Экспрессия плацента-специфичных микроРНК при задержке роста плода

Буштырева И.О., Кузнецова Н.Б., Забанова Е.А., Бутенко Е.В., Покудина И.О., Шкурат Т.П.

1) ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, Ростов-на-Дону, Россия; 2) ГБУ РО «Перинатальный центр», Ростов-на-Дону, Россия; 3) ООО «Клиника профессора Буштыревой», Ростов-на-Дону, Россия; 4) ФГАОУ ВО «Южный федеральный университет», Ростов-на-Дону, Россия
Цель. Проведение анализа экспрессии плацента-специфичных микроРНК у беременных с задержкой роста плода (ЗРП) и с физиологически протекающей беременностью.
Материалы и методы. В исследование включены 42 женщины в сроке гестации 30–34 недель
(27 с ЗРП и 15 с неосложненной беременностью), сопоставимые по возрасту, антропометрическим характеристикам, особенностям акушерско-гинекологического анамнеза и сопутствующим забо­леваниям. У всех беременных с ЗРП отмечались проявления фетоплацентарной недостаточности различной степени выраженности. Пациенткам был выполнен забор периферической венозной крови и определена экспрессия восьми микроРНК при помощи полимеразной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени (микроРНК-10b-5p, микроРНК-145-5р, микроРНК-122-5р, микроРНК-141-3р, микроРНК-125b-5р, микроРНК 205-5р, микроРНК-210-3р, микроРНК-517-5р). Оценку изменения уровня экспрессии микроРНК проводили с помощью ∆CТ метода.
Результаты. Установлено, что в крови беременных с ЗРП экспрессия микроРНК-125b-5p статистически значимо (р=0,011) ниже (12,3 (8,9; 3,8)), чем у женщин с физиологически протекающей беременностью (8,1 (6,6;9,1)). Степень изменения экспрессии (Fold change) для микроРНК-125b-5р составила 5,25.
Заключение. Полученные результаты свидетельствуют об изменении уровня экспрессии микроРНК-125b-5р у беременных с ЗРП по сравнению с женщинами, чья беременность протекает неосложненно. Роль микро РНК-125b-5р в генезе ЗРП можно объяснить способностью данной микроРНК влиять на эндотелий сосудов, включая сосудистую сеть плаценты, нарушая процессы эндотелий-зависимой релаксации, ангиогенеза, пролиферации эндотелиоцитов и другие функции, включая регуляцию адгезии и агрегации тромбоцитов.

Ключевые слова

микроРНК
задержка роста плода
плацента
осложнения беременности
эпигенетическая регуляция

Задержка роста плода (ЗРП) – это осложнение беременности, которое проявляется неспособностью плода достигнуть своего генетически детерминированного потенциала роста и сопряжено с риском неблагоприятных исходов для плода [1]. Этиологические факторы ЗРП можно разделить на причины, связанные со здоровьем матери (хронические экстрагенитальные заболевания, осложнения беременности, табакокурение и др.), с состоянием плода (хромосомные аберрации, внутриутробные инфекции, врожденные аномалии развития) и с нарушениями структуры и функции плаценты и пуповины. Именно на долю плацента-обусловленных состояний приходится наибольшее число случаев развития ЗРП [2].

МикроРНК относятся к семейству небольших некодирующих РНК (в среднем 18–25 нуклеотидов), которые регулируют экспрессию генов на посттранскрипционном уровне путем деградации или блокирования трансляции таргетной матриксной РНК (мРНК) [3]. Впервые описанные в 1993 г. как эндогенные медиаторы у C. elegans, сейчас микроРНК изучены более подробно; определена роль данного семейства РНК в клеточной дифференцировке, пролиферации, апоптозе, нормальном и патологическом развитии, поддержании гомеостаза [4].

Являясь модуляторами множества биологических процессов, микроРНК имеют широкий круг применения в клинической диагностике. Так, при многих заболеваниях и патологических состояниях достоверно установлено изменение активности микроРНК, играющее критическую роль в изменении экспрессии генов; особенно хорошо разработано это направление в онкологии [5]. МикроРНК могут служить ранними маркерами того или иного заболевания или осложнения, предикторами адекватного либо недостаточного ответа на лечебное воздействие, а в перспективе – могут получить применение в качестве самостоятельного терапевтического агента, действуя на причины заболевания на эпигенетическом уровне [6].

