Морфологические аномалии ооцитов у ВИЧ-инфицированных пациенток, получающих антиретровирусную терапию

Митюрина Е.В., Перминова С.Г., Кравченко А.В., Козырина Н.В., Веюкова М.А., Гапоненко А.А.

1) ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия; 2) ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора, Москва, Россия
Цель: Изучить распространенность дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин, принимающих антиретровирусную терапию (АРТ). Материалы и методы: В ретроспективное исследование включены 210 супружеских пар, обратившихся для проведения программы ЭКО. Основная группа – 113 пациенток с ВИЧ-инфекцией, контрольная – 97 женщин без ВИЧ-инфекции, которым выполнено 163 и 123 стимулированных цикла соответственно. Проведена морфологическая оценка 2321 зрелого ооцита (MII), из них 1228 получены в основной группе и 1093 – в группе контроля. Результаты: Медиана возраста у пациенток с ВИЧ-инфекцией составляла 34 (31;37) года; длительность заболевания и продолжительность АРТ – 8 (5;11) и 3,6 (2;6) года соответственно. У 65 из 113 женщин (57,5%; 95% ДИ 47,8–66,4) была 3-я субклиническая стадия заболевания, у 43 (38,1%; 95% ДИ 29,2–47,8) – 4А стадия, у 2 (1,8%; 95% ДИ 0–4,4) – 4Б и у 3 (2,7%; 95% ДИ 0–6,2) – 4В стадия ВИЧ-инфекции. Медиана уровня CD4+лимфоцитов составила 582 (432;807) мкл в 1 кл., а значение иммунорегуляторного индекса (ИРИ) – 0,87. Все пациентки получали АРТ и имели неопределяемую вирусную нагрузку в крови перед проведением программы ЭКО. Распространенность различных видов дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин была существенно выше, чем у пациенток контрольной группы, и составила 29,5% (362/1228) и 14,1% (154/1093) соответственно (р<0,001; ОШ 2,0; 95% ДИ 1,765–2,480). В структуре цитоплазматических аномалий строения ооцитов в обеих группах преобладала центральная гранулярность цитоплазмы. Частота выявления данного вида дисморфизма в основной группе составила 17,3% (213/1229), в группе контроля – 10% (109/1093), при этом различия были статистически значимы (р<0,001; ОШ 2,26; 95% ДИ 1,8–2,7). Распространенность экстрацитоплазматических аномалий строения ооцитов, а также сочетание форм у ВИЧ-инфицированных пациенток были сопоставимы с ВИЧ-серонегативным контролем. Заключение: Более высокая распространенность дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных пациенток, принимающих АРТ, по сравнению со здоровыми женщинами свидетельствует об ухудшения морфологических характеристик ооцитов в данной группе больных.

Ключевые слова

морфология ооцитов
дисморфизмы ооцитов
качество ооцитов
ВИЧ
ЭКО
антиретровирусная терапия

Ключевым фактором успеха в циклах вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) является функциональная и морфологическая зрелость гамет. В экспериментах на животных было показано, что качество ооцита играет более важную роль, чем характеристики сперматозоида [1, 2]. Компетентность ооцитов, их способность к оплодотворению и дальнейшее раннее развитие эмбриона определяется синхронностью созревания ядра и цитоплазмы. Нарушение или асинхронность данного процесса может приводить к появлению тех или иных морфологических аномалий строения ооцитов, распространенность которых в циклах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) достигает 50% [3]. Общепринято различать экстрацитоплазматические и цитоплазматические аномалии строения яйцеклеток, называемые дисморфизмами. К цитоплазматическим дисморфизмам ооцитов относятся центральная гранулярность цитоплазмы, вакуоли, аномальные агрегаты гладкого эндоплазматического ретикулума (ГЭР), а также темная или агомогенная цитоплазма. Ряд исследователей считают, что ооциты с данными видами дисморфизмов имеют низкую частоту оплодотворения, а эмбрионы, полученные из таких клеток, обладают низким потенциалом к имплантации и дальнейшему развитию [4–6]. Экстрацитоплазматические дисморфизмы – это изменение ширины и наличие гранулярности в перивителлиновом пространстве, изменение формы или толщины блестящей оболочки, а также аномалия строения первого полярного тельца. Экспертами Стамбульского консенсуса по оценке ооцитов и эмбрионов было показано, что экстрацитоплазматические аномалии следует рассматривать как фенотипические отклонения (вариации), а некоторые из них – как индикатор старения ооцитов [7]. Остается спорным вопрос о негативном влиянии данных видов дисморфизмов на частоту оплодотворения и развитие эмбриона [4, 5, 8, 9].

