Иммунологические аспекты повторных неудач имплантации в программе экстракорпорального оплодотворения

Амян Т.С., Перминова С.Г., Кречетова Л.В., Вторушина В.В., Митюрина Е.В.

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва
Цель работы. Провести систематический анализ данных, имеющихся в современной литературе, об иммунологических аспектах повторных неудач имплантации в программе экстракорпорального оплодотворения (ЭКО), а также современных персонифицированных видах иммунотерапии в преодолении повторных неудач имплантации.
Материал и методы. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, найденных в Pubmed по данной теме, опубликованные за 2010–2016 гг. Эти статьи стали основой для данного обзора, однако для лучшего понимания темы мы расширили поиск и включили более старые статьи, при этом широко цитируемые.
Заключение. Имеются существенные доказательства, что нарушение экспрессии неклассических молекул HLA, дисбаланс цитокинов, а также изменение в количестве и активности NK-клеток, возможно, вносят свой вклад в нарушения репродуктивной функции. Более полное представление о гормональной модуляции иммунного микроокружения эндометрия позволит разработать новые персонифицированные терапевтические подходы для предотвращения повторных неудач имплантации.

Ключевые слова

повторные неудачи имплантации
неклассические молекулы HLA
NK-клетки
Т-регуляторные клетки
цитокиновый профиль
баланс Th1/Th2
мононуклеарные клетки периферической крови
кортикотропин-рилизинг гормон

Несмотря на значительные достижения в области вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ), существенному проценту супружеских пар, прибегающих к ВРТ, не удается достичь наступления беременности после повторных попыток экстракорпорального оплодотворения (ЭКО).

Повторные неудачи имплантации (repeated implantation failure – RIF) определяют как неспособность достижения клинической беременности после переноса по крайней мере четырех эмбрионов хорошего качества, как минимум в трех лечебных циклах ЭКО или криопротоколах у женщин в возрасте до 40 лет [1].

RIF – серьезная проблема, решению которой посвящено большое количество как клинических, так и фундаментальных исследований в области репродукции человека. Для выяснения причин RIF принято проводить гистероскопию для выяснения состояния эндометрия и хирургической коррекции выявленной патологии, сальпингэктомию в случае выявления гидросальпинкса, вспомогательный хэтчинг эмбрионов, проведение преимплантационного генетического скрининга эмбрионов и др., однако не всегда удается верифицировать причины RIF в программе ЭКО [2].

Наименее изученными являются иммунологические аспекты RIF.

Иммунологические аспекты повторных неудач имплантации

Молекулярные и иммунологические аспекты неудач имплантации – важная область исследований, заслуживающая отдельного внимания [3]. Особый интерес представляет процесс децидуализации, который является определяющим для наступления и пролонгирования беременности. Децидуальные стромальные клетки приобретают способность регулировать инвазию трофобласта и подавлять локальный материнский иммунный ответ [4, 5]. В литературе существует много противоречивых данных по значимости различных иммунологических исследований и различных видов иммунотерапии у женщин с RIF [6]. Нет консенсуса относительно необходимости скрининговых иммунологических исследований и пользы иммунотерапии.

Некоторые аспекты иммунных взаимоотношений матери и эмбриона до сих пор остаются неизвестными, несмотря на то что последние достижения в области молекулярной биологии позволили выявить некоторые иммунологические параметры, определяющие взаимосвязь между иммунными нарушениями матери и плода во время имплантации. Экспрессия неклассических молекул главного комплекса гистосовместимости (HLA), специфическая роль некоторых гормонов и цитокинов, функциональная активность клеток естественных киллеров в эндометрии и Т-регуляторных клеток представляют собой основные параметры, характеризующие формирование иммунологической толерантности матери к антигенам плода во время имплантации [7]. Доказана связь аберрантных иммунных ответов и несбалансированного цитокинового профиля с бесплодием, неудачами имплантациями после ЭКО и повторными выкидышами [3].

Успех имплантации зависит от качества эмбриона и его адекватной инвазии в децидуальную строму эндометрия. Под влиянием овариальных стероидов сложная многоступенчатая сеть локально действующих пептидов в эндометрии регулирует восприимчивость эндометрия, устанавливает «диалог» между матерью и эмбрионом и обеспечивает имплантацию бластоцисты [3]. Имплантация бластоцисты сама по себе вызывает асептическую реакцию в эндометрии, подобную воспалению, и определенные цитокины – лейкимию-ингибирующий фактор (LIF), гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор (GM-CSF), колониестимулирующий фактор (CSF1), интерлейкины IL-1β, IL-6, IL-10, IL-11, IL-15, фактор некроза опухоли (TNFα), трансформирующий фактор роста β (TGF-β) считаются главными модуляторами внутриматочных иммунных реакций [3]. Таким образом, эмбрион плохого качества, нарушение рецептивности эндометрия и аномальный «диалог» между эмбрионом и эндометрием могут привести к нарушению имплантации эмбриона.