Ключевым моментом в понимании роли микроРНК является знание нормального профиля и уровня экспрессии этих биологических регуляторов в различных тканях. В основном микроРНК не обладают высоким уровнем тканеспецифичности; тем не менее, имеются данные о множестве различных микроРНК, экспрессия которых преобладает в определенных тканях [7, 8].

Вариабельность микроРНК в образцах различных тканей широко исследуется как в норме, так и при патологических изменениях.

Так как во многих случаях ЗРП обусловлена плацентарной недостаточностью, логично предположить, что те микроРНК, которые специфичны для плаценты, могут играть ключевую роль в развитии данного осложнения беременности, нарушая биологические процессы, необходимые для нормального развития и функционирования плаценты [9]. Плацента-специфичные микроРНК впервые были выделены в 2007 г. методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР-РВ) [10, 11]. Они принимают участие в огромном числе необходимых функций, включая обеспечение иммунологической толерантности и ангиогенеза [12]. В настоящее время известно более 500 микроРНК, связанных с формированием и функционированием плаценты [13]. Предполагается, что изменение экспрессии микроРНК в трофобластах может быть ассоциировано с развитием плацентарной недостаточности и обусловленных ею осложнений беременности [11].

Итак, целью настоящего исследования было определение роли микроРНК в генезе ЗРП, вызван­ной плацентарной недостаточностью.

Материалы и методы

Формирование клинических групп пациентов

В исследование были включены беременные, наблюдающиеся в ГБУ Ростовской области «Перинатальный центр» (основная группа) и ООО «Клиника профессора Буштыревой» (контрольная группа) в 2017–2018 гг. Сформировано две группы: первую группу составили 27 пациенток, чья беременность осложнилась ЗРП, во вторую (контрольную) группу вошли 15 женщин с неосложненным течением беременности. Критериями исключения стали: наличие многоплодной беременности, врожденных пороков развития и хромосомных аберраций, индуцированная беременность (применение вспомогательных репродуктивных технологий).

Женщины, включенные в исследование, были сопоставимы по возрасту, исходному индексу массы тела, особенностям акушерско-гинекологического анамнеза и сопутствующим заболеваниям. Забор крови проводился с информированного добровольного согласия пациенток, однократно, в сопоставимые сроки: в первой группе анализ крови взят в 33,1 (32,4;33,6) недели беременности (Me (Q1;Q3)); во второй группе – в 32,9 (31,2;33,4) недели (p=0,358).

Диагноз ЗРП выставлялся на основании данных ультразвукового и допплерометрического исследования с использованием перцентильных кривых (кривые роста Фентона для недоношенных мальчиков и девочек) [14]. Расчет предполагаемой массы плода проводился с применением формулы Хэдлока 2:

m=10exp×(1,335-0,0034×AC×FL+0,0316×BPR+0,0457×AC+0,1623×FL),

где BPR – бипариетальный размер головки; АС – окружность живота; FL – длина бедра.

Беременным с ЗРП проводился мониторинг внутриутробного состояния плода с использованием допплерометрического исследования (пульсационный индекс артерии пуповины и маточных артерий; при обнаружении «критических» нарушений фетоплацентарного кровотока исследовалась также гемодинамика в венозном протоке) и кардиотокографии.

У 25 беременных первой группы (92,6%) была диагностирована поздняя ЗРП; диагноз установлен в среднем в 33,1 (32,2;34,8) недели беременности. У всех беременных с ЗРП в той или иной степени отмечались проявления фетоплацентарной недостаточности: прежде всего повышение пульсационного индекса в артерии пуповины более 95%; реже отмечались признаки централизации кровотока – цереброплацентарное отношение менее 5-го процентиля; у троих (11,1%) женщин выявлены «критические» нарушения фетоплацентарной гемодинамики (нулевой либо реверсный конечно-диастолический кровоток в артерии пуповины). У 7 пациенток (25,9%), вошедших в первую группу, уже после забора крови в рамках данного исследования беременность осложнилась также преэклампсией (у 2 женщин из 7 – тяжелой степени).