В литературе обсуждается роль возраста женщины, а также некоторых гинекологических заболеваний и метаболических нарушений в появлении морфологических аномалий ооцитов [10]. Кроме этого, ряд исследователей в качестве фактора риска возникновения дисморфизмов рассматривают длительность овариальной стимуляции и суммарной дозы гонадотропинов [4, 11–13]. Однако не существует единой точки зрения относительно влияния перечисленных факторов на морфологию яйцеклеток. Следует сказать, что остаются неизученными морфологические характеристики ооцитов у пациенток, принимающих гонадотоксичные препараты. Так, среди хронических инфекционных заболеваний особое место занимает ВИЧ-инфекция. По данным объединенной программы ООН по ВИЧ/СПИД (ЮНЭЙДС), в 2020 г. в мире насчитывалось 38,0 (31,6–44,5) млн людей, живущих с ВИЧ, из них на конец июня 2020 г. 26,0 (25,1–26,2) млн. получали антиретровирусную терапию (АРТ). Следует сказать, что современная АРТ позволяет перевести заболевание в разряд хронической контролируемой патологии, сохранить качество и продолжительность жизни людям с ВИЧ-инфекцией [14]. Однако в литературе обсуждается негативное влияние на качество ооцитов как тяжелого иммунодефицита, связанного с ВИЧ-инфекцией, так и АРТ. В ряде работ было показано, что при использовании нуклеозидных и нуклеотидных ингибиторов обратной транскриптазы (НИОТ) в ооцитах и кумулюсных клетках у пациенток с ВИЧ-инфекцией наблюдается истощение митохондриальной ДНК (мтДНК), увеличение частоты ее мутаций [15–17]. Именно с этим авторы связывают снижение способности ооцитов к оплодотворению и низкую эффективность программы ЭКО в данной группе больных. Однако сведения об исследованиях по изучению морфологических характеристик ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин, принимающих АРТ, в научной литературе отсутствуют. Данный аспект представляет научный интерес в связи с увеличением числа женщин репродуктивного возраста, инфицированных ВИЧ и планирующих беременность с использованием ВРТ.

Цель исследования: изучить распространенность дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин, принимающих АРТ.

Материалы и методы

В ретроспективное исследование включены 210 супружеских пар, обратившихся для проведения программы ЭКО. Основную группу составили 113 пациенток с ВИЧ-инфекцией, контрольную – 97 женщин без ВИЧ-инфекции, которым выполнено 163 и 123 стимулированных цикла соответственно. Проведена морфологическая оценка 2321 зрелых ооцитов (MII), из них 1228 – полученных в основной группе и 1093 – в группе контроля. Критерии включения в основную группу: ВИЧ-положительный статус у женщины, в контрольную – отсутствие ВИЧ-инфекции. Критерии невключения в обеих группах: наличие противопоказаний к проведению ВРТ (Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации № 803н «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению» от 31.07.20).

Стимуляцию суперовуляции проводили в протоколах с антагонистами гонадотропин-рилизинг-гормона (ант-ГнРГ) с использованием препаратов рекомбинантного фолликулостимулирующего гормона (рФСГ). При достижении фолликулами диаметра 14–15 мм для предотвращения паразитарного пика эндогенного лютеинизирующего гормона начи­налось введение препарата ант-ГнРГ в дозе 0,25 мг/сут подкожно до дня введения триггера овуляции. В качестве триггера овуляции при визуализации 3 фолликула и более ≥17 мм в диаметре использовали хорионический гонадотропин человека в дозе 10 000 МЕ или 0,2 мг агониста ГнРГ. Аспирацию ооцитов осуществляли через 35–36 часов после введения триггера овуляции. Далее в полученной фолликулярной жидкости проводили поиск ооцит-кумулюсных комплексов (ОКК), которые затем в стерильных планшетах с культуральной средой для оплодотворения (G-IVF, VitroLife) помещали в инкубатор при температуре 37,2°С и СО2 6,5%. Через 2–3 ч выполняли механическое и ферментативное удаление (денудирование) клеток кумулюса из ОКК. Затем проводилась процедура ИКСИ, во время которой оценивали степень зрелости клеток, их морфологические характеристики и выявление дисморфизмов. Центральную гранулярность определяли при наличии темной губчатой зернистой области в цитоплазме ооцита; вакуоли представляли собой цитоплазматические включения, содержащие жидкость и окруженные мембраной. Аномальные агрегаты ГЭР – это круглые полупрозрачные образования в центральной части ооцита. Темный цвет цитоплазмы – значительное изменение цвета всей цитоплазмы ооцита. К экстрацитоплазматическим дисморфизмам относили изменение ширины перивителлинового пространства и наличие в нем гранулярности, аномалии первого полярного тельца, а также деформацию или утолщение зоны пеллюцида ооцита.

