Профиль экспрессии плацентарных микроРНК – регуляторов окислительного стресса при синдроме задержки роста плода

Гусар В.А., Тимофеева А.В., Кан Н.Е., Чаговец В.В., Ганичкина М.Б., Франкевич В.Е.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. .И.Кулакова», Минздрава РФ, Москва
Цель исследования. Оценить профиль дифференциально экспрессирующихся микроРНК, ассоциированных с окислительным стрессом и дисфункцией сосудов плаценты, при синдроме задержки роста плода (ЗРП).
Материал и методы. В группах беременных с ранней и поздней ЗРП, контрольных группах соответствующего срока оценена экспрессия микроРНК: miR-16-5p, miR-26b-5p, miR-100-5p, miR-125b-5p, miR-146a-5p, miR-182-5p, miR-199a-5p, miR-221-3p, miR-451a и miR-574-3p в плацентарной ткани методом количественной ОТ-ПЦР в реальном времени.
Результаты. В ткани плаценты у беременных с ЗРП выявлены достоверные изменения уровней экспрессии микроРНК: при ранней ЗРП – miR-125b-5p, miR-221-3p, miR-451a и miR-574-3р, при поздней ЗРП – miR-451a и miR-574-3р, играющих важную роль в регуляции окислительного стресса. В соответствии с базой данных DAVID v.6.8 определены потенциальные мишени вышеуказанных микроРНК, которые детерминированы в качестве ключевых участников ряда биологических путей: TGFβ-, TNFα-, VEGF-, HIF1α-, FOXО-, MAPK- сигнальные пути.
Заключение. Оценка экспрессии тканевых микроРНК, регулирующих сбалансированную работу генов про- и антиоксидантной системы, позволяет в дальнейшем определить их диагностический потенциал в плазме пуповинной крови и крови беременных с ЗРП.

Ключевые слова

микроРНК
задержка роста плода
окислительный стресс
гипоксия
сосудистая дисфункция
количественная ОТ-ПЦР в реальном времени

Внутриутробная задержка роста плода (ЗРП) – наиболее распространенное осложнение, затрагивающее до 5–10% беременностей. Одной из основных причин ее возникновения является плацентарная недостаточность, которая обусловлена метаболическими и гемодинамическими расстройствами в функциональной системе «мать-плацента-плод», вследствие чего снижается поступление питательных веществ и кислорода, приводящее к нарушению соматического роста плода [1, 2]. Данное нарушение можно оценивать количественно – вес плода меньше 10-го процентиля для соответствующего гестационного возраста в сочетании с ультразвуковыми признаками ЗРП и аномальными допплерометрическими показателями в пупочной и средне-мозговой артериях [1]. У маловесных плодов в четыре раза повышен риск: 1) перинатальной смертности; 2) развития респираторного дистресс-синдрома и некротизирующего энтероколита; 3) неблагоприятных неврологических исходов, связанных с нарушением объема и миелинизацией церебральных структур мозга [2, 3].

Механизмы, лежащие в основе ЗРП, изучены недостаточно, поскольку данная патология полиэтиологична. К основным факторам развития ЗРП относятся: 1) фетальный фактор (генетические и хромосомные аномалии); 2) плацентарный (нарушение процессов имплантации и плацентации); 3) материнский фактор (сосудистые заболевания, гипоксия, дефицит питания, воздействие токсинов и инфекционных агентов) [1]. Существенную роль в запуске патологических реакций, приводящих к гестационным осложнениям, в том числе к ЗРП, играет окислительный стресс (ОС), представляющий собой нарушение баланса в системах свободнорадикального окисления и антиоксидантной защиты [4]. ОС, возникающий вследствие плацентарной ишемии/реоксигенации, обусловленной материнско-плодовой сосудистой мальперфузией, оказывает высокотоксичные эффекты при образовании пероксидов и свободных радикалов, приводящие к структурным повреждениям клеток и тканей организма [4]. Активные формы кислорода оказывают влияние на экспрессию плацентарного (PLGF) и эндотелиального факторов роста (VEGF), а повышенная генерация супероксида и оксида азота с образованием пероксинитрита приводит к сосудистой дисфункции [5].