К настоящему времени в области репродуктивной иммунологии достигнуты значительные успехи, свидетельствующие о том, что нормальное осуществление репродуктивной функции возможно благодаря наличию уникальных врожденных и приобретенных иммунологических механизмов.

Роль клеток естественных киллеров (NK) в имплантации

В процессе инвазии трофобласта важное участие принимают клетки естественных киллеров (NK-клетки). Аккумуляция NK-клеток эндометрия совпадает с периодом имплантации. NK-клетки эндометрия участвуют в контроле внутрисосудистой инвазии трофобласта и взаимодействуют с другими иммунными клетками, такими, как дендритные клетки и T‑лимфоциты [8]. При нормальной беременности NK-клетки функционируют скорее как нецитотоксические, секретируя цитокины, хемокины и ангиогенные факторы. Однако их цитотоксический потенциал против тканей плода и матери может проявляться во время инфекционного воспаления [9]. Известно, что NK-клетки эндометрия продуцируют различные цитокины и факторы роста, TNFα, IL-10, GM-CSF, IL-1β, CSF 1, LIF и интерферон-γ (IFN-γ). Меньшая часть NK-клеток поверхностного эндометрия с фенотипом CD56lowCD16+ имеет непосредственную связь с ворсинами хориона в межворсинчатом пространстве. CD56low-клетки продуцируют низкий уровень NK-производных цитокинов, но они являются мощными медиаторами естественной цитотоксичности [10].

Несмотря на то что количество NK-клеток эндометрия меняется во время менструального цикла, в ранние сроки беременности NK-клетки составляют около 70% всей популяции лейкоцитов в децидуальной оболочке. NK-клетки эндометрия участвуют в процессе имплантации эмбриона, инвазии трофобласта и последующем росте и развитии плаценты [11].

Полагают, что скопление NK-клеток эндометрия вокруг спиральных артерий децидуальной оболочки на ранних сроках беременности может быть связано с их влиянием на развитие и ремоделирование маточных спиральных артерий, количество и качество которых очень важно для успешного пролонгирования беременности [12].

Несмотря на то что роль NK-клеток эндометрия в привычном невынашивании беременности была показана в ряде исследований, остается малоизученным вклад этих клеток в неудачи имплантации эмбриона в программе ЭКО. С помощью метода проточной цитометрии оценили субпопуляцию лимфоцитов эндометрия у молодых пациенток с повторными неудачами имплантации в программе ЭКО. Было показано отсутствие различий в проценте эндометриальных CD56+CD16− и CD56brightCD16− клеток среди пациенток, включенных в исследование, по сравнению с долей субпопуляции тех же лимфоцитов эндометрия у пациенток с успешным исходом программы ЭКО [13]. Напротив, в работе Fukui и соавт. (1999) [14] было выявлено значительное снижение процента CD56brightCD16− клеток в образцах эндометрия пациенток с неудачной имплантацией в программе ЭКО по сравнению с контрольной группой. Неоднозначность этих результатов свидетельствуют о необходимости проведения дальнейших исследований по оценке роли функциональных нарушений NK-клеток в патогенезе RIF.

Цитокиновый профиль и баланс Th1/Th2

T-лимфоциты, экспрессирующие антигенсвязывающий рецептор (TCRγ), являются источниками цитокинов Th1 и Th2-типов. Оптимальное соотношение Th1 и Th2-цитокинов в фетоплацентарной области является важным фактором, обеспечивающим резистентность к развивающемуся эмбриону на этапе его инвазии. Считается, что полноценной инвазии трофобласта способствует преобладание синтеза Th2-цитокинов (IL-4), что ограничивает цитолитическую и апоптогенную активность децидуальных клеток.

Получены данные о том, что мононуклеарные клетки периферической крови женщин с нормальной беременностью в анамнезе продуцируют значительно более высокие уровни цитокинов Th2-типа (IL-4 и IL-10), в то время как мононуклеарные клетки периферической крови у женщин с повторными самопроизвольными выкидышами в анамнезе секретировали значительно более высокий уровень Th1-цитокинов (IL-2, IFN-γ и TNF-α) [15].

Группа авторов [15] исследовали специфические ответы материнских мононуклеарных клеток периферической крови in vitro на аутологичные плацентарные клетки и антигены трофобласта, и выявили сдвиг в сторону продукции цитокинов Th2-типа стимулированными клетками женщин с нормальной беременностью в сравнении с мононуклеарными клетками периферической крови женщин с повторными самопроизвольными выкидышами в анамнезе.

Беременность определяют как антивоспалительное состояние за счет превалирования Th2-типа иммунного ответа, однако появились данные, указывающие на то, что для нормального процесса имплантации и инвазии трофобласта необходимо провоспалительное микроокружение и повышение продукции провоспалительных цитокинов [16]. В то же время высокие уровни провоспалительных цитокинов, связанные с наличием длительно текущих воспалительных заболеваний, могут отрицательно влиять на ранние этапы развития эмбриона [17]. Поэтому важно, чтобы перед наступлением беременности цитокиновая система была сбалансирована.