Статистический анализ

Статистическая обработка данных выполнена с использованием программы IPM SРSS Statistics, версия 26. Результаты представлены в виде медианы и квартилей (Ме (Q1;Q3)), а для оценки различий в группах применяли методы непараметрической статистики (тест Манна–Уитни). Для сравнения категориальных данных, а также для оценки значимых различий между ними использовали тест χ2. Оценивали отношение шансов (ОШ) и 95% доверительный интервал (ДИ). Различия считали статистически значимыми при уровне достоверности p<0,05.

Результаты

Медиана возраста у пациенток с ВИЧ-инфекцией составляла 34 года (31;37 лет). Длительность заболевания и продолжительность АРТ – 8 (5;11) и 3,6 (2;6) года соответственно. У 65 из 113 женщин (57,5%; 95% ДИ 47,8–66,4) была 3-я субклиническая стадия заболевания, у 43 (38,1%; 95% ДИ 29,2–47,8) – 4А стадия, у 2 (1,8%; 95% ДИ 0–4,4) – 4Б и у 3 (2,7%; 95% ДИ 0–6,2) – 4В стадия ВИЧ-инфекции. На момент включения в исследование у всех женщин с 4-й стадией ВИЧ-инфекции имела место фаза ремиссии на фоне АРТ. Медиана уровня CD4+лимфоцитов составила 582 (432;807) мкл в 1 кл., CD8+лимфоцитов – 740 (611;982) мкл в 1 кл., а значение иммунорегуляторного индекса – 0,87. Все пациентки получали АРТ и имели неопределяемую вирусную нагрузку в крови перед проведением программы ЭКО. У каждой третьей женщины (30,1%; 95% ДИ 21,2–38,9) были выявлены антитела к гепатиту С. В таблице 1 представлена клиническая характеристика пациентов, включенных в данное исследование.

138-1.jpg (413 KB)

Пациентки обеих групп были сопоставимы по возрасту (34 (31;37) и 33 (30;36) года; р=0,079), индексу массы тела (22,5 (20;24,9) и 22 (21;24,5) кг/м2; р=0,875) и факторам бесплодия, которое в исследуемых группах чаще было обусловлено трубно-перитонеальным генезом. Следует отметить, что у ВИЧ-инфицированных пациенток в сравнении с группой контроля наблюдались значимо более низкие уровни антимюллерова гормона (АМГ) (1,58 (0,8;3,1) и 2,8 (1,9;5,7) нг/мл соответственно; р=0,001). Как результат, при проведении овариальной стимуляции в основной группе пациенток была использована большая суммарная доза гонадотропинов (2250 (1875;2700) и 1950 (1650;2250) МЕ соответственно; р=0,001), получено существенно меньшее количество ооцитов (8 (4;14) и 10 (7;15) соответственно; р=0,010) (табл. 1). При этом длительность стимуляции (10 (9;10) и 10 (9;10) дней соответственно; р=0,948) и число зрелых ооцитов MII (7 (3;10,5) и 8 (6;12) соответственно; р=0,14) были сопоставимы между группами.

Далее проведена оценка морфологических характеристик зрелых ооцитов. Распространенность различных видов дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных женщин была существенно выше, чем у пациенток контрольной группы, и составила 29,5% (362/1228) и 14,1% (154/1093) соответственно (р<0,001; ОШ 2,092; 95% ДИ 1,765–2,480).

