Неиммунная водянка плода: основные причины

Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л., Тетруашвили Н.К., Костюков К.В., Донников А.Е., Белоусов Д.М.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва
Цель. Определить структуру причин неиммунной водянки плода, сравнить с данными зарубежных авторов.
Материалы и методы. В исследование включены 80 беременных с неиммунной водянкой плода, обратившихся в НМИЦ АГиП им. В.И.Кулакова с января 2015 по март 2019 гг. В зависимости от клинических признаков, данных клинико-лабораторных и инструментальных исследований все случаи распределены в одну из 14 категорий заболеваний, приводящих к развитию неиммунной водянки плода. Сопоставлены результаты данного исследования с данными зарубежных крупномасштабных исследований.
Результаты. Проведен ретроспективный анализ всех случаев неиммунной водянки плода с января 2015 по март 2019 г. Этиология была установлена в 82,5% (66/80) случаях. Наиболее часто к развитию неиммунной водянки плода приводили: хромосомные аномалии – 20,0% (16/80), сердечно-сосудистая патология – 18,75% (15/80), инфекции – 8,75% (7/80). Синдромальная патология, торакальные аномалии и опухоли экстраторакальной локализации встречались с одинаковой частотой – 7,5% (6/80).
Заключение. При неиммунной водянке плода необходим комплексный диагностический подход, требующий проведения экспертного УЗИ плода (с оценкой максимальной скорости кровотока в средней мозговой артерии), Эхо-КГ плода, а также инвазивной диагностики посредством амниоцентеза с целью определения кариотипа плода, инфекционно-воспалительных факторов. В раннем неонатальном периоде необходимо обследование на заболевания обмена веществ у новорожденного методом тандемной масс-спектрометрии.

Ключевые слова

беременность
неиммунная водянка плода
асцит
гидроторакс
пороки развития плода
анеуплоидии

Неиммунная водянка плода (НИВП) является сложной полиэтиологической патологией, в основе которой лежат более 150 различных причин развития данного состояния [1]. Клинически НИВП проявляется избыточным скоплением жидкости в двух и более серозных полостях (брюшная полость, плевральная полость, перикардиальная полость) и тканях плода, при отсутствии циркулирующих антител к антигенам мембраны эритроцитов [2]. Многоводие (максимальный вертикальный карман более 80 мм) и плацентомегалия (толщина плаценты 4 см и более во II триместре или 6 см и более в III триместре) часто сопутствует НИВП [3]. Основные патогенетические механизмы данного состояния описаны S.S. Im и соавт. еще в 1984 г. [4].

Пренатальная ультразвуковая диагностика (УЗИ) водянки плода не вызывает трудностей, но при этом выявление этиологии НИВП является сложной диагностической задачей.

Некоторые исследователи показали влияние этиологии на срок манифестации НИВП и ее исходы. Так, согласно данным крупномасштабных зарубежных исследователей, наиболее часто НИВП вызывают анеуплоидии, которые имеют тенденцию к раннему клиническому проявлению – в среднем на 18-й неделе (диапазон 11–31 неделя) и ассоциированы с неблагоприятными исходами [5]. Отечественными исследователями хорошо изучена НИВП вследствие фетальных нарушений ритма. Так, наиболее часто к НИВП приводит наджелудочковая тахикардия. При этом выявлено, что чем раньше манифестирует наджелудочковая тахикардия, тем более тяжелой формой водянки она сопровождается. Так, на 22–29 неделе чаще (в 8 из 11 случаев) встречались тяжелые формы водянки плода, свидетельствующие о развитии клинически значимой сердечной недостаточности (гидроторакс, асцит, анасарка), тогда как в 30–39 недель подобные формы отека плода были зафиксированы только в 2 из 6 случаев [6, 7].