Kalu и соавт. (2008) [18] оценивали соотношение в периферической крови IFN‑γ/IL-4 и TNF-α/IL-4 женщин с RIF до проведения программы ЭКО и сравнивали их с аналогичными показателями в периферической крови у этих пациенток после аспирации ооцитов и показали, что данные соотношения могут быть предикторами неудач в программе ЭКО.

В настоящее время в литературе имеется единая точка зрения о повышении соотношения Th1/Th2-типа цитокинов в периферической крови пациенток с RIF, однако требуются дальнейшие исследования для изучения роли различных цитокинов в генезе RIF.

Роль Т-регуляторных клеток в имплантации

В формирование иммуносупрессии большой вклад вносят Т-регуляторные клетки (Тreg). У беременных Тreg-клетки составляют до 8% в периферической крови и до 20% от всех CD4+Т-лимфоцитов в децидуальной ткани. Основным методом определения Тreg является метод проточной цитометрии с использованием антител к CD4+ и CD25+-антигенам, а также к внутриклеточному маркеру – транскрипционному фактору Foxp3. Тreg являются важной составляющей в регулировании воспалительного иммунного ответа [19]. Многочисленные данные показывают, что Тreg крайне важны для материнской иммунной системы. Фенотипически эти клетки определяются как CD4+CD25+Foxp3+. Они способны осуществлять контроль толерантности к собственным антигенам и регулировать аутоиммунитет. Эти клетки влияют на фертильность, что доказывается их увеличением в лимфатических узлах мышей за 2 дня до оплодотворения [20]. Действительно, в эндометрии число Тreg увеличивается до овуляции, достигает пика в период овуляции и уменьшается во время лютеиновой фазы, что указывает на их ключевую роль в периовуляторный период менструального цикла [21]. Бесплодие также связано со снижением экспрессии мРНК FoxP3 в ткани эндометрия [22] и уменьшением CD4+CD25+FoxP3+-клеток в периферической крови в фолликулярной фазе менструального цикла у женщин после повторных неудачных программ внутриматочной инсеминации по сравнению с контрольной группой пациенток [23]. У женщин с RIF отмечается в том числе увеличение продукции цитокинов Th1-типа по сравнению с контрольной группой. Эта разница в продукции цитокинов отчасти является результатом снижения супрессирующей способности Т-reg [24].

Экспрессия HLA

Толерантность материнской иммунной системы к антигенам плода отцовского происхождения плода обеспечивается за счет экспрессии неклассических молекул HLA-системы клетками трофобласта. Трофобласт не экспрессирует HLA-антигены II класса, а также классические антигены I класса – HLA-А и HLA-В [25]. Однако установлено, что клетки вневорсинчатого трофобласта экспрессируют классические антигены I класса HLA-С и неклассические антигены I класса HLA-E, F, G [25].

Неклассические HLA-С антигены отличаются от А и В-антигенов высоким полиморфизмом. Периферические и маточные NK распознают HLA-С антигены с помощью иммуноглобулин-подобных рецепторов (KIR), вариабельная область которых представлена двумя гаплотипами, А и В. Рецепторы KIR, содержащие гаплотип А, обладают ингибиторной активностью, а рецепторы KIR c гаплотипом В способны активировать NK-клетки [26].

У женщин с привычными потерями беременности и частыми неудачами ЭКО, как правило, наблюдается низкое соотношение ингибирующих KIR и активирующих KIR на NK-клетках [27]. Результаты данных исследований свидетельствуют о значимости KIR и системы неклассических HLA-антигенов во взаимодействии и балансе активации и ингибирования активности NK-клеток для успешного осуществления процесса имплантации [28].

Важную роль в плодово-материнских взаимоотношениях играют рецепторы KIR2DL4 на поверхности NK-клеток, способные передавать им как активирующие, так и ингибирующие сигналы. Множественность функций взаимодействия KIR2DL4 с HLA-G играет важную роль при беременности. Подтверждением этому могут служить высокие уровни экспрессии KIR2DL4 маточными NK-клетками женщин с нормальным течением беременности по сравнению с уровнем экспрессии NК-клеток женщин с привычным выкидышем.

Таким образом, для оценки роли совпадений супружеских аллелей HLA-антигенов как риска RIF также необходимо проведение дальнейших исследований.

Иммунотерапия в преодолении RIF

В настоящее время отсутствует единая точка зрения на целесообразность использования различных видов иммунотерапии у женщин с неудачами имплантации в анамнезе.

Необходимость проведения иммунизации отцовскими лимфоцитами (LIT), часто использующейся в клинической практике, как предполагалось ранее, в настоящее время подвергается сомнению из-за возможных побочных эффектов для матери и плода в связи с непредсказуемым иммунным ответом как к аутологичным, так и к аллогенным компонентам крови [29].

