Особенности микробиоты недоношенных детей, рожденных от матерей с заболеваниями эндокринной системы

Припутневич Т.В., Николаева А.В., Шабанова Н.Е., Федоров Д.Е., Манолов А.И., Павленко А.В., Конанов Д.Н., Кривонос Д.В., Климина К.М., Веселовский В.А., Зубков В.В., Ильина Е.Н.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия; 2) ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины» Федерального медико-биологического агентства, Москва, Россия
Цель. Целью данного исследования является поиск различий в составе микробиоты младенцев, рожденных от здоровых матерей либо от матерей, имеющих заболевания эндокринной системы.
Материалы и методы. Нами было собрано 143 образца кала недоношенных детей, рожденных от матерей с наличием либо отсутствием заболеваний эндокринной системы. Проводился забор образцов первого кала после рождения (меконий), через 1 и 2 недели после рождения. Из образцов была выделена ДНК и проведено секвенирование региона V3–V4 гена 16S pРНК. Таксономические профили оценивались при помощи программы DADA2. Поиск дифференциально представленных бактериальных родов проводился при помощи пакета DESeq2.
Результаты. В результате сравнения двух выборок недоношенных детей, от здоровых матерей и матерей с заболеваниями эндокринной системы, были выявлены различия в составе микробиоты кишечника. Различия начинали проявляться через 1 неделю после рождения. У младенцев, рожденных от матерей с заболеваниями эндокринной системы, наблюдается повышенное содержание условно-патогенных микроорганизмов и пониженное – представителей Bifidobacterium и Lactobacillus.
Заключение. Выявленные различия в составе микробиоты кишечника недоношенных детей показывают, что состояние эндокринной системы матери может оказывать влияние на формирование микробиома кишечника младенца на ранних этапах его колонизации.

Ключевые слова

недоношенные дети
микробиота кишечника
эндокринные заболевания
секвенирование гена 16S рРНК

Изучение микробиоты является актуальной темой для современной медицины, поскольку микробные сообщества оказывают колоссальное влияние на функционирование желудочно-кишечного тракта и иммунной системы [1]. Актуален этот вопрос и в отношении микрофлоры младенцев. Новорожденные дети рождаются с практически стерильным кишечником. Микробиота кишечника у них формируется постепенно и уже к 2–3 годам стабилизируется и становится похожей на микробиом взрослого человека [2]. Считается, что критичным периодом для правильного формирования микробиоты кишечника являются первые месяцы жизни младенца. Рядом исследователей показано, что дисбиоз в этот период жизни может быть связан с поздними осложнениями и, в частности, с нарушением формирования нормальной иммунной системы.

Значительная часть микробов попадает к ребенку от матери посредством тактильного контакта, а также за счет бактерий, находящихся в молоке [2]. Ряд факторов может нарушить процесс нормального заселения кишечника новорожденных бактериями матери. Из наиболее распространенных можно выделить рождение с помощью кесарева сечения, прием антибиотиков в первые дни жизни ребенка, замену грудного молока искусственными смесями [2].

Микробиота матери меняется во время беременности. Высказываются предположения, что эти изменения адаптивны и направлены на компенсацию увеличения энергозатрат матери и плода [3]. В работе [4] было показано, что у детей, матери которых принимали антибиотики во II или III триместре, риск ожирения был на 84% выше по сравнению с детьми, матери которых не принимали антибиотики.

Влияние здоровья матери на здоровье новорожденного

Здоровье роженицы вносит существенный вклад в процесс формирования микробиоты кишечника новорожденного [5]. Ассоциация заболеваний матери и состояния здоровья ребенка зависит от многих причин и включает генетические, эпигенетические и экологические воздействия.

Активно изучается влияние метаболического синдрома матери на здоровье ребенка. Эксперименты на грызунах, обезьянах и исследования на людях выявили влияние ассоциации ожирения или питания с высоким содержанием жиров во время беременности на состояние иммунной системы и микробиоту новорожденных [6]. Наблюдаемые изменения увеличивали предрасположенность детей к ожирению.