При выборе тактики ведения беременности с НИВП именно этиология определяет возможность и перспективность проведения внутриутробного лечения. Так, согласно данным Канадского общества акушеров-гинекологов (SOGC), в случае нормального кариотипа плода, срока беременности более 18 недель возможно и перспективно проведение фетальной терапии и/или хирургических вмешательств [8]. Вид внутриутробных вмешательств определяется этиологией и клиническими проявлениями неиммунной водянки плода:

  • этиопатогенетическая терапия: антиаритмическая терапия, внутриутробное переливание отмытых донорских эритроцитов, альбумина, противовирусная терапия, иммуноглобулинотерапия, антибиотикотерапия, лазерная интерстициальная коагуляция сосудов;
  • симптоматическая терапия: амниоредукция, торакоцентез, лапароцентез, торако-амниотическое шунтирование, введение сердечных гликозидов, кортикостероидов.

Материалы и методы

В исследование включены 80 беременных женщин с НИВП, обратившихся в НМИЦ АГиП им. В.И. Кулакова с января 2015 по март 2019 г. Критерием включения в исследование являлось наличие жидкости в двух и более серозных полостях плода или в одной полости в сочетании с отеком мягких тканей.

Всем пациенткам было проведено экспертное УЗИ плода на аппарате VOLUSON E8 GE. При проведении УЗИ плода оценивались следующие параметры: наличие и вид структурной патологии плода, количество серозных полостей с выпотом, объем выпота, наличие и степень гипоплазии легких, компрессии сердца, наличие, толщина и распространенность отека мягких тканей плода, а также количество околоплодных вод и толщина плаценты. Допплерометрически измерялась максимальная скорость кровотока (МСК) в средней мозговой артерии (СМА) плода, усиление которого больше 1,505 МоМ являлось признаком внутриутробной анемии. После 20–22 недели проводилась эхокардиография (ЭхоКГ) плода на аппарате VOLUSON S8 с целью определения структурной или функциональной патологии сердца, клапанов и магистральных сосудов, наличия выпота в полости перикарда и его объем, а также ряд параметров, оценивающих функциональное состояние сердца плода.

В части случаев было проведено кариотипирование, обследование на внутриутробные инфекции, клинический и биохимический анализ выпотной жидкости. Постнатально, по показаниям, проводили обследование на наследственные болезни обмена веществ у новорожденного.

Молекулярно-генетическое кариотипирование проводили на ДНК-микроматрицах высокого разрешения (Cytoscan 750К, Affymetrix). ДНК выделяли из свежей цельной крови или амниотической жидкости с помощью набора PureLink Genomic DNA Kit (Invitrogen, США). Количество и качество полученной ДНК оценивали с помощью спектрофотометра Implen (Германия). Пробоподготовку образцов ДНК (рестрикция, лигирование с адапторами, амплификация, очистка продуктов полимеразной цепной реакции, фрагментирование, мечение флуорофором) производили в соответствии с протоколом производителя микрочипов компании Аффиметрикс (Affymerix Inc., США). После прохождения образцами всех контролей качества, требуемых производителем, полученные образцы наносили на микрочипы Cytoscan 750К, после чего проводили ДНК-гибридизацию в течение 18 ч при температуре 50°. После гибридизации проводили промывку, окрашивание микрочипов на приборе Fluidic Station 450 (Affymerix Inc., США) и сканирование их с помощью Scanner 3000 7G (Affymerix Inc., США). Результаты проанализировали в программе ChromosomeAnalysisSuite (ChAS) и оценивали с учетом рекомендаций Американского колледжа медицинской генетики [9]. Согласно рекомендациям, обнаруженные вариации числа копий ДНК (copy number variation – CNV) интерпретировали как патогенные, с неопределенной клинической значимостью или доброкачественные.

