., Мишиева Н.Г., Кириллова А.О., Мартазанова Б.А., Джинчарадзе Л.Г.

Ключевые слова

Список литературы

Об авторах / Для корреспонденции

Также по теме