26 женщин первой группы (96,3%) были родоразрешены преждевременно, в среднем в 35,0 (34,3;36,0) недели беременности, у 23 выполнялось кесарево сечение (85,2%). Основными показаниями для родоразрешения была декомпенсация фетоплацентарной недостаточности и нарастание степени тяжести преэклампсии. Беременности пациенток из контрольной группы завершены в доношенном сроке, в среднем в 39,3 (38,5;40,2) недели беременности. Большинство пациенток – 12 человек (80%) – были родоразрешены через естественные родовые пути.

Выделение микроРНК

Для анализа были отобраны микроРНК, которые в соответствии с литературными данными могут быть отнесены к плацента-специфичным: микроРНК-10b-5p, микроРНК-145-5р, микроРНК-122-5р, микроРНК-141-3р, микроРНК-125b-5р, микроРНК 205-5р, микроРНК-210-3р, микроРНК-517-5р.

Забор периферической венозной крови для исследования проводили натощак, в утренние часы, в пробирку со стабилизатором РНК Tempus™ Blood RNA (Applied Biosystems, США) в количестве 3 мл. Образцы крови замораживали и хранили при -20°С до проведения исследований. Чтобы избежать деградации, образцы размораживали только один раз.

Экстракцию тотальной РНК проводили при помощи набора реагентов GeneJET Stabilized and Fresh Whole Blood RNA Kit (Thermo Scientific, США). Количество и качество выделенной РНК оценивали спектрофотометрически. OD260/280 образцов РНК колебалось от 1,80 до 2,00. Образцы были нормализованы до концентрации тотальной РНК 10 нг/мкл.

Полиаденилирование тотальной РНК проводили при помощи poly(A) полимеразы E. coli (New England Biolabs, Великобритания) при 37°С 20 минут в объеме 20 мкл. Состав смеси: 15,6 мкл тотальной РНК (10 нг/мкл), 2 мкл poly(A) буфера, 2 мкл АТФ, 0,4 мкл poly(A) полимеразы.

Тотальную полиаденилированную РНК подвергали обратной транскрипции в кДНК c использованием набора реактивов MMLV RT kit («Евроген», Россия), в 20 мкл реакционной смеси следующего состава: 5 мкл поли-А РНК, 1 мкл RT-праймера, 0,5 мкл обратной транскриптазы MMLV, 4 мкл (5Х) реакционного буфера, 2 мкл dNTP, 2 мкл DTT, 4,5 мкл H2O. Реакцию обратной транскрипции проводили при 40°С в течение 40 минут, после чего – при 70°С в течение 10 минут.

Дизайн прямых и обратных праймеров для проведения ПЦР-РВ проводили в соответствии с методикой Baccels [15, 16]. Последовательности праймеров приведены в таблице 1.

131-1.jpg (290 KB)

Реакция ПЦР-РВ была проведена на амплификаторе CFX-96 (Bio-Rad, США) c использованием реагентов фирмы «Евроген» (Россия) в объеме 25 мкл. Состав смеси: qPCRmix-HS SYBR – 5 мкл, 1 мкл прямого праймера, 1 мкл обратного праймера, 16 мкл Н2О, 2 мкл кДНК. Условия для проведения ПЦР: предварительная денатурация 95°С 5 минут, далее 95°С 15 с, 60°С 10 с, 72°С 20 с, 45 циклов. В качестве красителя был использован SYBR Green I.

Оценку изменения уровня экспрессии исследуемой микроРНК в опытном образце по отношению к контрольному проводили с помощью ∆Ct метода [17].

Статистический анализ

Статистическая обработка полученных данных проведена с помощью пакета прикладных программ IBM SPSS Statistics 21, с использованием статистического критерия Колмогорова–Смирнова для проверки гипотезы о принадлежности исследуемой выборки нормальному закону распределения. Поскольку все анализируемые данные не соответствовали нормальному закону распределения, статистическую значимость различий оценивали с помощью методов непараметрической статистики (U-критерий Манна–Уитни). Использовали общепринятый уровень статистической значимости p<0,05.

Результаты и обсуждение

В таблице 2 представлена экспрессия микроРНК у беременных с нормально протекающей беременностью и с ЗРП. Статистически значимые различия по концентрации получены только по микроРНК-125b-5p (p=0,011), экспрессия которой ниже при наличии ЗРП.

В нашем исследовании для проведения анализа отобрали микроРНК, которые, по данным литературы, можно отнести к плацента-специфичным в силу того, что именно плацентарная недостаточность является важным звеном патогенеза ЗРП. Полученные результаты свидетельствуют об изменении уровня экспрессии микроРНК-125b-5р у беременных с ЗРП по сравнению с женщинами, чья беременность протекает физиологически, неосложненно. Степень изменения уровня экспрессии микроРНК-125b-5р (fold change) составила 5,25.

