Роль микробиоты кишечника матери при спонтанных преждевременных родах

Горина К.А., Ходжаева З.С., Муравьева В.В., Муминова К.Т., Донников А.Е., Припутневич Т.В.

ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия
Цель. Изучить потенциальное влияние микробиоты кишечника матери на реализацию преждевременных родов.
Материалы и методы. Проспективное сравнительное исследование случай-контроль проведено у 40 родильниц. Пациентки были разделены на 2 группы: I – родильницы со спонтанными преждевременными родами; II – соматически здоровые женщины, родоразрешенные в доношенном сроке беременности. Исследование кишечной микробиоты проводилось культуральным методом.
Результаты. Ведущими представителями кишечной микробиоты обеих групп были микроорганизмы родов Bifidobacterium, Lactobacillus, Bacteroides, Enterococcus и Escherichia. У пациенток I группы, родивших преждевременно, статистически значимо чаще и с более высоким логарифмическим значением колониеобразующих единиц (КОЕ) по сравнению с группой своевременных родов встречались условно-патогенные микроорганизмы факультативно-анаэробного происхождения – Staphylococcus aureus (р=0,0365) и/или Klebsiella pneumoniae (р=0,0217) и, соответственно, отмечался более скудный рост облигатных анаэробов – Bacteroides spp. (p=0,0416).
Заключение. Наше исследование подтверждает вероятную роль микробиоты кишечника при спонтанных преждевременных родах.

Ключевые слова

микробиота кишечника
преждевременные роды
перинатальные исходы
Staphylococcus aureus
Klebsiella pneumoniae
условно-патогенная микрофлора
дисбактериоз

Преждевременные роды (ПР) являются основной причиной неонатальной заболеваемости и смертности во всем мире [1, 2], однако лежащие в их основе этиопатогенетические факторы продолжают представлять активный исследовательский интерес. Так, требуют дальнейшего изучения и детализации вопросы, связанные с развитием двух клинических фенотипов ПР: с интактными плодными оболочками и с преждевременным излитием околоплодных вод [3, 4]. Среди установленных причин воспаление, обусловленное восходящей инфекцией из нижних отделов генитального тракта и/или дисбалансом влагалищной микрофлоры (рост популяции Gardnerella vaginalis и/или Ureaplasma spp., сопровождающийся резким снижением содержания нормофлоры – Lactobacillus spp.), является наиболее изученным фактором ПР с доказанной причинно-следственной связью [5, 6]. Однако спонтанные ПР (сПР) могут быть ассоциированы с инфекционно-воспалительным процессом, локализованным вне влагалища, например, в ротовой полости, мочевыводящих путях, кишечнике, с микробиотой различных органов и систем [7, 8]. Результаты исследований последних лет подтверждают обоснованность комплексного изучения кишечной микробиоты матери с точки зрения не только инициации сПР, но и влияния на неврологический статус недоношенного новорожденного.

Более ста триллионов микроорганизмов обитают в кишечном тракте человека и объединены в единый континуум – кишечная микробиота (КМ) [9]. Известно, что кишечник является многофункциональным органом, а КМ в контексте сПР обладает иммуномодулирующим потенциалом [10]. Дисбаланс КМ способствует развитию пристеночного воспаления с формированием повышенной проницаемости кишечной стенки и последующей активной миграции микроорганизмов («дырявый кишечник», с англ. leaky gut) [9]. Высокая проницаемость способствует диссеминации микроорганизмов и их метаболитов, таких как липополисахариды (ЛПС), содержащихся в клеточной стенке грамотрицательных бактерий, которые вносят дополнительный вклад в системное воспаление, называемое метаболической эндотоксинемией (2–3-кратное повышение уровня циркулирующих эндотоксинов в крови) [11, 12]. Активация провоспалительного пути от физиологического до чрезмерного уровня может также вносить весомый вклад в развитие и других больших акушерских синдромов, в частности, задержки роста плода и преэклампсии [13, 14]. Микроорганизмы – типичные представители КМ были обнаружены в амниотической жидкости беременных с преждевременным разрывом плодных оболочек, что доказывает их роль, возможно, этиологическую, в развитии внутриутробной инфекции [15]. В настоящее время предложены две теории подобной микробной транслокации: циркуляция ЛПС с последующим их стимулирующим эффектом на синтез медиаторов воспаления и простагландинов и гематогенная диссеминация патогенов из кишечника («дырявый кишечник») в плаценту или матку [16].