Как видно из представленных в таблице 2 данных, цитоплазматические аномалии строения ооцитов статистически значимо чаще встречались в основной группе исследования в сравнении с группой контроля (26,3 и 11,7% соответственно; р<0,001; ОШ 2,26; 95% ДИ 1,8–2,7). Наиболее распространенной формой цитоплазматических дисморфизмов ооцитов в исследуемой выборке была центральная гранулярность цитоплазмы. Частота выявления данной аномалии строения яйцеклеток в основной группе составила 17,3% (213/1229), в группе контроля – 10% (109/1093), при этом различия были статистически значимы (р<0,001; ОШ 2,26; 95% ДИ 1,8–2,7). В ооцитах ВИЧ-инфицированных пациенток существенно чаще, чем в группе контроля, наблюдались вакуоли (1,4 и 0,3% соответственно; р=0,004; ОШ 5,044; 95% ДИ 1,482–17,164) и агомогенная цитоплазма (7 и 1,7% соответственно; р<0,001; ОШ 4,029; 95% ДИ 2,468–6,577), а темная цитоплазма ооцитов встречалась одинаково часто в обеих группах (1,1 и 0,5% соответственно; р=0,174; ОШ 1,9; 95% ДИ 0,736–5,056). Обращает внимание, что аномальные агрегаты ГЭР определялись только в ооцитах ВИЧ-инфицированных женщин (1,3%, 16/1228).

Частота встречаемости экстрацитоплазматических аномалий строения ооцитов, а также сочетание форм у ВИЧ-инфицированных пациенток была сопоставима с ВИЧ-серонегативным контролем. При этом в основной группе исследования статистически значимо чаще наблюдалась гранулярность в перивителлиновом пространстве (6,2% (75/1228) и 3,4% (37/1093) соответственно; р=0,002; ОШ 1,798; 95% ДИ 1,223–2,642), а в группе контроля – изменение ширины перивителлинового пространства (1,4% (17/1228) и 3% (32/1093) соответственно; р=0,009; ОШ 0,471; 95% ДИ 0,263–0,844). Аномалии строения первого полярного тельца чаще встречались у пациенток с ВИЧ-инфекцией, однако статистическая значимость различий имела пограничное значение (0,9% (11/1228) и 0,3% (3/1093) соответственно; р=0,054; ОШ 3,2; 95% ДИ 0,910–11,624). Деформация зоны пеллюцида ооцита наблюдалась одинаково часто в обеих группах (0,7% (8/1228) и 0,9% (10/1093) соответственно; р=0,465; ОШ 0,7; 95% ДИ 0,281–1,791).

Обсуждение

Кумулятивное число ВИЧ-инфицированных в Российской Федерации достигло 1 492 998 человек (по состоянию на конец 2020 г.), из них 37,5% составляют женщины; АРТ получали 604 999 ВИЧ-позитивных [18]. Наиболее высокий уровень пораженности населения ВИЧ-инфекцией сохраняется в возрастной группе от 30 до 44 лет. Хотя среди российской когорты ВИЧ-позитивных преобладают мужчины, следует сказать, что у женщин риск инфицирования в 4–7 раз выше, что обусловлено анатомическими особенностями и длительным нахождением во влагалище семенной жидкости с высокой концентрацией вирусных частиц. Более того, риск инфицирования повышается при наличии инфекций, передающихся половым путем и язвенных поражений слизистой оболочки половых путей [19]. Использование высокоактивной АРТ позволяет женщинам с ВИЧ-инфекцией планировать беременность как самостоятельно, так и с использованием ВРТ. Однако в данной группе пациенток наблюдается снижение фертильности при любой стадии ВИЧ-инфекции, что объясняют высокой частотой встречаемости воспалительных заболеваний органов малого таза, а также негативным влиянием препаратов группы НИОТ на липидный обмен, резистентность к инсулину [20, 21]. Гонадотоксичный эффект АРТ обсуждаются и в контексте низкой эффективности программ ВРТ у женщин с ВИЧ-инфекцией [20, 21]. Однако, учитывая доказанную митохондриальную токсичность НИОТ, исследования в основном направлены на оценку копийности мтДНК гамет. Морфологические же характеристики ооцитов ВИЧ-инфицированных женщин в настоящее время не изучены.

Как было уже сказано, аномалии морфологии ооцитов встречаются более чем в половине циклов ВРТ, и при их наличии снижается частота наступления беременности [3]. В данной работе частота встречаемости различных дисморфизмов у пациенток с ВИЧ-инфекцией составила 29,5%, что было значимо выше по сравнению с ВИЧ-негативными женщинами (14,1%; р<0,001).

