Плацентарный мозаицизм при беременности с высоким риском трисомии 16 по результатам полногеномного неинвазивного пренатального ДНК-скрининга анеуплоидий

Барков И.Ю., Шубина Е., Ким Л.В., Большакова А.С., Трофимов Д.Ю., Гольцов А.Ю., Саделов И.О., Парсаданян Н.Г., Булатова Ю.С., Тетруашвили Н.К.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва, Россия
Актуальность: Неинвазивный пренатальный ДНК-скрининг анеуплоидий (НИПС) позволяет с высокой чувствительностью выявлять риск анеуплоидий плода по хромосомам 13, 18, 21, а также по половым хромосомам по плазме крови беременной женщины. Проведение полногеномного НИПС позволяет проводить исследование не только отдельных хромосом, но и всего хромосомного набора человека и выявлять как патологию самого плода, так и мозаичные формы анеуплоидий в тканях плаценты.
Описание: Представлено клиническое наблюдение пациентки 42 лет с ограниченным плацентой мозаицизмом, у которой по данным НИПС был выявлен высокий риск трисомии по хромосоме 16. Цитогенетическое исследование после проведения биопсии хориона показало наличие маркерной хромосомы. По результатам исследования амниотической жидкости у плода установлен нормальный женский кариотип. В сроке беременности 40 недель 2 дня родилась девочка массой 2340 г с нормальным женским кариотипом. Послеродовое исследование плаценты с помощью метода FISH выявило трисомию по хромосоме 16 в 100% исследованных клеток.
Заключение: Данное наблюдение иллюстрирует, что проведение НИПС позволяет выявлять не только наличие анеуплоидий у плода, но и мозаичные формы анеуплоидий в плаценте. В этой связи тактика ведения беременности должна быть определена исходя из результатов дополнительного обследования. Во избежание ложноположительных результатов подтверждающую диагностику после проведения НИПС следует проводить с применением амниоцентеза, а не биопсии хориона.

Ключевые слова

беременность
скрининг
НИПС
НИПТ
ДНК-скрининг
трисомия 16
анеуплоидии
мозаицизм
плацента
угрожающий выкидыш

Неинвазивный пренатальный ДНК-скрининг плода по крови матери (НИПС, НИПТ) – метод, который позволяет с высокой чувствительностью выявлять риск анеуплоидий плода по плазме крови беременной женщины. В настоящее время он все шире применяется в клинической практике, в первую очередь для выявления риска по трисомиям 21, 18 и 13 (синдромы Дауна, Эдвардса и Патау) [1, 2]. Однако, несмотря на высокую точность проводимого исследования, при применении ДНК-скрининга возможны как ложноположительные, так и ложноотрицательные результаты. В частности, это связано с тем, что исследование осложняется наличием значительного количества материнской ДНК, а основным источником плодовой ДНК в кровотоке матери является не сам плод, а клетки трофобласта, имеющие общее с плодом происхождение [3]. Поэтому данный метод не заменяет остальные скрининговые исследования, в первую очередь ультразвуковое, а при выявлении высокого риска хромосомной патологии с помощью НИПС рекомендуется очная консультация врача-генетика. Врачом-генетиком решается вопрос о назначении подтверждающих инвазивных диагностических процедур, которые обычно выполняются с помощью биопсии ворсин хориона или амниоцентеза с применением стандартного цитогенетического исследования кариотипа плода либо посредством молекулярного кариотипирования. В связи с этим применение аббревиатуры НИПС, где «С» обозначает «скрининг», является более предпочтительным по сравнению с термином НИПТ (неинвазивный пренатальный тест), т.к. подчеркивает скрининговый характер проводимого исследования [4].

Проведение НИПС возможно как с помощью таргетного подхода, при котором проводится исследование отдельных хромосом, так и с применением полногеномного подхода, который обычно реализуется с использованием высокопроизводительного секвенирования (NGS). При использовании полногеномного подхода возможно проведение «расширенного» НИПС. Оно подразумевает установление не только риска «частых» анеуплоидий, к которым относят трисомии по хромосомам 21, 18 и 13 и нарушение числа копий половых хромосом, но и выявление редких анеуплоидий, в том числе частичных (крупных делеций и дупликаций), по другим аутосомам. Несмотря на то что рождение живых детей с полной формой редкой анеуплоидии практически не происходит, описаны случаи рождения детей с мозаичными формами анеуплоидий по большинству хромосом. В настоящее время клиническая значимость выявления высокого риска редких анеуплоидий не ясна, и в ряде клинических рекомендаций выявление с помощью НИПС редких анеуплоидий признается нецелесообразным [4, 5]. В то же время вопрос применения расширенного НИПС и обсуждение результатов выявления редких анеуплоидий продолжают оставаться в центре внимания исследователей. Анеуплоидии являются причиной около 60,0% спорадических и 12,5% случаев привычных выкидышей [6, 7]. В этой связи при угрожающем и привычном выкидыше оценка состояния эмбриона и диагностика хромосомных аномалий, которые наследуются от родителей или возникают de novo, являются чрезвычайно актуальными. Беременности плодом с хромосомной патологией часто сопровождаются угрожающим выкидышем, неоднократными кровотечениями, нередко заканчиваются преждевременными родами  [6, 7]. При этом особое значение имеет трисомия по хромосоме 16, поскольку она является наиболее распространенной трисомией при потерях в I триместре и выявляется в более чем 1% клинически подтвержденных беременностей [8, 9].