Цель исследования – изучить потенциальное влияние КМ матери на реализацию ПР.

Материалы и методы

На базе акушерских отделений ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России проведено поперечное (cross-sectional) исследование. В соответствии с поставленной целью обследовано 40 женщин. Пациенты были разделены на 2 группы: I (основную) группу составили родильницы с сПР (средний срок беременности на момент родов составил 34,3 (1,6) недели); II (контрольную) группу – соматически здоровые женщины, родоразрешенные в доношенном сроке беременности (39,5 (1,1) недели).

У всех беременных, включенных в исследование, были детально проанализированы анамнестические и клинико-лабораторные данные: соматический и акушерско-гинекологический анамнез, течение беременности и родов, послеродовый период, показатели периферической крови и отделяемого генитального тракта. Проанализированы методы родоразрешения и неонатальные исходы. Проводилось анкетирование, включавшее вопросы, касающиеся особенностей диеты и характера стула во время и до беременности, наличия/отсутствия вредных привычек.

Критериями включения в I группу были одноплодная беременность, сПР до 366 недель (начало родовой деятельности и/или преждевременный разрыв плодных оболочек); во II группу – одноплодная беременность, завершившаяся своевременными родами. С целью минимизации влияния конфаундеров в обе группы при проведении исследования не были включены пациентки с тяжелой акушерской (за исключением наличия ПР, поздних выкидышей и привычного невынашивания в анамнезе) и экстрагенитальной патологией; носительницы Streptococcus agalactiae (стрептококк группы B). Критериями невключения пациентов являлись: многоплодная беременность, предлежание/врастание плаценты, длительный безводный промежуток (12 ч и более), антибактериальная терапия накануне (7 дней и менее) родоразрешения, диагностированные хронические воспалительные заболевания кишечника. Перед исследованием пациентки подписали добровольное информированное согласие; работа была одобрена комиссией по этике биомедицинских исследований ФГБУ «НМИЦ АГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России.

Изучение состава КМ проведено методом культуромики с использованием расширенного набора селективных и неселективных питательных сред и инкубированием в аэробных, микроаэрофильных и анаэробных условиях. Образцы кала, собранные в стерильный пластиковый контейнер, в течение 2 ч доставляли в лабораторию, готовили 10-кратные разведения в физиологическом растворе и проводили посев подготовленного инокулюма (по 100 мкл) на питательные среды. Для выделения факультативно-анаэробных и аэробных микроорганизмов использовали колумбийский кровяной агар (Oxoid, Великобритания), хромогенную прозрачную среду Brilliance (Oxoid, Великобритания), маннит-солевой агар (Himedia, Индия), энтерококковый агар (ФГУН «ГИЦПМ и Б», Оболенск, Россия), агар Эндо-ГРМ (Оболенск), Сальмонелла-Шигелла-агар (Oxoid, Великобритания), декстрозный агар Сабуро (Oxoid, Великобритания). Лактобациллы выращивали на среде Лактобакагар (ФГУН «ГИЦПМ и Б», Оболенск, Россия). Строгие анаэробы культивировали на агаре для бифидобактерий (Himedia, Индия), прередуцированном агаре Шедлера (Oxoid, Великобритания) с необходимыми добавками, основном агаре для анаэробов (Oxoid, Великобритания), перфрингенс агаре (Oxoid, Великобритания), железо-сульфитном агаре (Oxoid, Великобритания). Видовая идентификация микроорганизмов проводилась методом MALDI-TOF-MS с использованием времяпролетного масс-спектрометра Autoflex III c программным обеспечением MaldiBioTyper (Bruker Daltoniks, Германия).