Взятие биологического материала (амниотическая жидкость, выпот, пуповинная кровь) для обследования на внутриутробные инфекции (парвовирус В19, цитомегаловирус, вирус Эпштейна-Барр, вирусы герпеса 1, 2, 6, 8 типов, токсоплазма и Listeria monocytogenes) осуществляли в ходе инвазивной процедуры. Осаждение клеток из 1 мл амниотической жидкости или выпота из серозных полостей проводили путем центрифугирования при 13 000G в течение 10 минут. Полученные клетки ресуспендировали в 100 мкл физиологического раствора. Пуповинную кровь для исследования брали в количестве 100 мкл. Выделение ДНК из образцов клинического материала проводили при помощи набора ПРОБА-ЦИТО (ООО НПО «ДНК-Технология», Россия) согласно инструкции. Сущность метода заключалась в щелочном высокотемпературном лизисе клеток, что обеспечивало максимальную чувствительность диагностики, так как эффективность выделения ДНК из клинического материала приближается к максимально возможной, а потери минимизированы. Амплификацию специфических фрагментов ДНК инфекционных агентов проводили с помощью коммерческих комплектов реагентов ООО НПО «ДНК-Технология», Россия в режиме «реального времени» на приборе «ДТ-964» (ООО НПО «ДНК-Технология», Россия). Измерение уровня флуоресценции проводили на каждом цикле амплификации по каналам FAM, HEX, ROX и Cy5. Обработку результатов осуществляли автоматически, с помощью программного обеспечения к прибору.

При проведении хирургических вмешательств (лапароцентез, торакоцентез) производили забор выпотной жидкости с последующим ее клиническим и биохимическим анализом. Оценивали уровни общего белка, альбумина, лимфоцитов и триглицеридов для определения характера и источника выпотной жидкости. Выпот считается хилезным при выявлении уровня лимфоцитов более 80% и триглицеридов более 1,1 ммоль/л.

Постнатальное обследование на наследственные болезни обмена веществ проводили методом тандемной масс-спектрометрии. Показаниями для его проведения являлись случаи идиопатической НИВП или клинико-лабораторные проявления, характерные для заболеваний этой группы.

В зависимости от полученных результатов все случаи были распределены в одну из 14 категорий заболевания, предложенных C.Bellini и соавт. [10]. Полученные нами данные были сопоставлены с данными зарубежных крупномасштабных исследований [10–12]. Основные выявленные нами нозологии, распределенные по категориям, представлены в табл. 1.

Результаты и обсуждение

Проведен ретроспективный анализ всех случаев НИВП с января 2015 по март 2019 г.

Этиология была выявлена в 82,5% (66/80) случаях. Анализ структуры причин показал, что наиболее часто к развитию НИВП приводили: хромосомные аномалии – 20,0% (16/80), сердечно-сосудистая патология – 18,75% (15/80), инфекции – 8,75% (7/80). Синдромальная патология, торакальные аномалии и опухоли экстраторакальной локализации встречались с одинаковой частотой – 7,5% (6/80). В нашем исследовании не проводили пренатальный поиск заболеваний обмена веществ у плода, в связи с этим в данной категории нет ни одного случая. При обследовании новорожденных в раннем неонатальном периоде наследственных болезней обмена также не выявлено. Как идиопатические были расценены 17,5% (14/80) случаев НИВП.

Все случаи, отнесенные к категории хромосомных аномалий, были подтверждены определением кариотипа плода или новорожденного. Изначально показаниями для кариотипирования были только ультразвуковые маркеры хромосомных аномалий у плода, в последующем, с 2018 г., данное исследование проводили во всех случаях НИВП.

Известно, что анеуплоидии могут приводить к формированию структурной патологии плода, которые являются причиной развития НИВП. В таком случае дискутабельным является вопрос распределения по категориям. Например, трисомия 21 хромосомы может приводить к формированию структурной патологии сердца, с которой и связан патогенез развития НИВП. В нашем исследовании все случаи с подтвержденной анеуплоидией, вне зависимости от наличия порока развития, отнесены к категории хромосомных аномалий, так как именно она является первопричиной.

Из категории сердечно-сосудистой патологии наиболее часто к развитию НИВП приводили тахиаритмии – 33,3% (5/15), в остальных случаях – 66,7% (10/15) в основе лежала структурная патология сердца, выявленная по данным ЭхоКГ.

К категории синдромальной патологии были отнесены случаи множественных пороков раз­вития плода, а также случаи с характерной фе­­нотипической картиной по заключению врача генетика.