Возрастающий интерес к исследованию малых некодирующих РНК – микроРНК (мкРНК), выступающих в роли модуляторов значительного числа биологических процессов, открывает новые возможности понимания патогенеза нарушений, связанных с плацентарной недостаточностью. В частности, идентифицированы мкРНК (miR-518b, miR-1323, miR-516b, miR-515-5p, miR-520h, miR-519d и miR-526b), экспрессия которых снижена при ЗРП [6, 7]. Показано участие членов семейства miR-200, miR-21, miR-23a/b в сосудистой дисфункции, опосредованной ОС [7, 8], а miR-210 является индикатором гипоксии и ключевым участником в митохондриальном метаболизме, поскольку ее повышенная экспрессия способствует образованию активных форм кислорода [7, 9]. Следует отметить, что большинство проводимых исследований по экспрессии мкРНК при гестационных патологиях, патогенез которых обусловлен, в том числе, ОС, были сосредоточены, в основном, на преэклампсии. Так, в ряде работ представлены дифференциально экспрессирующиеся мкРНК, ассоциированные с ОС, а именно: miR-1, miR-16, miR-20a, miR-26b, miR-29b, miR-126-3р, miR-144-3р, miR-146b-5р, miR-155, miR-181, miR-182, miR-195, miR-204, miR-210, miR-335 и miR-451а [7, 10, 11]. В связи с чем, в настоящей работе была оценена экспрессия мкРНК, как регулирующих работу антиоксидантных ферментов, так и модулирующих производство активных форм кислорода при ранней и поздней ЗРП.

Материал и методы исследования

Формирование клинических групп пациентов

В исследование были включены беременные, находившиеся под наблюдением в Национальном медицинском исследовательском центре акушерства, гинекологии и перинатологии им. В.И. Кулакова Минздрава РФ. Общая выборка из 32 пациенток репродуктивного возраста была разделена на 4 группы: 1) группу с ранней ЗРП составили беременные, родоразрешение которых было проведено до 34 недели гестации (n=7); 2) в группу с поздней ЗРП вошли беременные, родоразрешение которых было проведено после 34 недели гестации (n=6); 3) и 4) контрольные группы, соответствующие основным группам по срокам гестации (7 беременных с преждевременными родами до 34 недели (30±2); 12 беременных с доношенным сроком (37±1) и физиологически протекавшей беременностью) (таблица). Ультразвуковую допплерометрию плода и определение маркеров плацентарной дисфункции у беременных в контрольных группах не проводили.

В исследование не были включены беременные с многоплодными беременностями и наступившими в результате ЭКО, отягощенным соматическим анамнезом, наличием генетической патологии у матери и плода.

ЗРП устанавливали на основании расчетного веса плода ниже 10-го процентиля для соответствующего гестационного возраста. Состояние кровотока в артерии пуповины, средне-мозговой артерии плода и маточных артериях определяли с помощью допплерометрического исследования. В дополнение к весу плода принимали во внимание аномальный индекс пульсации в пупочной и средне-мозговой артериях, дефицит амниотической жидкости (олигогидрамнион и ангидрамнион). Родоразрешение беременных проходило с помощью операции кесарева сечения. Проведено патоморфологическое исследование плацент для подтверждения ишемических изменений.

Все исследования проведены с информированного согласия пациентов и одобрены этическим комитетом ФГБУ «НМИЦ АГП» им. В.И. Кулакова МЗ РФ.

Выделение суммарной РНК/мкРНК из ткани плаценты

В качестве экспериментальных образцов использовали образцы ткани плаценты, которые после промывки в 0,9% растворе хлорида натрия помещали в жидкий азот и переносили на -75°С для хранения. Затем образец ткани гомогенизировали в «QIAzol Lysis Reagent» и выделяли суммарную РНК («miRNeasy MicroKit», QIAGEN, Германия) с последующим обогащением низкомолекулярной фракцией мкРНК («RNeasy MinElute Cleanup Kit», QIAGEN, Германия). Проверку качества выделенных образцов проводили на биоанализаторе Agilent 2100 («Agilent Technologies») с помощью набора RNA 6000 Nano Kit, а концентрацию измеряли на флуориметре Qubit 3.0 («Invitrogen»). Полученные образцы хранили при -75°C для последующего использования.