Другим распространенным методом преодоления RIF является внутривенное введение иммуноглобулина (IVIg), которое широко используется с 90-х годов прошлого столетия, несмотря на разноречивые результаты о пользе применения этого метода. Результаты систематического обзора C. Coulam и B. Acacio (2012) показали, что IVIg повышает частоту родов у пациенток с иммунными нарушениями [30]. Однако мультицентровое рандомизированное плацебо-контролируемое исследование не показало существенных преимуществ IVIg при привычном невынашивании беременности [31]. Аналогично в двойном слепом плацебо-контролируемом исследовании у 51 пары с RIF не продемонстрировано повышения частоты родов живым плодом после использования IVIg [6]. Таким образом, отсутствуют объективные данные о преимуществах использования IVIg у женщин с RIF.

Для преодоления RIF используют также интралипид – жировую эмульсию, которая подавляет аномальную активность в периферических NK-клетках женщин с RIF как in vitro, так и in vivo. Точный механизм модуляции иммунной системы интралипидом не ясен, однако полагают, что жирные кислоты в эмульсии служат лигандами для активации пролиферирующих активирующих рецепторов (PPARs), экспрессируемых NK-клетками. Активация этих ядерных рецепторов, как было показано, снижает NK-цитотоксичную активность, что приводит к повышению частоты имплантации и пролонгированию беременности. Возможность интралипида модулировать иммунную систему и позитивно влиять на имплантацию и пролонгирование беременности показана в единичных работах [32], поэтому необходимы дальнейшие исследования, прежде чем вводить терапию интралипидом при RIF в рутинную практику.

Обсуждается возможность положительного эффекта локального повреждения эндометрия (scratching) на имплантацию у женщин с RIF.

A. Barash и соавт. (2003) [33] впервые у пациенток с одной или двумя неудачами программы ЭКО проводили пайпель-биопсию эндометрия по крайней мере 4 раза в течение менструального цикла, предшествующего программе ЭКО. Установлено, что после локального повреждения эндометрия частота наступления беременности была существенно выше у пациенток с неудачами имплантации в анамнезе по сравнению с группой пациенток, у которых беременность наступила в первой попытке ЭКО (66,7% и 30,3%, р<0,05) [33]. В последующих работах также продемонстрирован положительный эффект локального повреждения эндометрия у пациенток с RIF [34–36]. S. Narvekar и соавт. (2010) [37], предложили проводить биопсию эндометрия дважды: в фазу пролиферации (7–10-й день менструального цикла) и фазу секреции (24–25-й день менструального цикла) перед планируемой программой ЭКО. В 2012 году группа авторов показала, что даже однократное проведение биопсии эндометрия на 5–7-й день менструального цикла перед проведением переноса эмбриона приводит к значительному повышению частоты наступления клинической беременности [38]. Механизм позитивного влияния локального повреждения эндометрия у пациенток с RIF не ясен. Обсуждаются следующие гипотезы: scratching 1) индуцирует децидуализацию эндометрия, что повышает вероятность имплантации; 2) увеличивает секрецию цитокинов, интерлейкинов, факторов роста, макрофагов и дендритных клеток, необходимых для имплантации; 3) нивелирует неблагоприятное влияние на эндометрий овариальной стимуляции в лечебном цикле и задерживает ускоренное созревание эндометрия, что способствует лучшей синхронизации между эндометрием и эмбрионом.

С целью повышения вероятности имплантации в программе ЭКО предпринимаются попытки воздействия на эндометрий путем введения в полость матки гранулоцитарного колониестимулирующего фактора (G-CSF).

N. Lédée и соавт. (2011) [39] определяли прогностическую роль концентрации ряда различных цитокинов и факторов роста в фолликулярной жидкости пациенток, проходивших ЭКО в естественном цикле, и установили, что высокий уровень G-CSF является важным и достоверным прогностическим фактором наступления беременности и родов [39].

Gleicher и соавт. (2011) показали, что внутриматочное введение G-CSF повышало толщину эндометрия до 7 мм и более и привело к наступлению беременности у 4 пациенток с RIF и тонким эндометрием, ранее резистентным к препаратам эстрогенов и вазодилататоров, что свидетельствовало о повышении вероятности имплантации при использовании этого метода [40].

В исследовании W. Würfel и соавт. (2010) использование G-CSF у пациенток с RIF показало преимущества этого метода только у женщин с дефицитом активации генов KIR [41]. У этих пациенток нарушено взаимодействие между трофобластом и NK-клетками эндометрия через экспрессию HLA-C, что приводит к неудачам имплантации или выкидышу. Несмотря на результаты исследования L. Schlahsa и соавт. (2011) [42], показавшего, что G-CSF может быть мощным ингибитором NK-клеточной активности, влияние G-CSF на NK-клетки не вполне ясно.

Результаты систематического обзора 170 исследований показали эффективность использования G-CSF у пациенток с RIF, однако авторы обзора рекомендуют проведение дальнейших исследований, чтобы оценить целесообразность использования этого метода иммунотерапии при RIF [43].