Наличие у беременной женщины диабета 1 или 2 типа увеличивает риск неблагоприятных исходов: необходимости оперативного вмешательства, преждевременных родов, преэклампсии, макросомии, врожденных дефектов у новорожденного [7].

Нарушения работы щитовидной железы матери могут стать причиной когнитивных нарушений у ребенка, поскольку гормоны щитовидной железы играют важную роль в своевременном формировании нервной системы [8, 9]. Гипотиреоз (длительный недостаток гормонов щитовидной железы) плода, возникающий вследствие нехватки йода у матери, может привести к развитию ряда патологий у ребенка: кретинизма с сильной отсталостью, глухоты, нарушению походки. Более того, материнский гипертиреоз многократно увеличивает акушерский риск, способствует низкому весу ребенка, а также в худшем варианте может привести к гибели плода или преждевременным родам [10, 11]. Также некоторые генетические заболевания щитовидной железы могут вызвать патологию в рецепторах гормонов, что, в свою очередь, может привести к повышенной чувствительности к хорионическому гонадотропину человека и резистентности к тиреоидным гормонам.

Заболевания надпочечников у матери могут замедлить развитие плода, а также способствовать возникновению ряда негативных последствий. Было показано, что гиперальдостеронизм (повышенная секреция альдостерона) ассоциирован с повышением артериального давления у детей, что также может спровоцировать развитие гипертонии [12]. Также известно, что повышенный синтез андрогенов может способствовать развитию преэклампсии [13], увеличению риска преждевременных родов и рождению детей с критически низким весом [14].

Как уже упоминалось ранее, различные заболевания, возникшие в эндокринной системе матери, также могут привести к преждевременным родам и недоношенности плода. Существует множество факторов, повышающих этот риск: возраст старше 40 лет, плохое питание, низкий вес, травмы шейки матки, сильный стресс, курение, напряженная работа, короткий интервал между беременностями и т.д. Недоношенность является фактором риска детской заболеваемости и смертности и связана с высоким риском бактериальных воспалительных заболеваний, таких как сепсис и некротизирующий энтероколит (НЭК). Такие дети имеют не до конца сформированный кишечник с недоразвитой перистальтикой, барьерной функцией и иммунитетом, что делает его потенциальным источником инфекций и воспалений [15]. Недоношенные дети, по сравнению с рожденными в срок, зачастую имеют нестабильный и менее разнообразный состав микробиоты кишечника [16]; это может способствовать заселению микрофлоры, находящейся в медицинской организации, в том числе внутрибольничных условно-патогенных и патогенных штаммов. Ряд исследований на небольших группах детей показал, что как НЭК, так и поздний сепсис связаны с изменениями в микробиоте [17], и при этом состав микробиоты коррелирует с клинической картиной [18].

Недоношенные дети, рожденные путем кесарева сечения, не контактируют c микробиомом влагалища матери, что не позволяет им получить необходимые микроорганизмы для нормального развития собственной микрофлоры. Нередким явлением для них является рождение с очень низкой массой тела, при которой кормление производится специальными стерильными питательными смесями вместо грудного молока матери. Кроме того, недоношенных детей первое время содержат в специальных отделениях, где риск развития патологических процессов, ассоциированных с дисбиозом, намного выше [19].

Наиболее часто курс антибактериальной терапии недоношенным новорожденным назначается для лечения предполагаемой неонатальной инфекции, однако в части случаев это не является оправданным, а служит лишь профилактической мерой. Исследования показали, что использование антибиотиков оказывает значимые воздействия на метаболом новорожденных [20].

Отметим, что, помимо заболеваний матери, на формирование здоровой микрофлоры ребенка влияет и процесс послеродового восстановления. Так, исследование [21] показало, что соблюдение специальных послеродовых условий способствует развитию правильной микрофлоры младенца. В этом же исследовании показано, что попадание в микробиом патогенных микроорганизмов и чрезмерное использование пробиотиков у здоровых новорожденных может спровоцировать развитие условно-патогенных агентов. Однако рациональная модификация микробиоты пробиотиками или грудным молоком может снизить риск развития НЭК у недоношенных детей [22]. Аналогичный положительный эффект будет оказывать назначение курса пробиотиков матери [23].