Метод количественной полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) в реальном времени

Реакцию обратной транскрипции проводили с использованием «miScript II RT Kit». Для определения уровня экспрессии мкРНК в ткани плаценты проводили количественную ПЦР («miScript SYBR Green PCR Kit») с использованием прибора StepOnePlus («Applied Biosystems») и следующих специфичных к РНК смысловых праймеров: hsa-miR-16-5p MIMAT0000069 (5ʹ-TAGCAGCACGTAAATATTGGCG), hsa-miR-26b-5p MIMAT0000083 (5ʹ- TTCAAGTAATTCAGGATAGGT), hsa-miR-100-5p MIMAT0000098 (5ʹ-AACCCGTAGATCCGAACTTGTG), hsa-miR-125b-5p MIMAT0000423 (5ʹ-TCCCTGAGACCCTAACTTGTGA), hsa-miR-146a-5p MIMAT0000449 (5ʹ-TGAGAACTGAATTCCATGGGTT), hsa-miR-182-5p MIMAT0000259 (5ʹ-TTTGGCAATGGTAGAACTCACACT), hsa-miR-199a-5p MIMAT0000231 (5ʹ-CCCAGTGTTCAGACTACCTGTTC), hsa-miR-221-3p MIMAT0000278 (5ʹ-AGCTACATTGTCTGCTGGGTTTC), hsa-miR-451a MIMAT0001631 (5ʹ-AAACCGTTACCATTACTGAGTT), hsa-miR-574-3p MIMAT0003239 (5ʹ-CACGCTCATGCACACACCCACA), SNORD68 (5’- ACATTCTCCGGAATCGCTGT). Все этапы осуществляли в соответствии с протоколами фирмы-производителя QIAGEN. За пороговый уровень экспрессии принимали Ct<34. Уровень экспрессии мкРНК определяли методом 2-ΔΔCT, используя в качестве референсной РНК SNORD68.

Статистический анализ полученных данных

Статистическую достоверность отличия уровней мкРНК в сравниваемых группах оценивали методом Вилкоксона-Манна-Уитни с помощью скриптов, написанных на языке R [12].

Результаты исследования и обсуждение

Поскольку ключевым моментом в развитии ЗРП является нарушение маточно-плацентарного кровотока, вследствие аномального ремоделирования спиральных артерий и дисфункции сосудистого эндотелия, обусловленное несбалансированной работой про- и антиоксидантной системы, нами были отобраны мкРНК, которые играют важную роль в патогенезе сердечно-сосудистых заболеваний по данным литературы [13–15]. Акцент был сделан на следующих мкРНК: miR-16-5p, miR-26b-5p, miR-100-5p, miR-125b-5p, miR-146a-5p, miR-182-5p, miR-199a-5p, miR-221-3p, miR-451a и miR-574-3p.

Анализ дифференциальной экспрессии показал, что в ткани плаценты в группе беременных с ранней ЗРП (р<34) уровни экспрессии miR-221-3p и miR-451a относительно группы сравнения (N<34) были достоверно снижены (р<0,03), а экспрессия miR-125b-5p и miR-574-3р, напротив, значимо повышалась (р<0,03) (рис. 1).

В группе беременных с поздней ЗРП (р>34) только две мкРНК – miR-574-3p и miR-451a показали достоверные отличия (рис. 2). При этом их экспрессия также, как и в группе с ранней ЗРП, изменялась разнонаправленно: значимое повышение уровня экспрессии miR-574-3p (р<0,04) и понижение miR-451a (р<0,006) относительно группы контроля (N>34).

Интересно отметить, что miR-125b-5p и miR-221-3p изменяли свою экспрессию только при ранней ЗРП. Специфичность этих изменений требует проверки на более многочисленной выборке беременных с ЗРП.

В исследованиях, проведенных Hromadnikova с соавторами, была оценена экспрессия ряда мкРНК в плацентарной ткани и пуповинной крови в группах беременных с артериальной гипертензией, преэклампсией и ЗРП [13, 14].

При ранней ЗРП показано снижение экспрессии miR-125b-5p,-199a-5p, -221-3p и -574-3p в плацентарной ткани [13]. Авторы отметили, что при ранней преэклампсии с тяжелым течением экспрессия miR-199a-5p, -221-3p и -574-3p также была снижена в периферической крови беременных, а miR-199a-5p ассоциирована с ЗРП вне зависимости от срока гестации и степени тяжести состояния плода (олигогидрамнион/ангидрамнион) [15]. Кроме этого, при оценке уровня экспрессии miR-221-3p в пуповинной и периферической крови матери при ЗРП была установлена отрицательная корреляция с индексом пульсации в артерии пуповины (r=−0.390, p=0.017) [14].