Случаи НИВП инфекционного генеза были подтверждены лабораторными методами – обнаружением возбудителя в биологическом материале плода (околоплодные воды, пуповинная кровь, выпотная жидкость), крови новорожденного или абортивном материале. При этом 57% (4/7) случаев НИВП инфекционного генеза осложнились развитием внутриутробной анемии (МСК в СМА выше 1,5 МоМ). Внутриутробные анемии (из категории гематологических заболеваний), не ассоциированные с инфекционными агентами, выявлены только у 2,5% (2/80).

Все остальные случаи НИВП были распределены по категориям в зависимости от выявленного порока развития, среди которых наиболее часто встречались крестцово-копчиковая тератома – 66,7% (4/6), лимфангиомы – 33,3% (2/6), диафрагмальная грыжа – 33,3% (2/6), кистозно-аденоматозный порок развития легкого – 50% (3/6).

На следующем этапе данные нашего исследования были сопоставлены с данными крупномасштабных зарубежных исследований (табл. 2), При этом было установлено, что структура причин НИВП, выявленная в нашем исследовании, сопоставима с данными зарубежных авторов и имеет аналогичную тенденцию – наиболее часто в основе НИВП лежат анеуплоидии и патология сердечно-сосудистой системы. В исследовании Bellini C. и соавт. [10] ведущей причиной является сердечно-сосудистая патология – 20,1% (269/1338), тогда как у Laterre M. и соавт. [12] –анеуплоидии – 32,4% (33/102). Это связано с тем, что Bellini C. и соавт. распределяли случаи по выявленному пороку, вне зависимости от кариотипа, тогда как Laterre M. и соавт. ориентировались на кариотип (как на первопричину).

Слабой стороной нашего исследования являлось отсутствие проведения пренатальной инвазивной диагностики всем беременным с НИВП с целью определения кариотипа и обнаружения инфекционно-воспалительных факторов и заболеваний обмена веществ у плода, что вошло в алгоритм обследования в последний год исследования. Проведение данных исследований показало бы более точную структуру причин и, возможно, снизило бы количество случаев из идиопатической категории.

Данное исследование показывает, что проблема НИВП остается открытой и нерешенной и требует более тщательного и разностороннего подхода. Отсутствие алгоритмов диагностики и тактики ведения беременности с НИВП в нашей стране существенным образом влияет на перинатальные исходы при данной патологии.

Заключение

Проведенное исследование подтверждает, что НИВП является полиэтиологической патологией. Полученная нами структура причин согласуется с мировыми данными – наиболее часто к развитию неиммунной водянки плода приводят хромосомные аномалии и патология сердечно-сосудистой системы.

Детальное исследование причин НИВП на пренатальном этапе позволит выделить категорию пациентов, перспективных для проведения антенатальной терапии и фетальных хирургических вмешательств.

Пристальное внимание к проблеме этиологии НИВП связано с тем, что именно она является определяющей при выборе тактики ведения беременности, возможности и перспективности внутриутробного лечения.