Пациентки с ВИЧ-инфекцией, включенные в настоящее исследование, были в репродуктивном возрасте (Ме 34 года), имели средний «стаж» заболевания (Ме 8 лет) и непродолжительный период использования АРТ (Ме 3,6 года). Следует сказать, что при оценке силы взаимосвязи была выявлена обратная зависимость между частотой выявления морфологически аномальных ооцитов и длительностью АРТ (r=0,173; р<0,001). Более высокая частота встречаемости дисморфизмов у ВИЧ-инфицированных женщин, принимающих АРТ, по сравнению с ВИЧ-негативными пациентками свидетельствует об ухудшения морфологических характеристик ооцитов в данной группе больных.

При анализе клинико-лабораторных показателей обращает на себя внимание тот факт, что у женщин с ВИЧ-инфекцией наблюдались значимо более низкие уровни АМГ (1,58 и 2,8 нг/мл; р<0,001), хотя пациентки обеих групп были сопоставимы по возрасту (34 и 33 года; р=0,079). Полученные данные согласуются с результатами других исследователей. Так, Scherzer R. et al. (2015) было показано, что уровни АМГ среди ВИЧ-инфицированных пациенток были стабильно ниже во всех возрастных группах по сравнению с неинфицированными женщинами [22]. Следует отметить, что в ряде работ было показано, что концентрации сывороточного АМГ отражают морфологические характеристики ооцитов. Авторы объясняют это тем, что АМГ вырабатывается гранулезными клетками и циркулирует в фолликулярной жидкости, тем самым может оказывать влияние на качество ооцитов за счет своего ауто- и паракринного действия. Остается неясным, связана ли корреляция между значениями АМГ и наличием дисморфизмов ооцитов со снижением его секреции гранулезными клетками в ооцитах низкого качества или, напротив, с возможным негативным влиянием низких уровней гормона на качество ооцитов [23–25]. В контексте этих данных, более высокую частоту встречаемости дисморфизмов ооцитов у ВИЧ-инфицированных, в сравнении с неинфицированными пациентками можно объяснить низкими уровнями сывороточного АМГ (1,58 и 2,8 нг/мл; р≤0,001).

При проведении овариальной стимуляции в основной группе исследования, по сравнению с контрольной, была использована значимо большая суммарная доза индуктора (Ме 2250 и 1950 МЕ; р=0,001), получено существенно меньшее количество ооцитов (Ме 8 и 10; р=0,010), что можно объяснить исходно более низкими показателями овариального резерва. Обращает на себя внимание прямая зависимость частоты обнаружения морфологических аномалий ооцитов и суммарной дозы гонадотропинов у ВИЧ-инфицированных женщин (r=0,222; р<0,001). В исследовании Figueira et al. (2010) суммарная доза рФСГ положительно коррелировала с появлением экстрацитоплазматических дисморфизмов, а именно с наличием гранулярности в перивителлиновом пространстве (r=0,125; p=0,018) [26].

В структуре цитоплазматических дисморфизмов ооцитов в обеих группах преобладала центральная гранулярность цитоплазмы (17,3 и 10%), существенно чаще у ВИЧ-инфицированных пациенток (р<0,001). По данным литературы, частота встречаемости данной аномалии ооцитов достигает 30–35% [27], а в качестве факторов риска возникновения обсуждается возраст женщины и различные протоколы овариальной стимуляции [5]. Влияние центральной гранулярности цитоплазмы на исходы циклов ЭКО остается спорным. Так, в исследовании Tulay P. et al. (2019) не было выявлено различий в частоте оплодотворения между ооцитами с нормальной цитоплазмой и ооцитами с центральной грануляцией цитоплазмы. Более того, частота дробления, бластуляции и доля анеуплоидных эмбрионов также была сопоставима между группами. Однако частота наступления клинической беременности была существенно ниже в группе пациенток с центральной грануляцией цитоплазмы ооцитов в сравнении с группой контроля. Авторы делают вывод, что эмбрионы, полученные из ооцитов с центральной грануляцией цитоплазмы, имеют меньший потенциал к имплантации [28]. Другие исследователи, напротив, низкую частоту наступления беременности в данной группе пациенток объясняют более высокой частотой анеуплоидий (52%) в бластомерах эмбрионов, полученных после оплодотворения ооцитов с центральной грануляцией цитоплазмы [27].