В нашем исследовании не было обнаружено статистически значимых изменений уровня экспрессии miR-16-5p, miR-26b-5p, miR-100-5p, miR-146a-5p, miR-182-5p и miR-199a-5p в плацентарной ткани при ЗРП, в отличие от данных других авторов, выявивших дифференциальную экспрессию указанных мкРНК при артериальной гипертензии, преэклампсии и ЗРП [13–15]. Необходимо отметить, что некоторое расхождение в полученных нами данных по уровням экспрессии мкРНК с данными других исследователей могут объясняться, по всей видимости, различиями в: 1) способе взятия материала для исследования; 2) гестационных сроках сопоставляемых групп; 3) сопутствующей патологии у матери.

В работе Chen с соавторами выявлено прямо противоположное регуляторное воздействие miR-221/222 на пролиферацию и миграцию гладкомышечных и эндотелиальных клеток, обусловленное разнонаправленной экспрессией генов-мишеней (p27, p57, c-kit, eNOS, Ets-1) miR-221/222 в анализируемых клеточных культурах [16]. Известно также, что сверхэкспрессия miR-221/222, индуцированная гипоксией, приводит опосредованно к снижению уровня эндотелиальной синтазы оксида азота (eNOS) [8]. NOS экспрессируется в плацентарном синцитиотрофобласте, в эндотелии сосудов плаценты и пуповины, где синтезируемый NO способствует низкому фетоплацентарному сосудистому сопротивлению [17]. Вероятно, наблюдаемое в настоящей работе снижение уровня экспрессии miR-221-3p при ранней ЗРП, предполагает ее существенную роль в регуляции кровотока в плаценте и обеспечении адекватного поступления кислорода для роста и развития плода, о чем свидетельствуют измененные показатели церебро-плацентарного соотношения у беременных при ранней ЗРП (таблица).

Помимо взаимодействия miR-221/222 с выше­перечисленными целевыми генами сосудистой системы, ее известной мишенью является мощный эффектор апоптоза – проапоптотический белок PUMA, который инициирует каспаза-зависимый митохондриальный путь апоптоза. В исследовании Zhang с соавторами, было показано, что miR-221/222 в трансфецированных эпителиальных опухолевых клетках ингибирует клеточную пролиферацию путем индукции апоптоза [18].

Выявленный в настоящей работе повышенный уровень экспрессии miR-125b при ранней ЗРП играет важную роль в регуляции сбалансированной работы про- и антиоксидантной системы. Так, при церебральной ишемии/реперфузии in vitro, на модели кислородно-глюкозной депривации/реоксигенации (OGD/R) в клетках нейрональной линии PC-12 обнаруженная высокая экспрессия miR-125b приводила к снижению уровня протеинкиназы 2, активациии НАДФH-оксидазы (NOX2 и NOX4) и, как следствие, к увеличению уровня свободных радикалов и апоптоза нейронов [19]. В исследовании других авторов на модели окклюзии средне-мозговой артерии (MCAO) было продемонстрировано влияние сверхэкспрессии miR-125b-5р на снижение уровня цистатионин-β-синтазы (CBS) – основного белка, катализирующего производство H2S в головном мозге. Напротив, подавление экспрессии miR-125b-5р в клетках линии PC-12 способствовало повышенной выработке H2S, снижению уровней лактатдегидрогеназы (LDH), малонового диальдегида (MDA), супероксида и пероксида, уменьшению числа апоптотических клеток [20]. Известно, что протективное действие H2S при гипоксическом повреждении коррелирует с уменьшением количества активных форм кислорода и повышением уровня антиоксидантов [21]. В свою очередь, главным регулятором экспрессии miR-125b-5р является ядерный транскрипционный фактор NRF2 – важный инициатор транскрипции генов антиоксидантных белков (гемоксигеназы 1, глутатиона, глутатионтрансферазы, тиоредоксинредуктазы 1) [22]. В связи с чем, можно сделать вывод, что увеличение экспрессии miR-125b-5р в плацентарной ткани приведет к сдвигу баланса между образованием антиоксидантных белков и свободных радикалов в сторону последних. В ряде исследований проанализировали показатели ОС и общего антиоксидантного статуса в плацентарной ткани, амниотической жидкости и плазме крови беременных с ЗРП. В частности, Mert с соавторами наблюдали значительное увеличение, как уровня свободных радикалов, так и антиоксидантов в плазме крови беременных с ЗРП и преэклампсией [23]. В настоящее время проведены исследования по оценке взаимосвязи уровня малонового диальдегида (MDA) и каталазы (CAT) , как в сыворотке крови матери и пуповинной крови, так и в тканях миометрия и плаценты беременных с ЗРП и преэклампсией [24].