Результаты, полученные в настоящем исследовании, можно проиллюстрировать следующими клиническими примерами.

Пример 1. Беременная П. была госпитализирована с поликлинического приема в ГБУ РО «Перинатальный центр» в отделение патологии беременности с жалобами на снижение двигательной активности плода (менее 5 шевелений в сутки в течение последних двух дней). По данным ультра­звукового исследования выявлена ЗРП I степени по асимметричному типу с нарушением фетоплацентарной гемодинамики. Диагноз при поступлении: Беременность 31 неделя 5 дней. Фето­плацентарная недостаточность, субкомпенсация, ЗРП. Хронический гастрит, ремиссия. Варикозная болезнь вен нижних конечностей, хроническая венозная недостаточность I ст.

Женщина была госпитализирована в стационар, наблюдалась и получала терапию в соответствии со стандартом оказания медицинской помощи. При лабораторном исследовании периферической венозной крови получены следующие показатели экспрессии микроРНК: ∆Ct микроРНК-26а-5р=13,1.

Беременность завершилась преждевременными оперативными родами в сроке гестации 33 недели 4 дня и рождением живого недоношенного ребенка с массой тела 1850 г, длиной 43 см, с оценкой по шкале Апгар 7/7 баллов. Диагноз новорожденного: недоношенность, задержка внутриутробного развития плода по гипотрофическому типу.

Пример 2. Пациентка З. находилась на амбулаторном обследовании в ГБУ РО «Перинатальный центр». Диагноз: Беременность 30 недель 3 дня. Отягощенный гинекологический анамнез (хронический аднексит). Дефицит массы тела.

При лабораторном исследовании периферической венозной крови получены следующие показатели экспрессии микроРНК: ∆Ct микроРНК-26а-5р=3,7.

При дальнейшем наблюдении, по данным ультразвуковых и допплерометрических исследований в течение беременности, состояние плаценты и плода оценивалось как нормальное, соответствующее сроку гестации, беременность завершилась срочными родами через естественные родовые пути в сроке 39–40 недель и рождением живого доношенного мальчика с массой тела 3100 г, ростом 50 см, оценкой по шкале Апгар 8/9 баллов. Диагноз ребенка при рождении: здоров.

МикроРНК-125b-5р у человека впервые была зарегистрирована в 2005 г. в клетках, недавно инфицированных герпесвирусом человека 8 типа, ассоциированным с саркомой Капоши [18]. С этого момента выполнено большое количество научных работ, связанных преимущественно с анализом участия микроРНК-125b-5р в онкологических заболеваниях.

Изменение уровня экспрессии микроРНК-125b-5р в различные сроки беременности было выявлено при исследовании ткани плаценты [19]. Экспрессия микроРНК-125b-5р динамически меняется в течение гестации, и она статистически значимо выше в трофобластах в III триместре беременности, чем в I триместре. Это может свидетельствовать об участии микроРНК-125b-5р в нормальном развитии плаценты на поздних сроках беременности, тогда как снижение ее экспрессии (что было выявлено в нашем исследовании) говорит о нарушении нормального формирования плаценты, предрасполагая к осложнениям беременности.

По данным многих авторов, микроРНК-125b-5р

можно отнести к группе «ангио-микроРНК», то есть к тем микроРНК, которые играют роль в процессе ангио­генеза, пролиферации эндотелиоцитов и других функциях [20, 21]. Одним из генов-мишеней, на который действует микроРНК-125b-5р, является EDN1, кодирующий эндотелин-1 [22]. Эндотелин-1 играет ключевую роль в поддержании гомеостаза кровеносных сосудов через высвобождение ионов кальция, приводя к вазоконстрикции, а также повышая адгезию и агрегацию тромбоцитов. МикроРНК-125b-5р является негативным регулятором, а значит, при снижении ее экспрессии уровень эндотелина-1 возрастает. Последующее развитие патологических процессов в эндотелиальных клетках обуславливает нарушение эндотелий-зависимой релаксации сосудов, в том числе в системе «мать-плацента-плод», вызывая плацентарную недостаточность, которая клинически реализуется в формирование ЗРП.