Вакуоли (1,4 и 0,3%; р=0,004) и темная цитоплазма (1,1 и 0,5%; р=0,174) встречались не столь часто как в основной, так и в контрольной группах. По данным других исследователей, распространенность вакуолизации ооцитов также невысока и составляет не более 3–4% [5]. Факторы риска возникновения данного дисморфизма неизвестны, а частота оплодотворения ооцитов с вакуолями зависит от их количества и размера. Существует мнение, что крупные вакуоли смещают веретено деления; как результат, нарушается архитектоника цитоплазмы, что препятствует нормальному движению пронуклеусов, а полученные при этом эмбрионы реже достигают стадии бластоцисты и имеют более низкий потенциал к имплантации [8]. Наличие темной цитоплазмы ооцита может быть связано с цитоплазматической незрелостью клетки и также увеличивает вероятность получения эмбрионов плохого качества [29].

В основной группе исследования по сравнению с контрольной существенно чаще наблюдалась агомогенная цитоплазма ооцитов (7 и 1,7%; р<0,001). Большинство исследователей полагают, что агомогенная цитоплазма имеет неизвестное биологическое значение, то есть остаются неясными ни генез, ни влияние данного дисморфизма ооцитов на исход циклов ЭКО [5, 7].

Интересным в данной работе является то, что аномальные агрегаты ГЭР встречались только в группе пациенток с ВИЧ-инфекцией (1,3%, 16/1228). Данная морфологическая аномалия ооцитов является наиболее серьезной с точки зрения отрицательных эмбриологических, клинических и неонатальных исходов. В этой связи экспертами Стамбульского консенсуса по оценке ооцитов и эмбрионов рекомендовано не использовать для оплодотворения яйцеклетки с аномальными агрегатами ГЭР [7]. Факторами риска появления данного дисморфизма являются овариальная стимуляция, длительность и доза вводимых гонадотропинов [30]. Поскольку в данной работе у женщин с ВИЧ-инфекцией по сравнению с группой контроля была использована значимо большая суммарная доза индуктора (Ме 2250 и 1950 МЕ; р=0,001), полагаем, что это один из факторов появления аномальных агрегатов ГЭР в данной группе пациенток.

Частота выявления экстрацитоплазматических дисморфизмов ооцитов была сопоставима между группами (9 и 7,7%; р=0,241). Полученные данные подтверждаются результатами других исследователей, в которых показано, что данные морфологические аномалии – это фенотипические отклонения, отражающие гетерогенность полученных ооцитов [7].

Заключение

Таким образом, у пациенток с ВИЧ-инфекцией, использующих АРТ, наблюдалось снижение уровня АМГ; как результат было получено меньшее количество ооцитов, морфологические характеристики которых были существенно хуже в сравнении с группой контроля. По этическим и нормативным причинам проведение подобных исследований у женщин с ВИЧ-инфекцией, не принимающих АРТ, в России невозможно; поэтому обоснованно предполагать наличие ведущей роли АРТ в развитии дисморфизмов ооцитов преждевременно. В то же время полученные данные позволяет рекомендовать пациенткам данной группы не откладывать планирование беременности и при достижении неопределяемой вирусной нагрузки в крови стремиться к реализации репродуктивной функции самостоятельно или с использованием ВРТ.