Статистический анализ

Статистический анализ полученных данных проводили с использованием методов описательной и вариационно-математической статистики программами GraphPad Prism 8.3 и IBM SPSS Statistics 22 с соблюдением общих рекомендаций для медицинских и биологических исследований. Описание количественных данных, имеющих нормальное распределение, представлено как среднее арифметическое и стандартное отклонение, при распределении, отличающемся от нормального, данные представлены в виде медианы и квартилей. Качественные показатели отражены в абсолютных и относительных (%) величинах. Для определения нормальности распределения использовали обобщенный тест Д’Агостино-Пирсона. Статистически значимыми считались различия при p<0,05. В работе были применены следующие методы обработки данных: тест χ2 с расчетом поправки на непрерывность для таблиц сопряженности 2×2 и критерий Фишера, отношение шансов (ОШ) с доверительным интервалом 95% (95% ДИ) для сравнения бинарных данных, сравнительный анализ переменных с помощью параметрического t-критерия Стьюдента для несвязанных совокупностей. При отсутствии нормального распределения данных применялись методы непараметрической статистики – U-критерий Манна–Уитни. Для исследования зависимостей между параметрами применяли корреляционный анализ по Пирсону.

Результаты

В исследование включены 40 пациенток; в зависимости от срока родоразрешения родильницы разделены на две группы (с преждевременными и своевременными родами (СР)), сопоставимые по возрасту, массо-ростовым показателям и индексу массы тела. Демографическая характеристика обследованных пациенток представлена в таблице 1.

67-1.jpg (145 KB)

При анализе течения беременности не отмечалось статистически значимых различий в частоте угрожающих ПР (р=0,75), токсикоза беременных (р=0,89), респираторных заболеваний (р=0,06), анемии беременных в III триместре (р=0,15). Однако у пациенток основной (I) группы статистически значимо чаще по сравнению со II группой отмечались ПР в анамнезе (р=0,04), истмико-цервикальная недостаточность (40% и 10% соответственно, р=0,029) с проведенной коррекцией в виде серкляжа (75%) или акушерского пессария (25%). Назначение антибактериальной терапии в III триместре беременности было более частым в основной группе сПР – у 7 из 20 беременных (35%), чем в контрольной – у 1 из 20 пациенток (5%, p=0,02). Вместе с тем при анализе данного показателя в I и II триместрах значимых различий не отмечено (р=0,9 и р=0,43 соответственно).

При сравнительном анализе особенностей родоразрешения, вне зависимости от гестационного срока, преобладающим методом в обеих группах были роды через естественные родовые пути (85% и 90% соответственно). Показанием к абдоминальному родоразрешению в I группе явилось начало родовой деятельности/преждевременный разрыв плодных оболочек у пациенток с рубцом на матке после предыдущей операции кесарева сечения. Частота преждевременного излития околоплодных вод (р=0,46), длительность безводного промежутка (р=0,32) и продолжительность родов (р=0,13) в обеих группах статистически значимо не различались.

С целью изучения особенностей КМ при сПР проведен детальный анализ ее состава в сравниваемых группах. На рис. 1 представлен микробный состав КМ в сравниваемых группах. Следует отметить, что при одинаковом таксономическом разнообразии отмечается «обеднение» практически всех представителей нормальной КМ у пациенток с сПР. Доля микроорганизмов представлена в процентном соотношении.

Межгрупповые статистически значимые различия обнаружены в отношении Staphylococcus aureus (S. aureus), Klebsiella pneumoniae (Kl. pneumoniae) и бактерий семейства Bacteroidaceae (рис. 2). Так, у пациенток с сПР статистически значимо чаще с более высоким логарифмическим значением колониеобразующих единиц (КОЕ), по сравнению с группой СР, встречались такие патогены, как S. aureus (р=0,0331) и/или Kl. pneumoniae (р=0,0340); при этом наблюдается «обеднение» микробиоты облигатно-анаэробными бактериями семейства Bacteroidaceae (p=0,0416), что усиливает дисбиотические процессы, способствуя активации провоспалительного пути [17].