В нашем исследовании, как при ранней, так и при поздней ЗРП, была выявлена сниженная экспрессия miR-451а – другой немаловажной молекулы, участвующей в защите клеток от ОС. В частности, в работе Wang с соавторами доказан ее кардиопротективный эффект при развитии ОС в условиях ишемии [25]. Отсутствие экспрессии miR-451а обуславливало повышенную восприимчивость эритроцитов к действию окислителей в связи с изменением уровня фосфосерин/треонинсвязывающего белка 14-3-3zeta (KCIP-1) – ингибитора транскрипционного фактора FoxO3, являющегося положительным регулятором антиоксидантных генов в эритроцитах [26]. Кроме того, известным модулятором экспрессии miR-451а в культуре нейрон-подобных клеток SH-SY5Y является эритропоэтин, вызывающий антиоксидантные, антиапоптотические и нейропротективные эффекты за счет повышения экспрессии некоторых генов-мишеней miR-451а, в том числе, матриксной металлопротеиназы 9 (MMP9), циклинзависимой киназы 2 (CDK2), рецептора эритропоэтина (EpoR), регулятора клеточного апоптоза (BCL2) [27].

Что касается miR-574-3p, повышенный уровень которой был обнаружен нами в ткани плаценты при ЗРП, в литературе отсутствуют данные об ее участии в ОС, хотя показано повышение уровня экспрессии miR-574-3p при сердечно-сосудистой патологии, в частности, инфаркте миокарда [28].

Проведенный анализ баз данных (miRWalk, miRDB, miRTarbase, DAVID) позволил определить прогнозируемые мишени miR-125b-5p, miR-221-3p, miR-451а и miR-574-3p, которые связаны с различными осложнениями беременности, в том числе ЗРП, и детерминированы в качестве важных участников в регуляции ряда биологических путей, представленных на рисунке 3.

Таким образом, для обеспечения физиологического течения беременности необходима многоуровневая регуляция сбалансированной работы систем свободнорадикального окисления и антиоксидантной защиты, в которой немаловажную роль играет мкРНК. Изменение концентрации последней приводит к сдвигу баланса в ту или иную сторону, обуславливая патологическое окислительное повреждение тканей плаценты и, связанное с ним последующее нарушение роста и развития плода.

Заключение

В последнее время возрастает интерес к исследованию циркулирующих мкРНК в качестве неинвазивных маркеров диагностики различных акушерских синдромов, а прогнозирование осложнений беременности на ранних сроках с использованием подобных маркеров является актуальным для мониторинга состояния матери и плода. В связи с чем, перспективы продолжения настоящего исследования заключаются в оценке диагностического потенциала тканевых мкРНК в плазме пуповинной крови и крови беременных с ЗРП с последующим поиском корреляций с белковыми маркерами тканевого ОС и антиоксидантного ответа, а также с ультразвуковыми допплерометрическими показателями состояния плода.