Таким образом, совокупность всех перечисленных факторов не позволяет сформироваться здоровой микробиоте младенца, а напротив, способствует развитию патогенных микроорганизмов. Метагеномные анализы микробиома младенцев показали, что в образцах кала недоношенных детей превалируют представители условно-патогенной микрофлоры: Enterobacteriaceae, Enterococcus, Staphylococcus [24].

Вопрос о влиянии патологий матери на формирование здоровой микробиоты детей практически никак не описан в литературе, особенно в отношении недоношенных детей, что вызывает особый интерес вследствие специфики колонизации микробиома. По этой причине целью нашей работы стала оценка влияния патологий эндокринной системы матери на процесс формирования микрофлоры у недоношенных младенцев.

Материалы и методы

Дизайн исследования

В период 2019–2020 гг. обследовано 59 детей, родившихся в ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. В исследование были включены недоношенные дети со сроком гестации 25–36 недель, доношенные новорожденные 37–39 недель, рожденные от матерей с патологией эндокринной системы (заболевания щитовидной железы или сахарный диабет), и дети, рожденные от матерей без эндокринных нарушений (контрольная группа). В исследование не включали детей, рожденных от матерей с сопутствующим хроническим воспалительным процессом или онкологическими заболеваниями, а также получавших антибактериальную терапию во время беременности. Всем детям в соответствии с имеющимися клиническими рекомендациями проводилась одинаковая тактика ведения и выхаживания, вне зависимости от наличия или отсутствия эндокринной патологии у матери. Недоношенные дети с экстремально низкой, очень низкой и низкой массой тела, а также доношенные дети, имеющие дыхательные нарушения, которые требовали проведения респираторной поддержки, наблюдались в отделении реанимации и интенсивной терапии новорожденных. По показаниям детям проводились инфузионная, антибактериальная, симптоматическая, поддерживающая терапия, парентеральное и энтеральное питание. При выхаживании недоношенных детей использовались современные методы выхаживания, включающие соблюдение охранительного режима и раннее начало грудного вскармливания. Минимальное энтеральное питание сцеженным материнским молоком начинали с первого дня жизни. Охранительный режим включал соблюдение температурного режима, минимизацию болевых процедур и снижение воздействия шума, прямых лучей света, придание ребенку удобного положения в кювезе/кроватке, а также обязательный материнский уход и соблюдение санитарно-эпидемиологического режима. После стабилизации состояния новорожденные переводились на 2-й этап выхаживания, в отделение патологии новорожденных и недоношенных детей. Часть детей получали пробиотическую терапию.

Все матери подписывали информированное согласие на забор клинического материала.

У недоношенных детей собирались образцы кала в 4 временных точках: первый стул после рождения (меконий); стул через 1 неделю после рождения; стул через 2 недели после рождения; стул через месяц после рождения.

Сбор образцов

Образцы кала недоношенных младенцев собирались в пластиковые контейнеры и хранились в низкотемпературном морозильнике при -80°C. Транспортировка образцов в лабораторию осуществлялась на сухом льду.

Выделение ДНК

Выделение ДНК из образцов проводили с помощью набора QIAamp Fast DNA Stool Mini (Qiagen) согласно инструкции производителя. ДНК растворяли в 50 мкл буфера и хранили при температуре –18°С.

Приготовление библиотек и секвенирование

Для проведения метагеномного анализа бактериального сообщества использовали регион V3–V4 гена 16S pРНК. Приготовление библиотеки для секвенирования проводилось в соответствии с протоколом (16S Metagenomic Sequencing Library preparation) для MiSeq, Illumina. Секвенирование полученной библиотеки проводили на приборе MiSeq (Illumina), используя набор парных прочтений 2×250 b с добавлением 8% Phix в качестве контроля.