Для оценки взаимосвязей микроорганизмов в основной группе и понимания их взаимодействия между собой проведен множественный корреляционный анализ с использованием линейного коэффициента корреляции r Пирсона, результаты которого представлены в таблице 2.

68-1.jpg (89 KB)

Полученные данные подтверждают потенцирующее (прямая зависимость) влияние представителей нормальной микрофлоры друг на друга: рост одних способствует росту других (r=0,45; p=0,045); в то время как рост УПМ создает благоприятную среду для размножения патогенов (r=0,59; p=0,005); а также отрицательное влияние (обратная зависимость) между нормальными симбиотами и УПМ, в частности, Candida spp. (-0,47; p=0,037) [18].

Для более детальной оценки других факторов риска, влияющих на КМ, нами проводилось анкетирование пациенток обеих групп. Не найдено значимых различий (р=0,74) в особенностях диеты (на выбор предлагалось 5 вариантов: разнообразное питание, в том числе вредные продукты (фастфуд, чипсы и т.д.); разнообразное правильное питание; исключение углеводов; исключение белков; исключение жиров); 70% респондентов в обеих группах выбрали ответ: разнообразное правильное питание. Нарушения стула по типу гипотонии (констипация) встречались несколько чаще в группе сПР, однако различия между группами были не значимы (р=0,75). По частоте вредных привычек (курение), наличию домашних животных обе группы статистически значимо не отличались (р=0,75 и р=0,31 соответственно).

Послеродовый период протекал в обеих группах без осложнений; пациентки выписаны в среднем на 4-е сутки. Уровень лейкоцитов для I группы составил 11,38±2,96×109/л и не отличался от такового для контрольной группы – 10,60±3,3×109/л (р=0,42). Инфекционных осложнений, характерных для пуэрперия, не отмечено. Однако у 7 новорожденных (35%) из группы сПР развились инфекционные осложнения (врожденная пневмония, инфекция мочевыводящих путей и т.д.), тогда как в контрольной группе таковых отмечено не было (р=0,0004). Процентное содержание лимфоцитов периферической крови на 1–2-е сутки жизни было значимо выше в I группе сПР (39,5±13,2%), чем в группе контроля – 27,50±7,78% (р=0,001).

Для оценки общего количества микроорганизмов с целью визуализации всего массива данных на платформе Displayr была построена тепловая карта (рис. 3). Представлены графическое изображение полученных данных и полный спектр микроорганизмов, обнаруженный у родильниц с ПР и СР (I и II группы). Каждая тонкая горизонтальная линия представляет собой состав КМ родильницы (n=40). Каждая ячейка отображает степень обсемененности микроорганизмами (метки сверху) в lgКОЕ/г.

69-1.jpg (179 KB)

Согласно полученным данным, с сПР может быть ассоциирован рост УПМ в виде S. aureus, который встречался у 50% (10/20) пациенток с сПР и 25% (5/20) при СР; данные различия не имели статистической значимости (р=0,19). Однако обильный рост S. aureus (более 1×104 КОЕ) отмечен только у 5% (1/19) пациенток с доношенным сроком, при этом при сПР данный показатель составил 40% (8/20), что является статистически значимым (р=0,02; ОШ 12,67; 95% ДИ 1,8–146,6). Анализ встречаемости Kl. pneumoniae также не показал значимых отличий (р=0,16): в группе сПР рост был зафиксирован у 40% (8/10) женщин, в группе СР – у 15% (3/20). Обильный рост Kl. рneumoniae отмечен у 40% (8/20), то есть у всех пациенток в группе сПР, причем значение было не менее 1×106 КОЕ, в то время как у пациенток с СР она встречалась в 5% (1/19). Данные различия, аналогично S. аureus, были статистически значимыми (р=0,02; ОШ 12,67; 95% ДИ 1,8–146,6).