Также с целью повышения вероятности имплантации в программе ЭКО обсуждается целесообразность использования кортикостероидных препаратов. В мета-анализе Boomsma и соавт. (2012), включавшем 13 исследований (1759 циклов), не выявлено явных доказательств, что использование кортикостероидов повышает вероятность имплантации в программе ЭКО [44]. Выявленное пограничное повышение частоты наступления беременности свидетельствовало о включении в исследования пациенток с иммунными нарушениями, которые могли быть устранены с помощью иммуносупрессивной терапии. Недостатками анализируемых работ авторы считали использование протоколов кортикостероидной терапии с различными препаратами (от преднизолона, метилпреднизолона и дексаметазона до гидрокортизона в комбинации с преднизолоном), дозами и длительностью применения кортикостероидов. В связи с этим в настоящее время отсутствует единое мнение об эффективности и целесообразности использования кортикостероидов при RIF [44].

В исследовании Nakagawa и соавт. (2015) [45] было показано, что иммуносупрессивная терапия такролимусом повышает частоту наступления беременности у пациенток с RIF и повышенным соотношением Th1 и Th2-цитокинов, однако это единственная работа, не позволяющая сделать окончательный вывод о возможности использования иммунодепрессанта такролимус у женщин с RIF [45].

Одним из новых методов иммунокоррекции при RIF является внутриматочное введение аутологичных мононуклеарных клеток периферической крови (МПК) в программе ЭКО.

Суть метода заключается в том, что МПК изолируют от пациентки и инкубируют с хорионическим гонадотропином человека (ХГч), чтобы активировать их в течение 2 дней. После этого активированные МПК вводят в полость матки для индукции дифференциации эндометрия. Через три дня производят перенос эмбриона на стадии бластоцисты в полость матки. Использование этого метода у пациенток с повторными неудачами имплантации в анамнезе повышало частоту имплантации и частоту клинической беременности [46]. Позднее было показано, что внутриматочное введение МПК без инкубации с ХГч также улучшает частоту имплантации в криоциклах, как с гормональной подготовкой, так и в естественном цикле у женщин, имеющих до 3 неудач имплантации в анамнезе [47].

Обсуждаются несколько механизмов действия данного вида лечения. Во-первых, МПК могут индуцировать дифференциацию эндометрия, что повышает вероятность имплантации эмбриона [48]. Во-вторых, хотя МПК и являются аутологичными клетками, они индуцируют воспалительные реакции в полости матки in vivo [49]. В-третьих, МПК могут секретировать протеазы, которые эффективно влияют на функцию и структуру поверхностных молекул, экспрессируемых на люминальных эпителиальных клетках эндометрия [49]. В-четвертых, МПК перемещаются из полости матки по направлению к строме, тем самым «указывая» путь для последующего прикрепления эмбриона и инвазии [50].

Наконец, МПК, активированные ХГч, вносят вклад в создание благоприятного иммунного микроокружения для имплантации за счет повышения иммунной толерантности, которая таким образом может быть индуцирована к наполовину чужеродному эмбриону [50].

Основанием для использования активаторов МПК стали данные о том, что ХГч усиливает продукцию цитокинов МПК, повышая имплантационные свойства эндометрия [51, 52].

Также было показано, что кортикотропин-рилизинг гормон (КтРГ) играет ключевую роль в стимуляции децидуализации эндометрия и формировании иммунологической толерантности иммунной системы матери к отцовским антигенам плода, индуцирует экспрессию Fas-лиганда (FasL), запуская апоптоз на активированных Fas-позитивных T-клетках [9]. Стимулирующее влияние МПК, активированных КтРГ, может быть обусловлено тем, что КтРГ является провоспалительным медиатором с максимальной экспрессией в период имплантации [53]. Поскольку имплантация характеризуется асептическим воспалением [54], КтРГ путем локального воздействия на эндометрий повышает способность к имплантации через асептическое воспаление [55], индуцируя децидуализацию эндометриальных стромальных клеток и усиливая эффекты прогестерона [56]. Данные результаты подтверждают целесообразность использования аутологичных МПК, обработанных ХГч и КтРГ, для внутриматочного введения при лечении женщин с RIF. Однако требуется дальнейшее проведение рандомизированных контролируемых испытаний для объективной оценки целесообразности проведения данного вмешательства.

Заключение

Таким образом, несмотря на положительные результаты единичных исследований о влиянии иммуномодулирующей терапии МПК на эффективность программы ЭКО, не изучена эффективность и механизм действия данного метода преодоления RIF. Сложный процесс имплантации бластоцисты включает в себя скоординированные во времени и пространстве эффекты многочисленных эндокринных и иммунных факторов. Имеются существенные доказательства, что нарушение экспрессии неклассических молекул HLA, дисбаланс цитокинов, а также изменение в количестве и активности NK-клеток, возможно, вносят свой вклад в нарушения репродуктивной функции. Более полное представление о гормональной модуляции иммунного микроокружения эндометрия позволит разработать новые персонифицированные терапевтические подходы для предотвращения RIF.

Список литературы

1. Coughlan C., Ledger W., Wang Q., Liu F., Demirol A., Gurgan T. et al. Recurrent implantation failure: definition and management. Reprod. Biomed. Online. 2014; 28(1): 14-38.

