Первый российский опыт применения управляемой механической микровибрации при культивировании эмбрионов человека в программах вспомогательных репродуктивных технологий

Романов А.Ю., Фролова А.М., Макарова Н.П., Долгушина Н.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия
Цель. Оценить влияние контролируемой механической микровибрации эмбрионов человека первых 5 суток развития на частоту наступления беременности в программах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ).
Материалы и методы. В исследование были включены 75 (группа микровибрации) и 300 (группа контроля) супружеских пар без наличия противопоказаний и развития осложнений в ходе проведения программ ВРТ. При культивировании в условиях механической микровибрации инкубатор помещали на платформу ArisTT180-s (K&S Advanced Systems Ltd, Израиль) в режиме активной вибрации с частотой 40 Гц в течение 30 с с интервалом покоя 30 минут.
Результаты. Частота наступления беременности в расчете на цикл овариальной стимуляции составила 42,7% (n=32) в группе микровибрации против 33,7% (n=101) в группе контроля (p=0,09). Частота наступления беременности в расчете на перенос эмбриона(ов) составила 50,8 и 40% соответственно (p=0,097).
Заключение. Применение контролируемой механической микровибрации при культивировании эмбрионов позволяет значительно повысить частоту наступления беременности в программах ВРТ.

Ключевые слова

экстракорпоральное оплодотворение
вспомогательные репродуктивные технологии
микровибрация
эмбрион
бесплодие
беременность

В последние годы особое внимание уделяется подбору оптимальных параметров культивирования эмбрионов человека в программах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) [1–4], поскольку при развитии вне организма матери эмбрион постоянно подвергается стрессовым воздействиям, которые он не испытал бы в естественных условиях. К ним относятся изменение рН среды, температурные колебания, воздействие атмосферных концентраций кислорода, естественного и искусственного света [5]. Для улучшения систем культивирования эмбрионов человека проводится подбор оптимального состава культуральной среды [6–8], однако большинство систем культивирования представляют собой относительно небольшой (до 1 мл) и полностью статичный объем культуральной среды [9–11]. Очевидно, что эти условия далеки от тех, в которых находится эмбрион человека в условиях in vivo [12].

В естественных условиях оплодотворение и преимплантационное развитие эмбриона происходят в маточной трубе. В это время эмбрион находится в постоянном движении за счет перистальтических сокращений мышечной стенки маточной трубы и биения ворсинок ее слизистой оболочки. Мышечные сокращения необходимы для обволакивания гамет и, в последующем, эмбриона секретом маточных труб, что способствует нормальному процессу оплодотворения и продвижению эмбриона по направлению к матке [13].

Помимо секреторного эпителия, слизистая оболочка маточной трубы представлена клетками ворсинчатого эпителия, ворсинки которых постоянно колеблются с частотой от 4,9±0,2 Гц в пролиферативную фазу до 5,8±0,3 Гц в секреторную фазу менструального цикла [14, 15]. По данным Исаченко и соавт. [16], в естественных условиях эмбрион находится под постоянным воздействием вибрации с частотой до 20 Гц. Цилиарные сокращения, вызывая колебания секрета маточной трубы, не только способствуют улучшению диффузии питательных веществ, но и оказывают непосредственное механическое воздействие на эмбрион. Это приводит к активации различных внутриклеточных каскадов [17] и является важным фактором в регуляции преимплантационного развития эмбриона [18].

Таким образом, при развитии в организме матери эмбрион находится в постоянном и весьма сложном динамическом взаимодействии со своим микро- и макроокружением. Сокращение мышц матки, а также маточных труб, вместе с постоянными сокращениями ворсинок эпителиальной выстилки создают уникальные условия для продвижения гамет, оплодотворения и последующего развития эмбриона [19, 20]. Влияние динамического микроокружения на развитие эмбриона как в естественных условиях (in vivo), так и при культивировании in vitro в программах ВРТ не вызывает сомнений [12].

Новым подходом к улучшению условий культивирования эмбрионов человека в программах ВРТ может стать сочетание представленных выше систем культивирования с микровибрацией [16, 21, 22]. Цель исследования – оценить влияние контролируемой механической микровибрации эмбрионов человека первых 5 суток развития на частоту наступления беременности в программах ВРТ.

Материалы и методы

В проспективное исследование были включены 375 супружеских пар без наличия противопоказаний и развития осложнений в ходе проведения программ ВРТ. Перед включением в протокол экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) пациентки были обследованы согласно приказу Мин­здрава Российской Федерации от 30.08.2012 №107н «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению» [23]. Учитывая пилотный характер исследования, из 375 пациенток 75 пациенток вошли в группу микровибрации, 300 пациенток составили группу контроля.