Полученные нами результаты расходятся с данными Гусар В.А. и соавт. в исследовании 2019 г. [23], выявившими повышенную экспрессию микроРНК-125b-5р в тканях плаценты женщин с ранней ЗРП. Наблюдаемые изменения могут быть обусловлены влиянием данной микроРНК на регуляцию сбалансированной работы про- и антиоксидантной системы путем повышения образования свободных радикалов [24]. Вероятно, противоречивые результаты обусловлены иным локусом (определялась экспрессия в ткани плаценты, а не циркулирующие в периферической крови микроРНК) и меньшим объемом выборки пациенток.

Роль микроРНК-125b-5р в генезе ЗРП исследовалась в 2015 г. Hromadnikova I. и соавт. Наряду с микроРНК-122-5p и микроРНК-195-5p, экспрессия микроРНК-125b-5р была статистически значимо (р=0,005) снижена в ткани плацент пациенток с ЗРП, потребовавшей родоразрешения до 34 недель гестации, в сравнении с беременными без осложнений, а также с беременными с преэклампсией, показав более высокую специфичность именно в отношении ЗРП [25]. В другом исследовании в 2016 г. этой группой ученых было продемонстрировано изменение уровня экспрессии микроРНК-125b-5р не только при ЗРП, но и при преэклампсии и гестационной артериальной гипертензии. В данной работе анализировалось изменение профиля плацента-специфичных микроРНК уже не в плацентарной ткани, а в периферической крови беременных женщин [26]. Предполагаемым механизмом, с помощью которого может быть опосредовано участие микроРНК-125b-5р в развитии гипертензивных расстройств и плацентарной недостаточности, приводящей к ЗРП, авторы считают гипоксию, эндотелиальную дисфункцию и нарушение ангиогенеза, что и было рассмотрено нами выше на примере эндотелина-1, а также изменения иммунного статуса беременной. По-видимому, эти процессы, действуя индивидуально, синергически или кумулятивно, приводят к нарушениям эпигенетического контроля в плаценте, в частности, к изменению профиля экспрессии микроРНК.

Заключение

Беременность – это сложный физиологический процесс, и мы только начинаем понимать функции микроРНК во время беременности. МикроРНК являются «дирижерами», регулирующими «включение» и «выключение» экспрессии генов, управляя всеми процессами, в том числе, в ходе развития беременности. Таким образом, сбои и нарушения в этом сложном, многоступенчатом механизме могут приводить к серьезным последствиям, обуславливая ряд осложнений беременности, включая ЗРП.

Наше исследование продемонстрировало изменения в профиле плацента-специфичных микроРНК при ЗРП. Роль микроРНК-125b-5р в генезе ЗРП, по-видимому, связана с влиянием на сосудистый гомеостаз и нарушением процессов эндотелий-зависимой релаксации сосудов, в том числе в гемодинамической системе «мать-плацента-плод», что обуславливает развитие плацентарной недостаточности. Учитывая важность микроРНК как диагностических и прогностических маркеров необходимы дальнейшие исследования, проясняющие конкретные механизмы влияния данных молекул на развитие осложнений беременности, что, несомненно, поможет раскрыть в более полной мере диагностический и терапевтический потенциал микроРНК.