2. Simon A., Laufer N. Repeated implantation failure: clinical approach. Fertil. Steril. 2012; 97(5): 1039-43.

3. Makrigiannakis A., BenKhalifa M., Vrekoussis T., Mahjub S., Kalantaridou S.N., Gurgan T. repeated implantation failure: a new potential treatment option. Eur. J. Clin. Invest. 2011; 45(4): 380-4.

4. Blois S., Klapp B.F., Barrientos G. Decidualization and angiogenesis in early pregnancy: unravelling the functions of DC and NK cells. Reprod. Immunol. 2011; 88(2): 86-92.

5. Gellersen B., Brosens I.A., Brosens J.J. Decidualization of the human endometrium: mechanisms, functions, and clinical perspectives. Semin. Reprod. Med. 2007; 25(6): 445-53.

6. Stephenson M.D., Fluker M.R. Treatment of repeated unexplained in vitro fertilization failure with intravenous immunoglobulin: a randomized, placebo controlled Canadian trial. Fertil. Steril. 2000; 74(6): 1108-13.

7. Makrigiannakis A., Zoumakis E., Kalantaridou S., Coutifaris C., Margioris A.N., Coukos G. et al. Corticotropin-releasing hormonepromotes blastocyst implantation and early maternal tolerance. Nat. Immunol. 2001; 2(11): 1018-24.

8. Trowsdale J., Moffett A. NK receptor interactions with MHC class I molecules in pregnancy. Semin. Immunol. 2008; 20(6):317-20.

9. Nowak I., Malinowski A., Tchórzewski H., Barcz E., Wilczynski J. R., Grybos M. et al. Frequencies of killer immunoglobulin-like receptor genotypes influence susceptibility to spontaneous abortion. J. Appl. Genet. 2009; 50(4): 391-8.

10. Cooper M.A., Fehniger T.A., Caligiuri M.A. The biology of human natural killer-cell subsets. Trends Immunol. 2001; 22(11): 633-40.

11. Moffett A., Regan L., Braude P. Natural killer cells, miscarriage, and infertility. BMJ. 2004; 329(7477): 1283-5.

12. Bulmer J.N., Lash G.E. Human uterine natural killer cells: a reappraisal. Mol. Immunol. 2005; 42(4): 511-21.

13. Matteo M.G., Greco P., Rosenberg P., Mestice A., Baldini D., Falagario T. et al. Normal percentage of CD56bright natural killer cells young patients with a history of repeated unexplained implantation failure after in vitro fertilization cycles. Fertil. Steril. 2007; 88(4): 990-3.

14. Fukui A., Fujii S., Yamaguchi E., Kimura H., Sato S., Saito Y. Natural killer cell subpopulations and cytotoxicity for infertile patients undergoing in vitro fertilization. Am. J. Reprod. Immunol. 1999; 41(6): 413-22.

15. Raghupathy R., Makhseed M., Azizieh F., Omu A., Gupta M., Farhat R. Cytokine production by maternal lymphocytes during normal human pregnancy and in unexplained recurrent spontaneous abortion. Hum. Reprod. 2000; 15(3): 713-8.

16. Wira C.R., Grant-Tschudy K.S., Crane-Godreau M.A. Epithelial cells in the female reproductive tract: a central role as sentinels of immune protection. Am. J. Reprod. Immunol. 2005; 53(2): 65-76.

17. Dey S.K., Lim H., Das S.K., Reese J., Paria B.C., Daikoku T., Wang H. Molecular cues to implantation. Endocr. Rev. 2004; 25(3): 341-73.

18. Kalu E., Bhaskaran S., Thum M.Y., Vishwanatha R., Croucher C., Sherriff E. et al. Serial estimation of Th1:th2 cytokines profile in women undergoing in-vitro fertilization-embryo transfer. Am. J. Reprod. Immunol. 2008; 59(3): 206-11.

19. Saito S., Nakashima A., Shima T., Ito M. Th1/Th2/Th17 and regulatory T-cell paradigm in pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 2010; 63(6): 601-10.

20. Aluvihare V.R., Kallikourdis M., Betz A.G. Regulatory T cells mediate maternal tolerance to the fetus. Nat. Immunol. 2004; 5(3): 266-71.

21. Arruvito L., Sanz M., Banham A.H., Fainboim L. Expansion of CD4+CD25+ and FOXP3+ regulatory T cells during the follicular phase of the menstrual cycle: implications for human reproduction. J. Immunol. 2007; 178(4): 2572-8.

22. Jasper M.J., Tremellen K.P., Robertson S.A. Primary unexplained infertility is associated with reduced expression of the T-regulatory cell transcription factor Foxp3 in endometrial tissue. Mol. Hum. Reprod. 2006; 12(5):301-8.

23. Lu Y., Zhang F., Zhang Y., Zeng B., Hu L., Liao A. Quantitative reduction of peripheral CD4+ CD25+ FOXP3+ regulatory T cells in reproductive failure after artificial insemination by donor sperm. Am. J. Reprod. Immunol. 2013; 69(2): 188-93.