Список литературы

  1. Sirard М.-A., François R., Blondin P., Robert C. Contribution of the oocyte to embryo quality. Theriogenology. 2006; 65(1): 126-36. https://dx.doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.09.020.
  2. De Sousa P.A., Caveney A., Westhusin M.E., Watson A.J. Temporal patterns of embryonic gene expression and their dependence on oogenetic factors. Theriogenology. 1998; 49(1): 115-28. https://dx.doi.org/10.1016/s0093-691x(97)00406-8.
  3. Setti A.S., Figueira R.C.S., Braga D.P.A.F., Colturato S.S., Iaconelli A. Jr., Borges E. Jr. Relationship between oocyte abnormal morphology and intracytoplasmic sperm injection outcomes: a meta-analysis. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2011; 159(2): 364-70. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2011.07.031.
  4. Горшкова А.Г., Долгушина Н.В., Макарова Н.П., Ковальская Е.В., Калинина Е.А. Факторы риска развития дисморфизмов ооцитов в программах вспомогательных репродуктивных технологий. Акушерство и гинекология. 2015; 5: 66-73.
  5. Rienzi L., Ubaldi F.M., Iacobelli M., Minasi M.G., Romano S., Ferrero S. et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertil. Steril. 2008; 90(5): 1692-700. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.09.024.
  6. Ubaldi F., Rienzi L. Morphological selection of gametes. Placenta. 2008; 29(Suppl. B): 115-20. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2008.08.009.
  7. Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Hum. Rep. 2011; 26(6): 1270-83. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/der037.
  8. Wilding M., Di Matteo L., D’Andretti S., Montanaro N., Capobianco C., Dale B. An oocyte score for use in assisted reproduction. J. Assist. Reprod. Genet. 2007; 24(8): 350-8. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-007-9143-8.
  9. Balakier H., Sojeck A., Motamedi G., Bashar S., Mandel R., Librach C. Is the zona pellucida thickness of human embryos influenced by women’s age and hormonal levels ? Fertil. Steril. 2012; 98(1): 77-83. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.04.015.
  10. Setti A.S., Braga D.P.A.F., Figueira Rde C., Vingris L., Iaconelli A., Borges E. Jr. Body mass index is negatively correlated with the response to controlled ovarian stimulation but does not influence oocyte morphology in ICSI cycles. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2012; 163(2): 175-9. https://dx.doi.org10.1016/j.ejogrb.2012.04.002.
  11. Cota A.M., Oliveira J.B., Petersen C.G., Mauri A.L., Massaro F.C., Silva L.F. et al. GnRH agonist versus GnRH antagonist in assisted reproduction cycles : oocyte morphology. Reprod. Biol. Endocrinol. 2012; 10: 33. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-10-33.
  12. Fancsovits P., Tóthné Z.G., Murber Á., Rigó J. Jr., Urbancsek J. Importance of cytoplasmic granularity of human oocytes in in vitro fertilization treatments. Acta Biol. Hung. 2012; 63(2): 189-201. https://dx.doi.org/10.1556/ABiol.63.2012.2.3.
  13. Yoldemir T. Does the duration of gonadotropin stımulation affect embryo quality on post-retrieval day 3? Gynecol. Endocrinol. 2011; 27(5): 324-30. https://dx.doi.org/10.3109/09513590.2010.491571.
  14. UNAIDS. Global HIV and AIDS statistics - Fact sheet. Global HIV statistics. 2020. Available at: www.unaids.org
  15. López S., Coll O., Durban M., Hernàndez S., Vidal R., Suy A. et al. Mitochondrial DNA depletion in oocytes of HIV-infected antiretroviral-treated infertile women. Antiv. Ther. 2008; 13(6): 833-8.
  16. Bostan A., Demeestere I., Vanderwinden J.-M., Devreker F., Englert Y. Nucleoside analog stavudine depletes mitochondrial DNA with no organelle loss in mouse oocytes. Curr. HIV Res. 2010; 8(2): 127-33. https://dx.doi.org/10.2174/157016210790442678.
  17. Митюрина Е.В., Перминова С.Г., Селимова Ф.Н., Бурменская О.В., Козырина Н.В., Кравченко А.В. Гонадотоксичные эффекты антиретровирусной терапии у ВИЧ-инфицированных женщин. Акушерство и гинекология. 2020; 4: 111-9.
  18. Федеральный научно-методический центр по профилактике и борьбе со СПИДом. Справка «ВИЧ-инфекция в Российской Федерации» на 31 декабря 2020 г. Доступно по VICH-infektsiya-v-Rossijskoj-Federatsii-na-31.12.2020-..pdf (www.hivrussia.info).
  19. Simon V., Ho D.D., Karim Q.A. HIV/AIDS epidemiology, pathogenesis, prevention, and treatment. Lancet. 2006; 368(9534): 489-504. https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(06)69157-5.
  20. Savasi V., Ferrazzi E., Lanzani C., Oneta M., Parrilla B., Persico T. Safety of sperm washing and ART outcome in 741 HIV-1-serodiscordant couples. Hum. Reprod. 2007; 22(3): 772-7. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/del422.
  21. Marques C., Guerreiro C., Soares S.R. Lights and shadows about the effectiveness of IVF in HIV infected women: a systematic review. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2015; 2015: 517208. https://dx.doi.org/10.1155/2015/517208.
  22. Scherzer R., Bacchetti P., Messerlian G., Goderre J., Maki P.M., Seifer D.B. et al. Impact of CD4+ lymphocytes and HIV infection on Anti-Müllerian Hormone levels in a large cohort of HIV-infected and HIV-uninfected women. Am. J. Reprod. Immunol. 2015; 73(3): 273-84. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12332.
  23. Ebner T., Sommergruber M., Moser M., Shebl O., Schreier-Lechner E., Tews G. Basal level of anti-Müllerian hormone is associated with oocyte quality in stimulated cycles. Hum. Reprod. 2006; 21(8): 2022-6. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/del127.
  24. Azizi E., Naji M., Nazari L., Salehpour S., Karimi M., Borumandnia N. et al. Serum anti‐Müllerian hormone is associated with oocyte dysmorphisms and ICSI outcomes. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2019; 147(2): 179-86. https://dx.doi.org/10.1002/ijgo.12941.
  25. Borges E., Braga D.P.A.F., Setti A., Figueira R.C., Iaconelli A. Jr. The predictive value of serum concentrations of anti‐Müllerian hormone for oocyte quality, fertilization, and implantation. JBRA Assist. Reprod. 2017; 21(3): 176-82. https://dx.doi.org/10.5935/1518-0557.20170035.
  26. Figueira R.C., Braga D.P.A.F., Semião-Francisco L., Madaschi C., Iaconelli A. Jr., Borges E. Jr. Metaphase II human oocyte morphology: contributing factors and effects on fertilization potential and embryo developmental ability in ICSI cycles. Fertil. Steril. 2010; 94(3): 1115-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.11.039.
  27. Kahraman S., Yakin K., Dönmez E., Samli H., Bahçe M., Cengiz G. et al. Relationship between granular cytoplasm of oocytes and pregnancy outcome following intracytoplasmic sperm injection. Hum. Reprod. 2000; 15(11): 2390-3. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/15.11.2390.
  28. Tulay P., Arslan H., Buran A., Koprulu Y. Assessment of successful pregnancy using granular oocytes in ICSI treatments. Zygote. 2019; 27(2): 97-100. https://dx.doi.org/10.1017/S096719941900008X.
  29. Ten J., Mendiola J., Vioque J., De Juan J., Bernabeu R. Donor oocyte dysmorphisms and their influence on fertilization and embryo quality. Reprod. Biomed. Online. 2007; 14(1): 40-8. https://dx.doi.org/10.1016/S1472-6483(10)60762-6.
  30. Shaw-Jackson C., Van Beirs N., Thomas A.-L., Rozenberg S., Autin C. Can healthy babies originate from oocytes with smooth endoplasmic reticulum aggregates? A systematic mini-review. Hum. Reprod. 2014; 29(7): 1380-6. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deu101.