Список литературы

  1. American College of Obstetricians and Gynecologists’ Committee on Practice Bulletins - Obstetrics and the Society for Maternal-Fetal Medicin. ACOG Practice bulletin no. 204: fetal growth restriction. Obstet. Gynecol. 2019; 133(2): e97-109. https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000003070.
  2. Salafia C.M., Minior V.K., Pezzullo J.C., Popek E.J., Rosenkrantz T.S., Vintzileos A.M. Intrauterine growth restriction in infants of less than thirty-two weeks’ gestation: associated placental pathologic features. Am. J. Obstet. Gynecol. 1995; 173(4): 1049-57. https://dx.doi.org/10.1016/0002-9378(95)91325-4.
  3. Lai E.C. Micro RNAs are complementary to 3’ UTR sequence motifs that mediate negative post-transcriptional regulation. Nat. Genet. 2002; 30(4): 363-4. https://dx.doi.org/10.1038/ng865.
  4. Calin G.A., Croce C.M. MicroRNA signatures in human cancers. Nat. Rev. Cancer. 2006; 6(11): 857-66. https://dx.doi.org/10.1038/nrc1997.
  5. Ширшова А.Н., Аушев В.Н., Филипенко М.Л., Кушлинский Н.Е. МикроРНК при онкологических заболеваниях. Молекулярная медицина. 2015; 2: 4-12.
  6. Ивкин Д.Ю., Лисицкий Д.С., Захаров Е.А., Любишин М.М., Карпов А.А., Буркова Н.В., Оковитый С.В., Тюканин А.И. МикроРНК как перспективные диагностические и фармакологические агенты. Астраханский медицинский журнал. 2015; 10(4): 8-24.
  7. Ludwig N., Leidinger P., Becker K., Backes C., Fehlmann T., Pallasch C. et al. Distribution of miRNA expression across human tissues. Nucleic Acids Res. 2016; 44(8): 3865-77. https://dx.doi.org/10.1093/nar/gkw116.
  8. Низяева Н.В., Кан Н.Е., Тютюнник В.Л., Ломова Н.А., Наговицына М.Н., Прозоровская К.Н., Щеголев А.И. МикроРНК как важные диагностичеcкие предвестники развития акушерской патологии. Вестник Российской академии медицинских наук. 2015; 70(4): 484-92.
  9. Hudson T.J., Anderson W., Artez A., Barker A.D., Bell C., Bernabé R.R. et al. International Cancer Genome Consortium. International network of cancer genome projects. Nature. 2010; 464(7291): 993-8. https://dx.doi.org/10.1038/nature08987.
  10. Enquobahrie D.A., Abetew D.F., Sorensen T.K., Willoughby D., Chidambaram K., Williams M.A. Placental microRNA expression in pregnancies complicated by preeclampsia. Am. J. Obstet. Gynecol. 2011; 204(2): 178 . e12-21. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2010.09.004.
  11. Mayor-Lynn K., Toloubeydokhti T., Cruz A.C., Chegini N. Expression profile of microRNAs and mRNAs in human placentas from pregnancies complicated by preeclampsia and preterm labor. Reprod. Sci. 2011; 18(1): 46-56. https://dx.doi.org/10.1177/1933719110374115.
  12. Gilad S., Meiri E., Yogev Y., Benjamin S., Lebanony D., Yerushalmi N. et al. Serum microRNAs are promising novel biomarkers. PLoS One. 2008; 3(9): e3148. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0003148.
  13. Tsochandaridis M., Nasca L., Toga C., Levy-Mozziconacci A. Circulating microRNAs as clinical biomarkers in the predictions of pregnancy complications. Biomed. Res. Int. 2015; 2015: 294954. https://dx.doi.org/10.1155/2015/294954.
  14. Fenton T.R., Kim J.H. A systematic review and meta-analysis to revise the Fenton growth chart for preterm infants. BMC Pediatr. 2013; 13: 59. https://dx.doi.org/10.1186/1471-2431-13-59.
  15. Balcells I., Cirera S., Busk P.K. Specific and sensitive quantitative RT-PCR of miRNAs with DNA primers. BMC Biotechnol. 2011; 11: 70. https://dx.doi.org/10.1186/1472-6750-11-70.
  16. Busk P.K. A tool for design of primers for microRNA-specific quantitative RT-qPCR. BMC Bioinformatics. 2014; 15: 29. https://dx.doi.org/10.1186/1471-2105-15-29.
  17. Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 2001; 25(4): 402-8. https://dx.doi.org/10.1006/meth.2001.1262.
  18. Cai X., Lu S., Zhang Z., Gonzalez C.M., Damania B., Cullen B.R. Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus expresses an array of viral microRNAs in latently infected cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2005; 102(15): 5570-5. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.0408192102.
  19. Gu Y., Sun J., Groome L.J., Wang Y. Differential miRNA expression profiles between the first and third trimester human placentas. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2013; 304(8): E836-43. https://dx.doi.org/10.1152/ajpendo.00660.2012.
  20. Kriegel A.J., Baker M.A., Liu Y., Liu P., Cowley A.W. Jr., Liang M. Endogenous microRNAs in human microvascular endothelial cells regulate mRNAs encoded by hypertension-related genes. Hypertension. 2015; 66(4): 793-9. https://dx.doi.org/10.1161 hypertensionaha.115.05645.
  21. Gródecka-Szwajkiewicz D., Ulańczyk Z., Zagrodnik E., Łuczkowska K., Rogińska D., Kawa M.P. et al. Differential secretion of angiopoietic factors and expression of microRNA in umbilical cord blood from healthy appropriate-for-gestational-age preterm and term newborns – in search of biomarkers of angiogenesis-related processes in preterm birth. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(4): 1305. https://dx.doi.org/10.3390/ijms21041305.
  22. Li D., Yang P., Xiong Q., Song X., Yang X., Liu L. et al. MicroRNA-125a/b-5p inhibits endothelin-1 expression in vascular endothelial cells. J. Hypertens. 2010; 28(8): 1646-54. https://dx.doi.org/10.1097/HJH.0b013e32833a4922.
  23. Гусар В.А., Тимофеева А.В., Кан Н.Е., Чаговец В.В., Ганичкина М.Б., Франкевич В.Е. Профиль экспрессии плацентарных микроРНК – регуляторов окислительного стресса при синдроме задержки роста плода. Акушерство и гинекология. 2019; 1: 74-80.
  24. Yu Q., Lu Z., Tao L., Yang L., Guo Y., Yang Y. et al. ROS-dependent neuroprotective effects of NaHS in ischemia brain injury involves the PARP/AIF pathway. Cell. Physiol. Biochem. 2015; 36(4): 1539-51.https://dx.doi.org/10.1159/000430317.
  25. Hromadnikova I., Kotlabova K., Hympanova L., Krofta L. Cardiovascular and cerebrovascular disease associated microRNAs are dysregulated in placental tissues affected with gestational hypertension, preeclampsia and intrauterine growth restriction. PLoS One. 2015; 10(9): e0138383.https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0138383.
  26. Hromadnikova I., Kotlabova K., Hympanova L., Krofta L. Gestational hypertension, preeclampsia and intrauterine growth restriction induce dysregulation of cardiovascular and cerebrovascular disease associated microRNAs in maternal whole peripheral blood. Thromb. Res. 2016; 137: 126-40. https://dx.doi.org/10.1016/j.thromres.2015.11.032.