Обсуждение

В данном исследовании случай-контроль проанализированы показатели КМ 40 родильниц с сПР и СР. Известно, что в толстом кишечнике обитают более 50 типов микроорганизмов, но доминируют четыре основных типа: Firmicutes, Bacteroidetes, Actinobacteria и Proteobacteria [19]. Согласно полученным результатам, ведущими представителями КМ обеих групп были микроорганизмы родов Bifidobacterium (тип Actinobacteria), Bacteroides (тип Bacteroidetes), Lactobacillus, Enterococcus, Staphylococcus, Clostridium (тип Firmicutes) и Escherichia, Klebsiella (тип Proteobacteria). В соответствии с полученными данными все пациентки были ранжированы в зависимости от степени дисбиотических нарушений на три группы: нормоценоз, умеренно выраженные дисбиотические изменения (строгие анаэробы преобладают над факультативными анаэробами, рост УПМ менее 104 КОЕ/г) и выраженный дисбиоз (факультативные анаэробы преобладают над облигатными анаэробами, рост УПМ более 104 КОЕ/г) с повышенной генерацией S. aureus, Klebsiella spp. и Clostridium spp. У 90% (18/20) пациенток основной группы преобладали дисбиотические нарушения от умеренных до выраженных, что значимо выше по сравнению с контрольной группой (2/20 (10%), р=0,001); при этом частота выраженного дисбиоза была также выше (45% и 10% соответственно), что является статистически значимым (р=0,004).

Согласно полученным данным, с сПР может быть ассоциировано увеличение численности факультативно-анаэробной УПМ в виде S. aureus и/или Kl. pneumoniae, а также скудное количество облигатно-анаэробного компонента КМ – бактероидов. Снижение титров бактероидов и других облигатно-анаэробных микроорганизмов в составе КМ сопровождается нарушением продукции короткоцепочечных жирных кислот (ацетата, пропионата, бутирата), оказывающих влияние на здоровье толстой кишки, обеспечивая защиту от воспаления и нарушения барьерной функции. Здоровые эпителиальные клетки толстого кишечника истощают уровни кислорода в его просвете, на границе слизистой оболочки, через процессы бета-окисления, создавая, таким образом, анаэробную среду, а в случае воспаления – снижают способность к бета-окислению вследствие повышенной доступности кислорода, который приводит к дисбиотическим изменениям, ассоциированным с повышенной генерацией протеобактерий, в том числе энтеробактерий [20, 21]. Увеличение проницаемости клеток кишечника сопровождается возрастанием транспорта ЛПС клеточной стенки грамотрицательных бактерий из просвета кишечника в кровоток [22], вызывая эндотоксемию. Снижение содержания бактероидов в составе КМ пациенток с сПР в сочетании с увеличением популяции протеобактерий (Kl. pneumoniae), имевшее место в нашем исследовании, могло привести к повышенной продукции провоспалительных цитокинов и простагландинов и запустить каскад патогенетических механизмов, инициирующих развитие преждевременной родовой деятельности.

Роль КМ в развитии широкого спектра акушерской патологии, в том числе больших акушерских синдромов, активно изучается. Данное исследование, наряду с многочисленными данными современной литературы [10, 23, 24], свидетельствует о роли КМ как одного из потенциальных кофакторов в развитии сПР. По-видимому, «обеднение» КМ у пациенток основной группы может вызвать синдром системного воспалительного ответа, который приводит к повышенной секреции провоспалительных цитокинов и простагландинов и, соответственно, к ПР [8]. Вторым активно обсуждаемым направлением является перинатальное программирование; формирование и поддержание адекватного функционирования оси кишечник–мозг (gut–brain axis) [10] матери и плода невозможно в ситуациях дисбиоза.

Заключение

Таким образом, нормализация КМ, восстановление ее разнообразия и стабильности состава у беременных является одной из важных профилактических мер по снижению частоты ПР и, соответственно, неонатальных осложнений.