Обработка данных

Таксономический анализ проводился при помощи программы DADA2 [25]. Для дальнейшего анализа применялся язык R: для подсчета индекса альфа-разнообразия Шеннона применялась функция diversity из пакета vegan; для статистического анализа применялся тест Вальда, реализованный в пакете DeSEQ2 [26]; за значимые принимались различия, для которых p-value после поправки на множественное сравнение было меньше 0,05, значимость оценивалась для сравнения представленности бактерий у детей, рожденных от матерей с наличием либо отсутствием эндокринных заболеваний; подсчет расстояний для многомерного шкалирования проводился на основе метрики Брея–Кертиса при помощи пакета phyloseq [27].

Результаты

Всего в исследование вошли 143 образца кала, для которых был проведен метагеномный анализ. В анализ было включено 85 образцов с количеством прочтений выше 2,000.

Анализ альфа-разнообразия

На рисунке 1 показаны кривые прореживания, отражающие зависимость индекса альфа-разнообразия Шеннона от количества прочтений при выборе части от полного набора прочтений для каждого образца. Видно, что при количестве прочтений выше 2,000 практически выходят на плато. Образцы с количеством прочтений менее 1,000 были исключены из анализа.

Последующая обработка данных была направлена на выявление отличий в составе микробиоты кишечника младенцев, рожденных от матерей с эндокринными заболеваниями, от контрольной группы.

100-1.jpg (291 KB)

Анализ альфа-разнообразия сообществ

Разнообразие сообществ (индекс Шеннона) образцов кала было максимальным в первой временной точке (меконий), минимальным – во второй временной точке (неделя после рождения) (рис. 2А). Мы не обнаружили значимых различий в альфа-разнообразии у детей при наличии либо отсутствии эндокринных заболеваний у их матерей (рис. 2Б).

Анализ таксономического состава образцов

На рисунке 3 показано распределение таксономических профилей образцов по двум первым главным компонентам. Видно, что образцы, собранные в первой временной точке (меконий), значительно отличаются от образцов, собранных в последующих временных точках.

101-1.jpg (225 KB)

На рисунке 4 показана тепловая карта таксономических профилей собранных образцов, на которой также приведены данные о наличии заболеваний эндокринной системы у матери, недели рождения, оперативное родовспоможение.

Анализ влияния заболеваний матери на таксономический профиль образцов

Для поиска бактериальных родов, ассоциированных с наличием заболеваний эндокринной системы у матери, мы использовали пакет Deseq2 для языка R. На вход мы подавали набор таксономических профилей, а также следующую метаинформацию: 1) номер запуска секвенирования (1–3); 2) неделя рождения (25–39); 3) проводилось ли кесарево сечение (да/нет); 4) наличие заболеваний эндокринной системы у матери (да/нет).

102-1.jpg (274 KB)

Первая временная точка

Для первой временной точки (меконий) не было обнаружено статистически значимых ассоциаций с наличием эндокринного заболевания у матери.

Вторая временная точка

Для второй временной точки (неделя после рождения, табл. 1) наблюдалась дифференциальная представленность следующих родов: Lactobacillus, Streptococcus, Bifidobacterium, Clostridium_sensu_stricto_1, Klebsiella, Veillonella, Sphingomonas, Enterobacter, Bradyrhizobium (перечислены в порядке уменьшения встречаемости – доли образцов, в которых данный род был обнаружен).

Три рода, которые были статистически значимы и обнаружены более чем в половине образцов, это Lactobacillus, Streptococcus, Bifidobacterium. Пред­ставленность родов Lactobacillus и Bifidobacterium была выше у детей, рожденных от здоровых матерей, а представленность рода Streptococcus – у детей, рожденных от матерей, имеющих заболевание эндокринной системы.

Третья временная точка

Количество образцов, которые удалось собрать в третьей временной точке, было ниже, чем количество образцов во второй временной точке, что сделало невозможным учет всех метаданных при анализе. Ниже мы приводим список родов, который значимо ассоциирован с заболеванием матери при учете только двух факторов: номер запуска секвенирования (1–3) и наличие заболеваний эндокринной системы у матери (да/нет). Мы наблюдали большую представленность родов Enterobacter, Klebsiella, Veillonellа (табл. 2).