Поступила 28.05.2021

Принята в печать 15.06.2021

Об авторах / Для корреспонденции

Митюрина Елена Викторовна, к.м.н., с.н.с. научно-клинического отделения вспомогательных репродуктивных технологий им. Фредерика Паулсена, НМИЦ АГП
им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(964)796-74-65, mity-elena@yandex.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Перминова Светлана Григорьевна, д.м.н., в.н.с. научно-клинического отделения вспомогательных репродуктивных технологий им. Фредерика Паулсена, НМИЦ АГП
им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(916)202-16-87, perisvet@list.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Кравченко Алексей Викторович, д.м.н., профессор, в.н.с. Федерального научно-методического центра по профилактике и борьбе со СПИДом, Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, +7(495)366-05-18, alexey-kravtchenko@yandex.ru, 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а.
Козырина Надежда Владимировна, к.м.н., научный сотрудник, Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, +7(916)715-10-18, nad-kozyrina@yandex.ru,
111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а.
Веюкова Мария Александровна, к.б.н., научный сотрудник научно-клинического отделения вспомогательных репродуктивных технологий им. Фредерика Паулсена, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(977)053-44-44, veymary@gmail.com, 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.
Гапоненко Александра Александровна, аспирант, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(926)700-44-14, sasha.gap@mail.ru,
117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4.

Вклад авторов: Митюрина Е.В., Перминова С.Г. – концепция и дизайн исследования, написание текста; Митюрина Е.В., Гапоненко А.А., Веюкова М.А. – сбор и обработка материала; Митюрина Е.В. – статистическая обработка данных; Козырина Н.В., Кравченко А.В. – редактирование.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Финансирование: Работа выполнена без спонсорской поддержки.
Согласие пациентов на публикацию: Пациенты подписали информированное согласие на публикацию своих данных.
Обмен исследовательскими данными. Данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны по запросу у автора, ответственного за переписку, после одобрения ведущим исследователем.
Для цитирования: Митюрина Е.В., Перминова С.Г., Кравченко А.В., Козырина Н.В., Веюкова М.А., Гапоненко А.А. Морфологические аномалии ооцитов у ВИЧ-инфицированных пациенток, получающих антиретровирусную терапию.
Акушерство и гинекология. 2021; 11: 135-142
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.11.135-142

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.