Список литературы

  1. Devaskar S.U., Chu A. Intrauterine growth restriction: hungry for an answer. Physiology (Bethesda). 2016; 31(2): 131-46. https://dx.doi.org/10.1152/physiol.00033.2015.
  2. Audette M.C., Kingdom J.C. Screening for fetal growth restriction and placental insufficiency. Semin. Fetal Neonatal Med. 2018; 23(2): 119-25. https://dx.doi.org/10.1016/j.siny.2017.11.004.
  3. Miller S.L., Huppi P.S., Mallard C. The consequences of fetal growth restriction on brain structure and neurodevelopmental outcome. J. Physiol. 2016; 594(4): 807-23. https://dx.doi.org/.1113/JP271402.
  4. Schoots M.H., Gordijn S.J., Scherjon S.A., van Goor H., Hillebrands J.L. Oxidative stress in placental pathology. Placenta. 2018; 69: 153-61. https://dx.doi.org/10.1016/ j.placenta.2018.03.003.
  5. Myatt L., Cui X. Oxidative stress in the placenta. Histochem. Cell Biol. 2004; 122(4): 369-82. https://dx.doi.org/10.1007/s00418-004-0677-x.
  6. Higashijima A., Miura K., Mishima H., Kinoshita A., Jo O., Abe S. et al. Characterization of placenta-specific microRNAs in fetal growth restriction pregnancy. Prenat. Diagn. 2013; 33(3): 214-22.
  7. Rudov A., Balduini W., Carloni S., Perrone S., Buonocore G., Cristina M. Involvement of miRNAs in placental alterations mediated by oxidative stress. Oxid. Med. Cell. Longev. 2014; 2014: 103068. https://dx.doi.org/10.1155/2014/103068.
  8. Magenta A., Greco S., Gaetano C., Martelli F. Oxidative stress and microRNA in vascular diseases. Int. J. Mol. Sci. 2013; 14(9): 17319-46.
  9. Cicchillitti L., Di Stefano V., Isaia E., Crimaldi L., Fasanaro P., Ambrosino V. et al. Hypoxia-inducible factor 1-alpha induces miR-210 in normoxic differentiating myoblasts. J. Biol. Chem. 2012; 287(53):44761-71.
  10. Hu Y., Li P., Hao S., Liu L., Zhao J., Hou Y. Differential expression of microRNAs in the placentae of Chinese patients with severe pre-eclampsia. Clin. Chem. Lab. Med. 2009; 47(8): 923-9.
  11. Cross C.E., Tolba M.F., Rondelli C.M., Xu M., Abdel-Rahman S.Z. Oxidative stress alters miRNA and gene expression profiles in villous first trimester trophoblasts. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 257090. https://dx.doi.org/10.1155/2015/257090.
  12. Team R.C. R: A language and environment for statistical computing. R foundation for statistical computing, Vienna, Austria, 2017. Available at: https://www.R-project.org/
  13. Hromadnikova I., Kotlabova K., Hympanova L., Krofta L. Cardiovascular and cerebrovascular disease associated microRNAs are dysregulated in placental tissues affected with gestational hypertension, preeclampsia and intrauterine growth restriction. PLoS One.| 2015; 10(9): e0138383. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0138383.
  14. Hromadnikova I., Kotlabova K., Ivankova K., Vedmetskaya Yu., Krofta L. Profiling of cardiovascular and cerebrovascular disease associated microRNA expression in umbilical cord blood in gestational hypertension, preeclampsia and fetal growth restriction. Int. J. Cardiol. 2017; 249: 402-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijcard.2017.07.045.
  15. Hromadnikova I., Kotlabova K., Hympanova L., Krofta L. Gestational hypertension, preeclampsia and intrauterine growth restriction induce dysregulation of cardiovascular and cerebrovascular disease associated microRNAs in maternal whole peripheral blood. Thromb. Res. 2016;137: 126-40.
  16. Liu X., Cheng Y., Yang J., Xu L., Zhang C. Cell-specific effects of miR-221/222 in vessels: molecular mechanism and therapeutic application. J. Mol. Cell. Cardiol. 2012; 52(1): 245-55. https://dx.doi.org/ 10.1016/j.yjmcc.2011.11.008.
  17. Sladek S.M., Magness R.R., Conrad K.P. Nitric oxide and pregnancy. Am. J. Physiol. 1997; 272(2, Pt 2): R441-63.
  18. Zhang C., Zhang J., Zhang A., Wang Y., Han L., You Y. et al. PUMA is a novel target of miR-221/222 in human epithelial cancers. Int. J. Oncol. 2010; 37(6): 1621-6.
  19. Liang Y., Xu J., Wang Y., Tang J.Y., Yang S.L., Xiang H.G. et al. Inhibition of MiRNA-125b decreases cerebral ischemia/reperfusion injury by targeting CK2α/NADPH oxidase signaling. Cell. Physiol. Biochem. 2018; 45(5): 1818-26. https://dx.doi.org/10.1159/000487873.
  20. Shen Y., Shen Z., Guo L., Zhang Q., Wang Z., Miao L. et al. MiR-125b-5p is involved in oxygen and glucose deprivation injury in PC-12 cells via CBS/H2S pathway. Nitric Oxide. 2018; 78(1): 11-21. https://dx.doi.org/10.1016/j.niox.2018.05.004.
  21. Yu Q., Lu Z., Tao L., Yang L., Guo Y., Yang Y. et al. ROS-dependent neuroprotective effects of NaHS in ischemia brain injury involves the PARP/AIF pathway. Cell. Physiol. Biochem. 2015; 36(4): 1539-51.
  22. Shah N.M., Zaitseva L., Bowles K.M., MacEwan D.J., Rushworth S.A. NRF2-driven miR-125B1 and miR-29B1 transcriptional regulation controls a novel anti-apoptotic miRNA regulatory network for AML survival. Cell Death Differ. 2015; 22(4): 654-64. https://dx.doi.org/ 10.1038/cdd.2014.152.
  23. Mert I., Oruc A.S., Yukse S., Cakar E.S., Buyukkagnıcı U., Karaer A., Danısman N. Role of oxidative stress in preeclampsia and intrauterine growth restriction J. Obstet. Gynaecol. Res. 2012; 38(4): 658-64. https://dx.doi.org/10.1111/j.1447-0756.2011.01771.x.
  24. Biberoglu E., Biberoglu K., Kirbas A., Daglar K., Genc M., Avci A., Danisman N. Circulating and myometrial markers of oxidative stress in pregnant women with fetal growth restriction. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2015; 42(1): 29-35. https://dx.doi.org/10.1111/jog.12857.
  25. Wang X., Zhu H., Zhang X., Liu Y., Chen J., Medvedovic M. et al. Loss of the miR-144/451 cluster impairs ischaemic preconditioning-mediated cardioprotection by targeting Rac-1. Cardiovasc. Res. 2012; 94(2): 379-90.
  26. Yu D., dos Santos C.O., Zhao G., Jiang J., Amigo J.D., Khandros E. et al. MiR-451 protects against erythroid oxidant stress by repressing 14-3-3zeta. Genes Dev. 2010; 24(15): 1620-33.
  27. Alural B., Duran G.A., Tufekci K.U., Allmer J., Onkal Z., Tunali D. et al. EPO mediates neurotrophic, neuroprotective, anti-oxidant, and anti-apoptotic effects via downregulation of miR-451 and miR-885-5p in SH-SY5Y neuron-like cells. Front. Immunol. 2014; 4: 475. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2014.00475.
  28. Boštjančič E., Zidar N., Glavač D. MicroRNAs and cardiac sarcoplasmic reticulum calcium ATPase-2 in human myocardial infarction: expression and bioinformatics analysis. BMC Genomics. 2012; 13(1): 552.