Критериями невключения в исследование были: невозможность переноса эмбриона в связи с необходимостью проведения преимплантационного генетического тестирования, использование ооцитов донора, возраст пациентки старше 45 лет, плановая криоконсервация всех полученных ооцитов или эмбрионов. Критериями исключения из исследования были: получение менее двух ооцитов стадии развития MII, экстренная криоконсервация всех полученных ооцитов или эмбрионов, отмена переноса эмбриона в связи с риском развития синдрома гиперстимуляции яичников, патологией эндометрия, обострением соматического или инфекционного заболевания, а также желание пациентки прекратить участие в исследовании. Все пациентки подписали добровольное информированное согласие на участие в исследовании. Исследование было одобрено комиссией по этике ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.

Стимуляцию функции яичников проводили по протоколу с антагонистами гонадотропин-рилизинг-гормона (ГнРГ). В качестве триггера овуляции использовали хорионический гонадотропин (ХГЧ) или агонист ГнРГ. Применяли одноэтапное культивирование эмбрионов. Морфологическую оценку эмбрионов по классификации Гарднера (Gardner D.K., 1999) проводил эмбриолог через 120–122 ч после оплодотворения. Перенос эмбрионов в полость матки проводили в нативном цикле на 5-е сутки культивирования. Наступление беременности оценивали по уровню β-ХГЧ в крови пациенток через 14 суток после переноса эмбриона.

При культивировании в условиях механической микровибрации инкубатор помещали на платформу ArisTT180-s (K&S Advanced Systems Ltd, Израиль) в режиме активной вибрации с частотой 40 Гц в течение 30 с с интервалом покоя 30 мин. Культивирование в условиях микровибрации осуществляли на протяжении всего срока от получения ооцитов до проведения переноса (или криоконсервации) эмбриона. Оценку реальной частоты и амплитуды проводили при помощи встроенного осциллографа.

Для статистического анализа и построения графиков использовали пакет статистических программ GraphPad Prism (GraphPad Software, США). Для определения нормальности распределения использовали обобщенный тест Д’Агостино–Пирсона. Для непараметрических количественных данных рассчитывали медиану и интерквартильный размах, использовали тест Манна–Уитни. Для качественных данных рассчитывали абсолютное значение и %, использовали точный тест Фишера и тест Кохрана–Армитажа для линейных трендов с одной степенью свободы. Различия считали статистически значимыми при p<0,05.

Результаты

Пациентки, включенные в исследование, не различались по возрасту, индексу массы тела (ИМТ) и клинико-анамнестическим данным. Так, возраст пациенток группы микровибрации составил 33 (30–39) года, контрольной группы – 34 (30–38) года (p=0,77); возраст супруга составил 35 (31–38) лет в группе микровибрации и 34 (32–38) года в группе контроля (p=0,99). ИМТ пациенток составил 22,3 (20,9–25,6) против 21,8 (20,1–24,3) кг/м2 соответственно (p=0,36). Для 39 (52,0%) пациенток группы микровибрации и 159 (53,0%) пациенток группы контроля данная попытка ЭКО была первой (p=0,49). Пациентки не различались по общему числу попыток овариальной стимуляции и переноса эмбрионов в анамнезе, которое колебалось от 0 до 9 и в среднем составило 0 (0–1) для обеих групп (p=0,77). Средняя продолжительность бесплодия также не различалась в группах сравнения и составила 5 (3–9) и 5 (3–7) лет соответственно (p=0,19).

Не имели беременностей в анамнезе и обратились с жалобами на первичное бесплодие 39 (52,0%) пациенток группы микровибрации и 157 (52,3%) пациенток контрольной группы (p=0,53). Среди пациенток с вторичным бесплодием число беременностей в анамнезе в группе микровибрации составило 2 (1–2), в контрольной группе – 1 (1–2), p=0,31. Среднее число родов, абортов, внематочных беременностей и неразвивающихся беременностей совпадало в обеих группах и для каждого из исходов беременностей составило 0 (0–1), p=0,68, 0,77, 0,77 и 0,66, для вышеперечисленных исходов родов соответственно.

В группе микровибрации цикл овариальной стимуляции закончился переносом одного эмбриона у 52 (69,3%) пациенток, двух эмбрионов – у 11 (14,7%) пациенток. Перенос был отменен в связи с отсутствием эмбриона для переноса у 12 (16,0%) пациенток. В контрольной группе цикл овариальной стимуляции закончился переносом одного эмбриона у 206 (68,7%) пациенток (p=0,52), двух эмбрионов – у 42 (14,0%) пациенток (p=0,50). Перенос был отменен в связи с отсутствием эмбриона, пригодного для переноса, у 52 (17,3%) пациенток (p=0,47).