Список литературы

  1. Lawn J.E., Cousens S., Zupan J.; Lancet Neonatal Survival Steering Team. 4 million neonatal deaths: when? Where? Why? Lancet. 2005; 365(9462): 891-900. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(05)71048-5.
  2. NICE National Institute for Health and Care Excellence. Preterm labour and birth: NICE guideline. 20 November, 2015.
  3. Menon R. Spontaneous preterm birth, a clinical dilemma: etiologic, pathophysiologic and genetic heterogeneities and racial disparity. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2008; 87(6): 590-600. https://dx.doi.org/10.1080/00016340802005126.
  4. Boyle A.K., Rinaldi S.F., Norman J.E., Stock S.J. Preterm birth: Inflammation, fetal injury and treatment strategies. J. Reprod. Immunol. 2017; 119: 62-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.jri.2016.11.008.
  5. Hyman R.W., Fukushima M., Jiang H., Fung E., Rand L, Johnson B. et al. Diversity of the vaginal microbiome correlates with preterm birth. Reprod. Sci. 2014; 21(1): 32-40. https://dx.doi.org/10.1177/1933719113488838.
  6. Ходжаева З.С., Припутневич Т.В., Муравьева В.В., Гусейнова Г.Э., Горина К.А. Оценка состава и стабильности микробиоты влагалища у беременных в процессе динамического наблюдения. Акушерство и гинекология. 2019; 7: 30-8.

  7. Bröms G., Granath F., Linder M., Stephansson O., Elmberg M., Kieler H. Birth outcomes in women with inflammatory bowel disease: effects of disease activity and drug exposure. Inflamm. Bowel Dis. 2014; 20(6): 1091-8. https://dx.doi.org/10.1097/MIB.0000000000000060.
  8. Dahl C., Stanislawski M., Mandal S., Lozupone C., Clemente J.C., Knight R., Stigum H., Eggesb M. Gut microbiome of mothers delivering prematurely shows reduced diversity and lower relative abundance of Bifidobacterium and Streptococcus. PLoS One. 2017; 12(10): e0184336. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0184336.
  9. Power S.E., O’Toole P.W., Stanton C., Ross R.P., Fitzgerald G.F. Intestinal microbiota, diet and health. Br. J. Nutr. 2014; 111(3): 387-402. https://dx.doi.org/10.1017/S0007114513002560.
  10. Edwards S.M., Cunningham S.A., Dunlop A.L., Corwin E.J. The maternal gut microbiome during pregnancy. MCN Am. J. Matern. Child Nurs. 2017; 42(6): 310-7. https://dx.doi.org/10.1097/NMC.0000000000000372.
  11. Mokkala K., Röytiö H., Munukka E., Pietilä S., Ekblad U., Rönnemaa T. et al. Gut Microbiota richness and composition and dietary intake of overweight pregnant women are related to serum zonulin concentration, a marker for intestinal permeability. J. Nutr. 2016; 146(9): 1694-700. https://dx.doi.org/10.3945/jn.116.235358.
  12. Cani P.D., Osto M., Geurts L., Everard A. Involvement of gut microbiota in the development of low-grade inflammation and type 2 diabetes associated with obesity. Gut Microbes. 2012; 3(4): 279-88. https://dx.doi.org/10.4161/gmic.19625.
  13. Kashtanova D.A., Popenko A.S., Tkacheva O.N., Tyakht A.B., Alexeev D.G., Boytsov S.A. Association between the gut microbiota and diet: Fetal life, early childhood, and further life. Nutrition. 2016; 32(6): 620-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.nut.2015.12.037.
  14. Kim C.J., Romero R., Chaemsaithong P., Kim J.S. Chronic inflammation of the placenta: definition, classification, pathogenesis, and clinical significance. Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 213(4, Suppl.): S53-69. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2015.08.041.
  15. DiGiulio D.B., Romero R., Kusanovic J.P., Gómez R., Kim C.J., Seok K.S. et al. Prevalence and diversity of microbes in the amniotic fluid, the fetal inflammatory response, and pregnancy outcome in women with preterm pre-labor rupture of membranes. Am. J. Reprod. Immunol. 2010; 64(1): 38-57. https://dx.doi.org/10.1111/j.1600-0897.2010.00830.x.
  16. Nuriel-Ohayon M., Neuman H., Koren O. Microbial changes during pregnancy, birth, and infancy. Front. Microbiol. 2016; 7: 1031. https://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2016.01031.
  17. Vinturache A.E., Gyamfi-Bannerman C., Hwang J., Mysorekar I.U., Jacobsson B. Maternal microbiome – A pathway to preterm birth. Semin. Fetal Neonatal Med. 2016; 21(2): 94-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.siny.2016.02.004.
  18. Pickard J.M., Zeng M.Y., Caruso R., Núñez G. Gut microbiota: Role in pathogen colonization, immune responses, and inflammatory disease. Immunol. Rev. 2017; 279(1): 70-89. https://dx.doi.org/10.1111/imr.12567.
  19. Arumugam M., Raes J., Pelletier E., Le Paslier D., Yamada T., Mende D.R. et al. Enterotypes of the human gut microbiome. Nature. 2011; 473(7346): 174-80. https://dx.doi.org/10.1038/nature09944.
  20. Hughes E.R., Winter M.G., Duerkop B.A., Spiga L., Furtado de Carvalho T., Zhu W. et al. Microbial respiration and formate oxidation as metabolic signatures of inflammation-associated dysbiosis. Cell Host Microbe. 2017; 21(2): 208-19. https://dx.doi.org/10.1016/j.chom.2017.01.005.
  21. Litvak Y., Byndloss M.X., Tsolis R.M., Bäumler A.J. Dysbiotic Proteobacteria expansion: a microbial signature of epithelial dysfunction. Curr. Opin. Microbiol. 2017; 39: 1-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.mib.2017.07.003.
  22. Cani P.D., Bibiloni R., Knauf C., Waget A., Neyrinck A.M., Delzenne N.M., Burcelin R. Changes in gut microbiota control metabolic endotoxemia-induced inflammation in high-fat diet-induced obesity and diabetes in mice. Diabetes. 2008; 57(6): 1470-81. https://dx.doi.org/10.2337/db07-1403.
  23. Chu D.M., Seferovic M., Pace R.M., Aagaard K.M. The microbiome in preterm birth. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2018; 52: 103-13. https://dx.doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2018.03.006.
  24. Younes J.A., Lievens E., Hummelen R., van der Westen R., Reid G., Petrova M.I. Women and their microbes: the unexpected friendship. Trends Microbiol. 2018; 26(1): 16-32. https://dx.doi.org/10.1016/j.tim.2017.07.008.