Обсуждение

В основе данного исследования лежит предположение, что заболевания эндокринной системы матери могут оказывать влияние на состав микробиоты кишечника новорожденных как на момент рождения, так и в последующий период. В рамках данной работы мы сконцентрировали внимание на роженицах, имеющих патологию со стороны щитовидной железы (гипотиреоз и тиреотоксикоз) или гестационный сахарный диабет, как наиболее часто встречающиеся эндокринные заболевания в этой возрастной группе (4,6% – гипотиреоз, 7% – гестационный сахарный диабет).

В первой временной точке (меконий) различия в составе микробиоты кишечника между группами детей не наблюдаются. Это может быть связано с компенсированным состоянием матерей, отсутствием влияния собственной иммунной и эндокринной систем плода либо с малым содержанием бактериальной ДНК в данном типе образцов и, как следствие, – с высоким уровнем контаминации.

Во второй временной точке (неделя после рождения) происходит активация собственной иммунной и эндокринной системы младенца. Также в этой временной точке не слишком значительным оказывается фактор длительного пребывания в стационаре. Мы наблюдали выраженную индивидуальную вариабельность в составе микробиоты кишечника, а также различия в представленности отдельных бактерий у младенцев, рожденных от матерей с патологией либо от здоровых матерей. У младенцев, рожденных от матерей с патологией эндокринной системы, наблюдается заселение условно-патогенной флоры (стрептококки), что характерно для случаев снижения иммунной компетенции [28]. При этом у младенцев, рожденных от здоровых матерей, в большей степени происходит заселение бифидо- и лактобактерий, что характерно для нормального развития микробиоты кишечника новорожденных [29].

В третьей временной точке (2 недели после рождения) также наблюдаются различия в составе микробиоты кишечника между группами. При этом в группе младенцев, рожденных от матерей с патологией эндокринной системы, наблюдалась повышенная представленность возбудителей инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, – родов Klebsiella и Enterobacter. Отметим, что эти же тенденции наблюдались и во второй временной точке.

Повышение относительной представленности рода Enterobacter может быть также связано с длительным курсом антибиотикотерапии, назначаемой недоношенным детям [30]. Данный род бактерий ассоциирован с развитием НЭК у недоношенных детей. Повышенная представленность рода Enterobacter у детей, рожденных матерями с патологией эндокринной системы, может быть связана с тем, что организм матери не способен в должной мере вырабатывать защитные антитела, в частности, секретируемые иммуноглобулины класса А (sIgA). У рожденных в срок детей выработка секреторного sIgA начинается через 7–30 дней после рождения. У недоношенных детей данный процесс запускается позже. В исследовании [31] собственные IgA в кале недоношенных детей, получавших в качестве питания только искусственные смеси, были обнаружены лишь спустя 40 дней после рождения.

Для более полной характеристики изменений микробиоты у новорожденных в зависимости от наличия эндокринных заболеваний требуется увеличение выборки. Это позволило бы, во-первых, найти большее количество ассоциаций и, во-вторых, разделить эффекты в зависимости от конкретной патологии матери. Также мы считаем целесообразным проведение дальнейших исследований с привлечением методов оценки иммунного и эндокринного статуса новорожденных.

Заключение

Выявленные различия в составе микробиоты кишечника недоношенных детей показывают, что состояние эндокринной системы матери может оказывать влияние на формирование микробиома кишечника младенца на ранних этапах его колонизации. Это, в свою очередь, может оказать влияние на формирование микробиома в последующие годы жизни и, как следствие, – склонность к некоторым заболеваниям.