Поступила 21.06.2018

Принята в печать 22.06.2018

Об авторах / Для корреспонденции

Гусар Владислава Анатольевна, к.м.н., с.н.с. лаборатории прикладной транскриптомики отдела системной биологии в репродукции ФГБУ «НМИЦАГиП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, 4. Телефон: 8 (495) 531-44-44 доб. 2197, моб. 8(916)283-72-10. E-mail: v_gusar@oparina4.ru
Тимофеева Анжелика Владимировна, к.б.н., с.н.с. лаборатории прикладной транскриптомики отдела системной биологии в репродукции ФГБУ «НМИЦАГиП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, 4. Телефон: 8 (495) 531-44-44 доб. 2197. E-mail: v_timofeeva@oparina4.ru
Кан Наталья Енкыновна, д.м.н., профессор, заведующая акушерским обсервационным отделением ФГБУ «НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова»
Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, 4. Телефон: 8 (495) 531-44-44. E-mail: n_kan@oparina4.ru
Чаговец Виталий Викторович, к.ф-м.н., с.н.с. лаборатории протеомики и метаболомики человека отдела системной биологии в репродукции ФГБУ «НМИЦАГиП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, 4. Телефон: 8 (495) 531-44-44. E-mail: v_chagovets@oparina4.ru
Ганичкина Мария Борисовна, аспирант ФГБУ «НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, 4. Телефон: 8 (495) 531-44-44. E-mail: m_ganichkina@oparina4.ru
Франкевич Владимир Евгеньевич, к.ф-т.н., заведующий отделом системной биологии в репродукции ФГБУ «НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова»
Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, 4. Телефон: 8 (495) 531-44-44. E-mail: v_frankevich@oparina4.ru

Для цитирования: Гусар В.А., Тимофеева А.В., Кан Н.Е., Чаговец В.В., Ганичкина М.Б., Франкевич В.Е. Профиль экспрессии плацентарных МикроРНК - регуляторов окислительного стресса при синдроме задержки роста плода. Акушерство и гинекология. 2019; 1: 74-80.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.1.74-80

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.