Поступила 06.07.2020

Принята в печать 05.08.2020

Об авторах / Для корреспонденции

Горина Ксения Алексеевна, младший научный сотрудник 1 отделения акушерского патологии беременности, ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(926)649-77-32. E-mail: k_gorina@oparina4.ru. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Ходжаева Зульфия Сагдуллаевна, д.м.н., профессор, заместитель директора по научной работе Института акушерства,
ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(916)407-75-67. Е-mail: zkhodjaeva@mail.ru.
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Муравьева Вера Васильевна, к.б.н., с.н.с. лаборатории микробиологии отдела микробиологии, клинической фармакологии и эпидемиологии,
ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(495)438-25-33. Е-mail: v_muravieva@oparina4.ru.
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Муминова Камилла Тимуровна, к.м.н., младший научный сотрудник 1 отделения акушерского патологии беременности, ФГБУ «НМИЦ АГП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(916)373-77-07. Е-mail: k_muminova@oparina4.ru.
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Донников Андрей Евгеньевич, к.м.н., заведующий лабораторией молекулярно-генетических методов ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова»
Минздрава России. Тел.: +7(495)438-49-51. Е-mail: a_donnikov@oparina4.ru.
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Припутневич Татьяна Валерьевна, д.м.н., зав. отделом микробиологии, клинической фармакологии и эпидемиологии, ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Телефон: 8 (903) 264-12-57. Е-mail: priputl@gmail.com.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Горина К.А., Ходжаева З.С., Муравьева В.В., Муминова К.Т., Донников А.Е., Припутневич Т.В. Роль микробиоты кишечника матери при спонтанных преждевременных родах.
Акушерство и гинекология. 2020; 8: 64-71
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2020.8.64-71

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.