Список литературы

  1. Santo S., Mansour S., Thilaganathan B. Prenatal diagnosis of non-immune hydrops fetalis: what do we tell the parents? Prenat. Diagn. 2011; 31(2):186–95. doi: 10.1002/pd.2677
  2. Mary E.N., Suneet P.C., Jodi S.D. Society for Maternal-Fetal Medicine (SMFM) Clinical Guideline#7:nonimmune hydrops fetalis. Am J Obstet Gynecol. 2015; 212(2):127-39. http://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2014.12.018
  3. Lee A.J., Bethune M., Hiscock R.J. Placental thickness in the second trimester: a pilot study to determine the normal range. J. Ultrasound Med. 2012; 31: 213-8. DOI: 10.7863/jum.2012.31.2.213
  4. Im S.S., Rizos N., Joutsi P., et al. Nonimmunologic hydrops fetalis. Am J Obstet Gynecol. 1984; 5: 566–9. DOI: 10.1016/0002-9378(84)90749-x
  5. Ota S., Sahara J., Mabuchi A., et al. Perinatal and one-year outcomes of non-immune hydrops fetalis by etiology and age at diagnosis. J. Obstet. Gynecol. Res. 2015; 42(4): 385–91. DOI: 10.1111/jog.12922
  6. Бокерия Е.Л., Беспалова Е.Д., Суратова О.Г. Фетальные органические тахиаритмии: опыт лечения. Анналы аритмологии. 2011; 2:36–44.[Bokeria E.L., Bespalova E.D., Suratova O.G. Fetal organic tachyarrhythmias: treatment experience. Annals of arrhythmology. 2011; 2: 36–44.(in Russ.).
  7. Беспалова Е.Д., Бокерия Е.Л. Перинатальный кардиологический скрининг. Методические рекомендации для врачей неонатологов, педиатров, акушеров-гинекологов, врачей функциональной диагностики. Вопросы практической педиатрии. 2010; 5 (1): 60-62.
  8. Kearney, H.M., et al., American College of Medical Genetics standards and guidelines for interpretation and reporting of postnatal constitutional copy number variants. Genet Med. 2011; 13(7): 680-5.
  9. Désilets V., De Bie I., Audibert F. No. 363-investigation and management of non-immune fetal hydrops. J. Obstet. Gynaecol. Can. 2018; 40(8): 1077-90. doi: 10.1016 / j.jogc.2017.12.011
  10. Bellini C., Donarini G., Paladini D. et al. Etiology of non-immune hydrops fetalis: An update. Am. J. Med. Genet. Part A. 2015; 167(5):1082–8. doi: 10.1002 / ajmg.a.36988.
  11. Hartge D.R., Weichert J., Gembicki M., Krapp M. Confirmation of etiology in fetal hydrops by sonographic evaluation of fluid allocation patterns. Eur. J. Obstet. Gynecol. 2015; 195:128–32. doi: 10.1016/ j.ejogrb.2015.09.006
  12. Laterre M., Bernard P., Vikkula M., Sznajer Y. Improved diagnosis in non-immune hydrops fetalis using a standardized algorithm. J. Obstet. Gynecol. 2017; 16(2):119–26. doi: 10.1002 / pd.5243

Поступила 16.04.2019

Принята в печать 19.04.2019

Об авторах / Для корреспонденции

Кадырбердиева Фаина Залимхановна, аспирант ФГБУ «НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(909)916-58-52.
E-mail: f_kadyrberdieva@oparina4.ru
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Шмаков Роман Георгиевич, д.м.н., профессор РАН, директор института акушерства ФГБУ «НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России.
Тел.: +7(495)438-72-00. E-mail: r_shmakov@oparina4.ru
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Бокерия Екатерина Леонидовна, д.м.н., профессор, заведующая 2-м отделением патологии новорожденных и недоношенных детей ФГБУ «НМИЦАГиП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(495)438-27-05. E-mail: e_bokeriya@oparina4.ru
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Тетруашвили Нана Картлосовна, д.м.н., заведующая 2-м отделением акушерским патологии беременности ФГБУ «НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова»
Минздрава России. Тел.: +7(495)438-14-77. E-mail: n_tetruashvili@oparina4.ru
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Костюков Кирилл Витальевич, к.м.н., врач ультразвуковой диагностики отделения ультразвуковой и функциональной диагностики ФГБУ «НМИЦАГиП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Тел.: +7(495)438-25-29. E-mail: k_kostyukov@oparina4.ru
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Донников Андрей Евгеньевич, к.м.н., заведующий лабораторией молекулярно-генетических методов отдела клинической и молекулярной генетики ФГБУ
«НМИЦАГиП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8(495)438-49-51.
E-mail: a_donnikov@oparina4.ru
Белоусов Дмитрий Михайлович, к.м.н., врач ультразвуковой диагностики отделения ультразвуковой и функциональной диагностики ФГБУ «НМИЦАГиП
им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8(495)438-25-29.
E-mail: a_donnikov@oparina4.ru

Для цитирования: Кадырбердиева Ф.З., Шмаков Р.Г., Бокерия Е.Л., Тетруашвили Н.К., Костюков К.В., Донников А.Е., Белоусов Д.М. Неиммунная водянка плода: основные причины.
Акушерство и гинекология. 2019; 11:186-91.
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.11.186-191

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.