24. Lashley L.E., van der Keur C., van Beelen E., Schaap R., van der Westerlaken L.A., Scherjon S.A., Claas F.H. Stronger T – cell alloreactivity and diminished suppressive capacity of peripheral regulatory T cells in infertile women undergoing in vitro fertilization. Am. J. Reprod. Immunol. 2015; 74(3): 268-78.

25. Hunt J.S., Andrews G.K., Wood G.W. Normal trophoblasts resist induction of class I HLA. J. Immunol. 1987; 138(8): 2481-7.

26. Bashirova A.A., Martin M.P., McVicar D.W., Carrington M. The killer immunoglobulin-like receptor gene cluster: tuning the genome for defense. Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 2006; 7: 277-300.

27. Hiby S.E., Regan L., Lo W., Farrell L., Carrington M., Moffett A. Association of maternal killer-cell immunoglobulin-like receptors and parental HLA-C genotypes with recurrent miscarriage. Hum. Reprod. 2008; 23(4): 972-6.

28. Varla-Leftherioti M., Keramitsoglou T., Spyropoulou-Vlachou M., Papadimitropoulos M., Kontopoulou-Antonopoulou V., Tsekoura C. et al. 14th International HLA and Immunogenetics Workshop: report from the reproductive immunology component. Tissue Antigens. 2007; Suppl. 1: 297-303.

29. Tanaka T., Umesaki N., Nishio J., Maeda K., Kawamura T., Araki N. et al. Neonatal thrombocytopenia induced by maternal anti-HLA antibodies: a potential side effect of allogenic leukocyte immunization for unexplained recurrent aborters. J. Reprod. Immunol. 2000; 46: 51-7.

30. Coulam C.B., Acacio B. Does immunotherapy for treatment of reproductive failure enhance live births. J. Reprod. Immunol. 2012; 67(4): 296-304.

31. Stephenson M.D., Kutteh W.H., Purkiss S., Librach C., Schultz P., Houlihan E. et al. Intravenous immunoglobulin and idiopathic secondary recurrent miscarriage:a multicentered randomized placebocontrolled trial. Hum. Reprod. 2010; 25(9): 2203-9.

32. Shreeve N., Sadek K. Intralipid therapy for recurrent implantation failure: new hope or false dawn. J. Reprod. Immunol. 2012; 93: 38-40.

33. Barash A., Dekel N., Fieldust S., Segal I., Schechtman E., Granot I. Local injury to the endometrium doubles the incidence of successful pregnancies in patients undergoing in vitro fertilization. Fertil. Steril. 2003; 79(6): 1317-22.

34. Karimzadeh M.A., Ayazi Rozbahani M., Tabibnejad N. Endometrial local injury improves the pregnancy rate among reccurent implantation failure patients undergoing in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection: a randomised clinical trial. Aust. N. Z. J. Obstet. Gynecol. 2009; 49(6): 677-80.

35. Zhou L., Li R., Wang R., Huang H.X., Zhong K. Local injury to the endometrium in controlled ovarian hyperstimulation cycles improves implantation rates. Fertil. Steril. 2008; 89(5): 1166-76.

36. Raziel A., Schachter M., Strassburger D., Bern O., Ron-El R., Friedler S. Favorable influence of local injury to the endometrium in intracytoplasmic sperm injection patients with high-order implantation failure. Fertil. Steril. 2007; 87(1): 198-201.

37. Narvekar S.A., Gupta N., Shetty N., Kottur A., Srinivas M., Rao K.A. Does local endometrial injury in the nontransfer cycle improve the IVF-ET outcome in the subsequent cycle in patients with previous unsuccessful IVF? A randomized con-trolled pilot study. J. Hum. Reprod. Sci. 2010; 3(1): 15-9.

38. Shohayeb A., El-Khayat W. Does a single endometrial biopsy regimen (S-EBR) improve ICSI outcome in patients with repeated implantation failure? A randomised controlled trial. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2012; 164(2): 176-9.

39. Ledee N., Munaut C., Aubert J., Serazin V., Rahmati M., Chaouat G., Sandra O., Foidart J.M. Specific and extensive endometrial deregulation is present before conception in IVF/ICSI repeated implantation failures (IF) or recurrent miscarriages. J. Pathol. 2011; 225(4): 554-64.

40. Gleicher N., Vidali A., Barad D.H. Successful treatment of unresponsive thin endometrium. Fertil. Steril. 2011; 95(6): 2123. e13-7.

41. Würfel W., Santjohanser C., Hirv K., Bühl M., Meri O., Laubert I. et al. High pregnancy rates with administration of granulocyte colony-stimulating factor in ART-patients with repetitive implantation failure and lacking killer-cell immunglobulin-like receptors. Hum. Reprod. 2010; 25(8):2151-2.

42. Schlahsa L., Jaimes Y., Blasczyk R., Figueiredo C. Granulocytecolony- stimulatory factor: a strong inhibitor of natural killer cell function. Transfusion. 2011; 51(2): 293-305.