Список литературы

  1. Tanaka M., Nakayama J. Development of the gut microbiota in infancy and its impact on health in later life. Allergol. Int. 2017; 66(4): 515-22. https://dx.doi.org/10.1016/j.alit.2017.07.010.
  2. Jandhyala S.M., Talukdar R., Subramanyam C., Vuyyuru H., Sasikala M., Reddy D.N. Role of the normal gut microbiota. World J. Gastroenterol. 2015; 21(29): 8787-803. https://dx.doi.org/10.3748/wjg.v21.i29.8787.
  3. Koren O., Goodrich J.K., Cullender T.C., Spor A., Laitinen K., Bäckhed H.K. et al. Host remodeling of the gut microbiome and metabolic changes during pregnancy. Cell. 2012; 150(3): 470-80. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2012.07.008.
  4. Mueller N.T., Whyatt R., Hoepner L., Oberfield S., Dominguez-Bello M.G., Widen E.M. et al. Prenatal exposure to antibiotics, cesarean section and risk of childhood obesity. Int. J. Obes. (Lond). 2015; 39(4): 665-70. https://dx.doi.org/10.1038/ijo.2014.180.
  5. Mueller N.T., Bakacs E., Combellick J., Grigoryan Z., Dominguez-Bello M.G. The infant microbiome development: mom matters. Trends Mol. Med. 2015; 21(2): 109-17. https://dx.doi.org/10.1016/j.molmed.2014.12.002.
  6. Mulligan C.M., Friedman J.E. Maternal modifiers of the infant gut microbiota: metabolic consequences. J. Endocrinol. 2017; 235(1): R1-12. https://dx.doi.org/10.1530/JOE-17-0303.
  7. Ringholm L., Damm P., Mathiesen E.R. Improving pregnancy outcomes in women with diabetes mellitus: modern management. Nat. Rev. Endocrinol. 2019; 15(7): 406-16. https://dx.doi.org/10.1038/s41574-019-0197-3.
  8. Huget-Penner S., Feig D.S. Maternal thyroid disease and its effects on the fetus and perinatal outcomes. Prenat. Diagn. 2020; 40(9): 1077-84. https://dx.doi.org/10.1002/pd.5684.
  9. Zhou M., Wang M., Li J., Luo X., Lei M. Effects of thyroid diseases on pregnancy outcomes. Exp. Ther. Med. 2019; 18(3): 1807-15. https://dx.doi.org/10.3892/etm.2019.7739.
  10. Delitala A.P., Capobianco G., Cherchi P.L., Dessole S., Delitala G. Thyroid function and thyroid disorders during pregnancy: a review and care pathway. Arch. Gynecol. Obstet. 2019; 299(2): 327-38. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-018-5018-8.
  11. Korevaar T.I.M., Derakhshan A., Taylor P.N., Meima M., Chen L., Bliddal S. et al. Consortium on Thyroid and Pregnancy - Study Group on Preterm Birth. Association of thyroid function test abnormalities and thyroid autoimmunity with preterm birth: a systematic review and meta-analysis. JAMA. 2019; 322(7): 632-41. https://dx.doi.org/10.1001/jama.2019.10931.
  12. Dodic M., Peers A., Coghlan J.P., Wintour M. Can excess glucocorticoid, in utero, predispose to cardiovascular and metabolic disease in middle age? Trends Endocrinol. Metab. 1999; 10(3): 86-91. https://dx.doi.org/10.1016/s1043-2760(98)00125-8.
  13. Berkane N., Liere P., Oudinet J.P., Hertig A., Lefèvre G., Pluchino N. et al. From pregnancy to preeclampsia: a key role for estrogens. Endocr. Rev. 2017; 38(2): 123-44. https://dx.doi.org/ 10.1210/er.2016-1065.
  14. Amaral L.M., Wallace K., Owens M., LaMarca B. Pathophysiology and current clinical management of preeclampsia. Curr. Hypertens. Rep. 2017; 19(8): 61. https://dx.doi.org/10.1007/s11906-017-0757-7.
  15. Korpela K., Blakstad E.W., Moltu S.J., Strømmen K., Nakstad B., Rønnestad A.E. et al. Intestinal microbiota development and gestational age in preterm neonates. Sci. Rep. 2018; 8(1): 2453. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-018-20827-x.
  16. Younge N.E., Newgard C.B., Cotten C.M., Goldberg R.N., Muehlbauer M.J., Bain J.R. et al. Disrupted maturation of the microbiota and metabolome among extremely preterm infants with postnatal growth failure. Sci. Rep. 2019; 9(1): 8167. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-019-44547-y.