Частота наступления беременности в расчете на цикл овариальной стимуляции составила 42,7% (n=32) в группе микровибрации против 33,7% (n=101) в группе контроля (p=0,09). Частота наступления беременности в расчете на перенос эмбриона(ов) составила 50,8% в группе микровибрации против 40% в группе контроля (p=0,097). При переносе одного эмбриона беременность наступила у 27 (52,0%) из 52 пациенток группы микровибрации и у 85 (41,3) из 206 пациенток контрольной группы (p=0,11). При переносе двух эмбрионов – у 5 (45,5%) из 11 пациенток группы микровибрации и у 16 (38,1%) из 42 пациенток группы контроля (p=0,46).

Кроме того, мы проанализировали частоту наступления беременности в зависимости от числа перенесенных эмбрионов вне зависимости от способа их культивирования. Частота наступления беременности при переносе одного эмбриона в полость матки составила 43,4%, при переносе двух эмбрионов – 39,6% (p=0,36).

При переносе одного эмбриона степень зрелости эмбриона по классификации Гарднера, качество внутренней клеточной массы (ВКМ) и трофэктодермы (ТЭ) эмбриона, перенесенного в полость матки, не различались в группах сравнения (табл. 1). При переносе двух эмбрионов в полость матки степень зрелости эмбрионов в группе микровибрации была выше, чем в контрольной группе (p=0,02). Качество ВКМ перенесенных эмбрионов также было несколько выше в группе микровибрации (p=0,08), тогда как качество ТЭ не различалось в группах сравнения (p=0,16).

В группе микровибрации 45 (60%) пациенток имели эмбрионы, пригодные для криоконсервации, в группе контроля – 165 (55%) пациенток (p=0,258). Среднее число криоконсервированных эмбрионов было несколько выше в группе микровибрации – 3 (1,5–5) против 2 (1–3) в группе контроля (p=0,06).

Обсуждение

В исследовании мы сравнили эффективность программ ВРТ при культивировании эмбрионов человека в стандартных условиях и при культивировании в условиях контролируемой механической микровибрации, цель которой – максимально возможное приближение условий культивирования эмбриона к естественным. Была проанализирована частота наступления беременности у 375 супружеских пар без наличия противопоказаний и развития осложнений в ходе проведения программ ВРТ.

Пациентки, включенные в исследование, не различались по возрасту, ИМТ и клинико-анамнестическим данным. Также группы были сопоставимы по числу эмбрионов, перенесенных в полость матки. Частота отмены переноса эмбриона также была сопоставима.

Согласно полученным данным, частота наступления беременности в расчете на цикл овариальной стимуляции была на 9% выше при культивировании эмбриона в условиях микровибрации, а в расчете на перенос эмбриона(ов) в полость матки – на 10,8% выше. Полученные данные согласуются с данными других авторов, изучавших применение данной методики для повышения эффективности программ ВРТ. Так, по данным Hur Y.S. и соавт. (2016), применение контролируемой механической микровибрации позволяет повысить частоту наступления беременности на 5,2% [24], по данным Isachenko V. и соавт. (2017) – на 6–9% (в зависимости от возраста пациенток) [25].

Частота наступления беременности не различалась в зависимости от числа перенесенных эмбрионов, что лишь отчасти может быть объяснено более низким качеством эмбрионов при неселективном переносе [26, 27]. При этом эффективность микровибрации была несколько выше при селективном переносе эмбриона, хотя нам не удалось достичь статистической значимости различий из-за уменьшения объема выборки при раздельном анализе селективного и неселективного переносов.

Примечательно, что при переносе двух эмбрионов в полость матки степень зрелости эмбриона по классификации Гарднера, а также качество ВКМ переносимых эмбрионов были выше при культивировании эмбрионов в условиях микровибрации. При этом при переносе одного эмбриона в полость матки данные различия не прослеживались. Это может быть объяснено более выраженным влиянием механической микровибрации на эмбрионы низкого и среднего качества, однако для подтверждения данной гипотезы необходимы дальнейшие исследования с иным дизайном научной работы [12, 24, 25, 28]. Кроме того, в пользу положительного влияния контролируемой механической микровибрации свидетельствует повышение среднего числа эмбрионов, пригодных для криоконсервации с 2 (1–3) до 3 (1,5–5).

Заключение

Использование систем культивирования эмбрионов человека с применением контролируемой механической микровибрации позволяет повысить частоту наступления беременности в программах ВРТ. Тем не менее для внедрения данного способа культивирования эмбрионов в широкую клиническую практику необходимы дальнейшие исследования с оценкой частоты рождения живого и здорового ребенка и отдаленных исходов.