Поступила 16.09.2020

Принята в печать 25.12.2020

Об авторах / Для корреспонденции

Кузнецова Наталья Борисовна, д.м.н., профессор Центра симуляционного обучения, ФГБОУ ВО РостГМУ Минздрава России.
Тел.: +7(928)770-97-62. E-mail: lauranb@inbox.ru. 344022, Россия, Ростов-на-Дону, переулок Нахичеванский, д. 29.
Буштырева Ирина Олеговна, д.м.н., профессор, ООО «Клиника профессора Буштыревой». Тел.: +7(863)288-00-00. E-mail: kio4@mail.ru.
344010, Россия, Ростов-на-Дону, пер. Соборный, д. 58/7, литер А.
Забанова Екатерина Андреевна, аспирант, ФГБОУ ВО РостГМУ Минздрава России. Тел.: +7(918)566-88-25. E-mail: rock-fe@mail.ru.
344022, Россия, Ростов-на-Дону, переулок Нахичеванский, д. 29.
Бутенко Елена Викторовна, к.б.н., доцент кафедры генетики, Академия биологии и биотехнологии им. Д.И. Ивановского ЮФУ.
Тел.: +7(909)420-22-23. E-mail: evbutenko@sfedu.ru. 344090, Россия, Ростов-на-Дону, проспект Стачки, д. 194/1.
Покудина Инна Олеговна, к.б.н., с.н.с. лаборатории биомедицины, Академия биологии и биотехнологии им. Д.И. Ивановского ЮФУ.
Тел.: +7(918)504-56-50. E-mail: ipokudina@sfedu.ru. 344090, Россия, Ростов-на-Дону, проспект Стачки, д. 194/1.
Шкурат Татьяна Павловна, д.б.н., профессор, директор НИИ биологии, ФГАОУ ВО «ЮФУ». Тел.: +7(863)243-38-85. E-mail: tshkurat@sfedu.ru.
344090, Россия, Ростов-на-Дону, проспект Стачки, д. 194/1.

Для цитирования: Буштырева И.О., Кузнецова Н.Б., Забанова Е.А., Бутенко Е.В., Покудина И.О., Шкурат Т.П. Экспрессия плацента-специфичных
микроРНК при задержке роста плода.
Акушерство и гинекология. 2021; 2: 128-134
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.2.128-134

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.