  17. Stewart C.J., Marrs E.C.L., Magorrian S., Nelson A., Lanyon C., Perry J.D. et al. The preterm gut microbiota: changes associated with necrotizing enterocolitis and infection. Acta Paediatr. 2012; 101(11): 1121-7. https://dx.doi.org/10.1111/j.1651-2227.2012.02801.x.
  18. Pärtty A., Luoto R., Kalliomäki M., Salminen S., Isolauri E. Effects of early prebiotic and probiotic supplementation on development of gut microbiota and fussing and crying in preterm infants: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. J. Pediatr. 2013; 163(5): 1272-7. e1-2. https://dx.doi.org/10.1016/j.jpeds.2013.05.035.
  19. Kumbhare S.V., Patangia D.V.V., Patil R.H., Shouche Y.S., Patil N.P. Factors influencing the gut microbiome in children: from infancy to childhood. J. Biosci. 2019; 44(2): 49.
  20. Patton L., Li N., Garrett T.J., Ruoss J.L., Russell J.T., de la Cruz D. et al. Antibiotics effects on the fecal metabolome in preterm infants. Metabolites. 2020; 10(8): 331. https://dx.doi.org/10.3390/metabo10080331.
  21. Wang Y., Liu Y., Bai J., Chen X. The effect of maternal postpartum practices on infant gut microbiota: a Chinese cohort study. Microorganisms. 2019; 7(11): 511. https://dx.doi.org/10.3390/microorganisms7110511.
  22. Deshpande G., Rao S., Patole S., Bulsara M. Updated meta-analysis of probiotics for preventing necrotizing enterocolitis in preterm neonates. Pediatrics. 2010; 125(5): 921-30. https://dx.doi.org/ 10.1542/peds.2009-1301.
  23. Grev J., Berg M., Soll R. Maternal probiotic supplementation for prevention of morbidity and mortality in preterm infants. Cochrane Database Syst. Rev. 2018; (12): CD012519. https://dx.doi.org/10.1002/14651858.CD012519.pub2.
  24. Wandro S., Osborne S., Enriquez C., Bixby C., Arrieta A., Whiteson K. The microbiome and metabolome of preterm infant stool are personalized and not driven by health outcomes, including necrotizing enterocolitis and late-onset sepsis. mSphere. 2018; 3(3): e00104-18. https://dx.doi.org/10.1128/mSphere.00104-18.
  25. Callahan B.J., McMurdie P.J., Rosen M.J., Han A.W., Johnson A.J.A., Holmes S.P. DADA2: high-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat. Methods. 2016; 13(7): 581-3. https://dx.doi.org/10.1038/nmeth.3869.
  26. Love M.I., Huber W., Anders S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biol. 2014; 15(12): 550. https://dx.doi.org/10.1186/s13059-014-0550-8.
  27. McMurdie P.J., Holme S. phyloseq: an R package for reproducible interactive analysis and graphics of microbiome census data. PloS One. 2013; 8(4): e61217. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0061217.
  28. Korir M.L., Manning S.D., Davies H.D. Intrinsic maturational neonatal immune deficiencies and susceptibility to group B Streptococcus infection. Clin. Microbiol. Rev. 2017; 30(4): 973-89. https://dx.doi.org/10.1128/CMR.00019-17.
  29. Wall R., Ross R.P., Ryan C.A., Hussey S., Murphy B., Fitzgerald G.F. et al. Role of gut microbiota in early infant development. Clin. Med. Pediatr. 2009; 3: 45-54. https://dx.doi.org/10.4137/cmped.s2008.
  30. Greenwood C., Morrow A.L., Lagomarcino A.J., Altaye M., Taft D.H., Yu Z. et al. Early empiric antibiotic use in preterm infants is associated with lower bacterial diversity and higher relative abundance of Enterobacter. J. Pediatr. 2014; 165(1): 23-9. https://dx.doi.org/10.1016/j.jpeds.2014.01.010.
  31. Dunne-Castagna V.P., Taft D.H. Mother’s touch: milk IgA and protection from necrotizing enterocolitis. Cell Host Microbe. 2019; 26(2):147-8. https://dx.doi.org/10.1016/j.chom.2019.07.013.