Список литературы

  1. Shafei R.A., Syrkasheva A.G., Romanov A.Y., Makarova N.P., Dolgushina N. V., Semenova M.L. Blastocyst hatching in humans. Russ J Dev Biol. 2017; 48(1): 5–15. PMID: 30272915
  2. Романов А.Ю., Ковальская Е.В., Макарова Н.П., Сыркашева А.Г., Долгушина Н.В. Использование цейтраферной съемки для оценки качества эмбрионов человека в программах экстракорпорального оплодотворения. Цитология. 2017; 59(7): 462–6.

  3. Ибрагимова Э.О., Долгушина Н.В., Сыркашева А.Г., Романов А.Ю., Языкова О.И., Макарова Н.П. Роль вспомогательного хетчинга в программах лечения бесплодия методами вспомогательных репродуктивных технологий: обзор литературы. Гинекология. 2016; 18(2): 44–7.

  4. Долгушина Н.В., Ибрагимова Э.О., Романов А.Ю., Макарова Н.П., Довгань А.А., Сыркашева А.Г., Калинина Е.А. Роль проназного хетчинга в повышении эффективности программ вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и гинекология. 2018; (3): 70–5.

  5. Ковальская Е.В., Сыркашева А.Г., Романов А.Ю., Макарова Н.П., Долгушина Н.В. Современные представления о компактизации эмбрионов человека в условиях in vitro. Технологии живых систем. 2017; (1): 25–35.

  6. Biggers J.D., Summers M.C. Choosing a culture medium: making informed choices. Fertil Steril. 2008; 90(3): 473–83 doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.08.010
  7. Loutradis D., Drakakis P., Kallianidis K., Sofikitis N., Kallipolitis G., Milingos S., et al. Biological factors in culture media affecting in vitro fertilization, preimplantation embryo development, and implantation. Ann N Y Acad Sci. 2000; 900: 325–35. doi:10.1111/j.1749-6632.2000.tb06245.x
  8. Chronopoulou E., Harper J.C. IVF culture media: past, present and future. Hum Reprod Update. 2015; 21(1): 39–55. doi: 10.1093/humupd/dmu040
  9. Brison D.R., Houghton F.D., Falconer D., Roberts S.A., Hawkhead J., Humpherson P.G., et al. Identification of viable embryos in IVF by non-invasive measurement of amino acid turnover. Hum Reprod. 2004; 19(10): 2319–24. doi: 10.1093/humrep/deh409
  10. Thompson J.G. Culture without the petri-dish. Theriogenology. 2007; 67(1):16–20. doi: 10.1016/j.theriogenology.2006.09.016
  11. Gardner D.K., Lane M. Ex vivo early embryo development and effects on gene expression and imprinting. Reprod Fertil Dev. 2005; 17(3): 361–70. doi: 10.1071/rd04103
  12. Isachenko V., Maettner R., Sterzik K., Strehler E., Kreinberg R., Hancke K., et al. In-vitro culture of human embryos with mechanical micro-vibration increases implantation rates. Reprod Biomed Online. 2011; 22(6): 536–44. doi: 10.1016/j.rbmo.2011.02.006
  13. Muglia U., Motta P.M. A new morpho-functional classification of the Fallopian tube based on its three-dimensional myoarchitecture. Histol Histopathol. 2001; 16(1): 227–37. doi: 10.14670/HH-16.227
  14. Lyons R.A., Djahanbakhch O., Mahmood T., Saridogan E., Sattar S., Sheaff M.T., et al. Fallopian tube ciliary beat frequency in relation to the stage of menstrual cycle and anatomical site. Hum Reprod. 2002; 17(3): 584–8. doi: 10.1093/humrep/17.3.584
  15. Lyons R.A., Saridogan E., Djahanbakhch O. The reproductive significance of human Fallopian tube cilia. Hum Reprod Update. 2006; 12(4): 363–72. doi: 10.1093/humupd/dml012
  16. Isachenko E., Maettner R., Isachenko V., Roth S., Kreienberg R., Sterzik K. Mechanical agitation during the in vitro culture of human pre-implantation embryos drastically increases the pregnancy rate. Clin Lab. 2010; 56(11–12):569–76. PMID: 21141442
  17. Xie Y., Wang F., Zhong W., Puscheck E., Shen H., Rappolee D.A. Shear stress induces preimplantation embryo death that is delayed by the zona pellucida and associated with stress-activated protein kinase-mediated apoptosis. Biol Reprod. 2006; 75(1): 45–55. doi: 10.1095/biolreprod.105.049791
  18. Matsuura K., Hayashi N., Kuroda Y., Takiue C., Hirata R., Takenami M., et al. Improved development of mouse and human embryos using a tilting embryo culture system. Reprod Biomed Online. 2010; 20(3): 358–64. doi: 10.1016/j.rbmo.2009.12.002
  19. Fauci L.J., Dillon R. Biofluidmechanics of reproduction. Annu Rev Fluid Mech. 2006; 38(1): 371–94. doi:10.1146/annurev.fluid.37.061903.175725
  20. Foo J.Y.A., Lim C.S. Biofluid mechanics of the human reproductive process: modelling of the complex interaction and pathway to the oocytes. Zygote. 2008; 16(4): 343–54. doi: 10.1017/S0967199408004899
  21. Romanov A.Y., Silachev D.N., Makarova N.P., Dolgushina N. V. Effect of Mechanical Microvibration on the Quality of Human Embryos during In Vitro Culturing and Outcomes of Assisted Reproduction Technologies. Bull Exp Biol Med. 2018; 165(4): 544–7. ID: mdl-30121919
  22. Романов А.Ю., Силачев Д.Н., Макарова Н.П., Долгушина Н.В. Влияние механической микровибрации на качество эмбрионов человека при культивировании in vitro и исходы программ вспомогательных репродуктивных технологий. Клеточные технологии в биологии и медицине. 2018; (2): 86–90.