43. Cavalcante M.B., Costa Fda S., Barini R., Araujo Júnior E. Granulocyte colony-stimulating factor and reproductive medicine: a review. Iran. J. Reprod. Med. 2015; 13(4): 195-202.

44. Boomsma C.M., Kavelaars A., Eijkemans M.J., Lentjes E.G., Fauser B.C., Heijnen C.J., Macklon N.S. Endometrial secretion analysis identifies a cytokine profile predictive of pregnancy in IVF. Hum. Reprod. 2012; 24(6): 1427-35.

45. Nakayama T., Fujiwara H., Maeda M., Inoue T., Yoshioka S., Mori T., Fujii S. Human peripheral blood mononuclear cells (PBMC) in early pregnancy promote embryo invasion in vitro: HCG enhances the effects of PBMC. Hum. Reprod. 2015; 17(1): 207-12.

46. Yoshioka S., Fujiwara H., Nakayama T., Kosaka K., Mori T., Fujii S. Intrauterine administration of autologous peripheral blood mononuclear cells promotes implantation rates in patients with repeated failure of IVF-embryo transfer. Hum. Reprod. 2006; 21(12): 3290-4.

47. Okitsu O., Kiyokawa M., Oda T., Miyake K., Sato Y., Fujiwara H. Intrauterine administration of autologous peripheral blood mononuclear cells increases clinical pregnancy rates in frozen/thawed embryo transfer cycles of patients with repeated implantation failure. J. Reprod. Immunol. 2011; 92: 82-7.

48. Fujiwara H., Sato Y., Ideta A., Aoyagi Y., Araki Y., Imakawa K. Immune regulation of human embryo implantation by circulating blood cells. In: Yamada S., ed. The human embryo. Croatia: InTech; 2012: 61-72.

49. Imakawa K., Bai R., Fujiwara H., Kusama K. Conceptus implantation and placentation: molecules related to epithelial-mesenchymal transition, lymphocyte homing, endogenous retroviruses, and exosomes. Reprod. Med. Biol. 2015; 14: 1-11.

50. Schumacher A., Heinze K., Witte J., Poloski E., Linzke N., Woidacki K., Zenclussen A.C. Human chorionic gonadotropin as a central regulator of pregnancy immune tolerance. J. Immunol. 2013; 190(6): 2650-8.

51. Kosaka K., Fujiwara H., Tatsumi K., Yoshioka S., Higuchi T., Sato Y. et al. Human peripheral blood mononuclear cells enhance cell-cell interaction between human endometrial epithelial cells and BeWo-cell spheroids. Hum. Reprod. 2003; 18: 19-25.

52. Li R., Hao G. Local injury to the endometrium: its effect on implantation. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2009; 21(3): 236-9.

53. Makrigiannakis A., Margioris A.N., Le Goascogne C., Zoumakis E., Nikas G., Stournaras C. et al. Corticotropin-releasing hormone (CRH) is expressed at the implantation sites of early pregnant rat uterus. Life Sci. 1995; 57(20): 1869-75.

54. Mor G., Romero R., Aldo P.B., Abrahams V.M. Is the trophoblast an immune regulator? The role of Toll-like receptors during pregnancy. Crit. Rev. Immunol. 2005; 25(5): 375-88.

55. Gnainsky Y., Granot I., Aldo P.B., Barash A., Or Y., Schechtman E. et al. Local injury of the endometrium induces an inflammatory response that promotes successful implantation. Fertil. Steril. 2010; 94(6): 2030-6.

56. Makrigiannakis A., Margioris A.N., Chatzaki E., Zoumakis E., Chrousos G.P., Gravanis A. The decidualizing effect of progesterone may involve direct transcriptional activation of corticotrophin-releasing hormone from human endometrial stromal cells. Mol. Hum. Reprod. 1999; 5(9): 789-96.

Поступила 26.08.2016

Принята в печать 02.09.2016

Об авторах / Для корреспонденции

Амян Татьяна Сергеевна, аспирант 1-го года обучения отделения сохранения и восстановления репродуктивной функции ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (926) 163-28-33. E-mail: amyantanya@rambler.ru
Перминова Светлана Григорьевна, д.м.н., в.н.с. отделения сохранения и восстановления репродуктивной функции ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (916) 202-16-87. E-mail: perisvet@list.ru
Кречетова Любовь Валентиновна, к.м.н., с.н.с., зав. лабораторией лаборатории клинической иммунологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-11-83. E-mail: k_l_v_@mail.ru
Вторушина Валентина Валентиновна, к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-11-83. E-mail: vtorushina@inbox.ru
Митюрина Елена Викторовна, к.м.н., врач отделения сохранения и восстановления репродуктивной функции ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Для цитирования: Амян Т.С., Перминова С.Г., Кречетова Л.В.,
Вторушина В.В., Митюрина Е.В. Иммунологические аспекты повторных неудач имплантации в программе экстракорпорального оплодотворения.
Акушерство и гинекология. 2017; 1: 5-12.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.1.5-12

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.