Поступила 09.12.2020

Принята в печать 19.01.2021

Об авторах / Для корреспонденции

Припутневич Татьяна Валерьевна, д.м.н., директор института микробиологии, антимикробной терапии и эпидемиологии, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(910)414-56-16. E-mail: priput1@gmail.com. ORCID: 0000-0002-4126-9730. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Николаева Анастасия Владимировна, к.м.н., главный врач, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7(916)653-43-09. E-mail: a_nikolaeva@oparina4.ru. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Шабанова Наталья Евгеньевна, к.м.н., доцент, научный сотрудник отделения клинической фармакологии антимикробных и иммунобиологических препаратов
института микробиологии, антимикробной терапии и эпидемиологии, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7(985)097-58-27. E-mail: n_shabanova@oparina4.ru. ORCID: 0000-0001-6838-3616. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Федоров Дмитрий Евгеньевич, лаборант-исследователь, лаборатория геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России.
Тел.: +7(985)115-48-96. E-mail: fedorov.de@gmail.com. ORCID: 0000-0001-8468-7011. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Манолов Александр Иванович, м.н.с. лаборатории геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России. Тел.: +7(985)417-73-08. E-mail: paraslonic@gmail.com. ORCID: 0000-0003-3912-429X. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Павленко Александр Владимирович, научный сотрудник лаборатории геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России.
Тел.: +7(926)111-72-82. E-mail: pavav@mail.ru. ORCID: 0000-0002-9549-0289. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Конанов Дмитрий Николаевич, лаборант-исследователь лаборатории геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России.
Тел.: +7(915)499-74-62. E-mail: konanovdmitriy@gmail.com. ORCID: 0000-0002-1217-9234. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Кривонос Данил Вадимович, студент лаборатории геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России.
Тел.: +7(905)771-66-82. E-mail: Danil01060106@gmail.com. ORCID: 0000-0002-3851-5873. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Климина Ксения Михайловна, с.н.с. лаборатории геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России.
Тел.: +7916)133-60-90. E-mail: ppp843@yandex.ru. ORCID: 0000-0002-5563-644X. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Веселовский Владимир Александрович, м.н.с. лаборатории геномных исследований и вычислительной биологии, ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России.
Тел.: +7(916)415-78-79. E-mail: djdf26@gmail.com. ORCID: 0000-0002-4336-9452. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.
Зубков Виктор Васильевич, д.м.н., профессор, директор Института неонатологии и педиатрии, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России; заведующий кафедрой неонатологии, ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России; профессор кафедры неонатологии Института здоровья детей, ФГАОУ «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет).
Тел.: +7(963)750-48-77. E-mail: victor.zubkov@mail.ru. ORCID: 0000-0002-9697-9596. 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Ильина Елена Николаевна, чл.-корр. РАН, д.б.н., заместитель генерального директора по научной работе, руководитель отдела молекулярной биологии и генетики,
ФГБУ ФНКЦ ФХМ ФМБА России. Тел.: +7(499)245-04-71. E-mail: ilinaen@gmail.com. ORCID: 0000-0003-0130-5079. 119435, Россия, Москва, ул. Малая Пироговская, д. 1а.

Для цитирования: Припутневич Т.В., Николаева А.В., Шабанова Н.Е., Федоров Д.Е., Манолов А.И., Павленко А.В., Конанов Д.Н., Кривонос Д.В., Климина К.М., Веселовский В.А., Зубков В.В., Ильина Е.Н. Особенности микробиоты недоношенных детей, рожденных от матерей с заболеваниями эндокринной системы.
Акушерство и гинекология. 2021; 2: 96-104
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.2.96-104

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.