  23. Приказ Минздрава России от 30.08.2012 N 107н (ред. от 11.06.2015) «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению».

  24. Hur Y.S., Ryu E.K., Yoon S.H., Lim K.S., Lee W.D., Lim J.H. Comparison of static culture, micro-vibration culture, and micro-vibration culture with co-culture in poor ovarian responders. Clin Exp Reprod Med. 2016; 43(3): 146. doi: 10.5653/cerm.2016.43.3.146
  25. Isachenko V., Sterzik K., Maettner R., Isachenko E., Todorov P., Rahimi G., et al. In Vitro Microvibration Increases Implantation Rate After Embryonic Cell Transplantation. Cell Transplant. 2017; 26(5): 789–94. doi: 10.3727/096368916X693428
  26. Dobson S.J.A., Lao M.T., Michael E., Varghese A.C., Jayaprakasan K. Effect of transfer of a poor quality embryo along with a top quality embryo on the outcome during fresh and frozen in vitro fertilization cycles. Fertil Steril. 2018; 110(4): 655–60. doi: 10.1016/j.fertnstert.2018.05.010
  27. Kwek L.K., Saffari S.E., Tan H.H., Chan J.K., Nada S. Comparison between Single and Double Cleavage-Stage Embryo Transfers, Single and Double Blastocyst Transfers in a South East Asian In Vitro Fertilisation Centre. Ann Acad Med Singapore. 2018; 47(11): 451–4. PMID: 30578424
  28. Hur Y.S., Park J.H., Ryu E.K., Park S.J., Lee J.H., Lee S.H., et al. Effect of micro-vibration culture system on embryo development. J Assist Reprod Genet. 2013; 30(6):835–41. doi: 10.1007/s10815-013-0007-0

Поступила 01.11.2019

Принята в печать 29.11.2019

Об авторах / Для корреспонденции

Романов Андрей Юрьевич, аспирант, специалист отдела наукометрии департамента организации научной деятельности ФГБУ НМИЦ АГП им. акад. В.И. Кулакова Минздрава России. Тел.: +7 (903) 158-94-00. E-mail: romanov1553@yandex.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Фролова Александра Максимовна, эмбриолог отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия ФГБУ НМИЦ АГП им. акад. В.И. Кулакова
Минздрава России. E-mail: i.a.m.frolova@mail.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Макарова Наталья Петровна, д.б.н., ведущий научный сотрудник отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия ФГБУ НМИЦ АГП
им. акад. В.И. Кулакова Минздрава России. E-mail: np_makarova@oparina4.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Долгушина Наталия Витальевна, д.м.н., профессор, заместитель директора – руководитель департамента организации научной деятельности ФГБУ НМИЦ АГП
им. акад. В.И. Кулакова МЗ РФ. E-mail: n_dolgushina@oparina4.ru.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Для цитирования: Романов А.Ю., Фролова А.М., Макарова Н.П., Долгушина Н.В. Первый российский опыт применения управляемой механической микровибрации при культивировании эмбрионов человека в программах вспомогательных репродуктивных технологий.
Акушерство и гинекология. 2019; 12: 120-5.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.12.120-125

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.