Полная форма трисомии 16 несовместима с жизнью и обычно приводит к прерыванию беременности в I триместре. В то же время мозаичная форма трисомии 16 во многих случаях является жизнеспособной. При этом выявляемый при биопсии хориона мозаицизм с вовлечением хромосомы 16 оказывается, как правило, ограниченным плацентой и не подтверждается при амниоцентезе [10].

Причиной практически всех беременностей с мозаичной формой трисомии 16 является нерасхождение хромосом в первой стадии материнского мейоза [9]. Дальнейшая утрата одной из хромосом в раннем эмбриогенезе в результате эффекта «trisomy rescue» приводит к возникновению клеточной линии с нормальным, эуплоидным хромосомным набором. При этом данный механизм подразумевает возможность того, что обе полученные плодом хромосомы 16 окажутся от одного из родителей, т.е. будет наблюдаться UPD (однородительская дисомия). Однако, по имеющимся на сегодня данным, бесспорное клиническое значение представляют только однородительские дисомии по хромосомам, имеющим импринтированные регионы, а именно по хромосомам 6, 7, 11, 14, 15 и 20, а на хромосоме 16 патогенных импринтированных генов не выявлено [10, 11].

При проведении инвазивной диагностики мозаичная форма трисомии 16 чаще встречается у плодов женского пола, что объясняется смещением соотношения полов, происходящим в I триместре беременности [8, 9].

Мозаичная трисомия по хромосоме 16 может быть связана с неблагоприятными перинатальными исходами, в т.ч. задержкой роста плода (IUGR), внутриутробной гибелью плода, преэклампсией, преждевременными родами, неонатальной смертью, задержкой развития, врожденными пороками сердца и другими аномалиями [12]. Таким образом, подробный отчет о выявлении случаев трисомии 16 по результатам НИПС необходим для дальнейшего совершенствования методов пренатальной диагностики [12, 13].

В данной работе представлено описание клинического наблюдения, в котором по данным НИПС был выявлен высокий риск трисомии по хромосоме 16.

Клиническое наблюдение

Пациентка С., 42 лет, обратилась в ФГБУ «НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России (далее Центр) на сроке беременности 11 недель 2 дня для проведения скрининга I триместра. Наследственность не отягощена, данная беременность шестая, наступила самостоятельно, индекс массы тела (ИМТ) пациентки 21,3 кг/м2.

Из соматических заболеваний – субклинический гипотиреоз, медикаментозно компенсированный. Супруг здоров. В анамнезе 1 медицинский аборт по желанию, без осложнений, одни самопроизвольные роды в первом браке, в ягодичном предлежании родилась девочка 2880 г, длиной 52 см, здорова. Во втором браке у пациентки было 3 неразвивающиеся беременности в сроках 5–6, 6 и 7–8 недель, в двух случаях проводилось кариотипирование тканей абортивного материала, патология не выявлена.

По данным раннего пренатального скрининга, проведенного в Центре, ультразвуковые маркеры хромосомных аномалий и грубые врожденные пороки развития не выявлены, при копчико-теменном размере плода 47 мм толщина воротникового пространства составляла 1,3 мм, носовые кости определялись. Биохимический скрининг установил пониженный уровень PAPP-A. Значение скорректированных медиан сывороточных показателей крови составили РАРР-А – 0,164 МоМ и β-ХГЧ – 1,033 МоМ соответственно. Комбинированные расчеты риска с помощью программы Астрайя (Astraia) выявили высокие риски хромосомной патологии. Индивидуальный риск трисомии по хромосоме 21 составил 1:35, риск трисомии по хромосоме 18 – 1:42, риск трисомии по хромосоме 13 – 1:102.

В связи с высоким риском хромосомной патологии по результатам скрининга I триместра на сроке беременности 12 недель 4 дня проведена инвазивная пренатальная диагностика посредством аспирации ворсин хориона. Исследование проводилось по месту жительства в ГБУЗ МО МОНИИАГ. Определен кариотип плода 47,ХХ,+mar, т.е. выявлено наличие добавочной маркерной хромосомы. В связи с этим проведен анализ кариотипа родителей, выявлен нормальный женский 46,ХХ и нормальный мужской 46,ХY хромосомный набор.

Перед проведением инвазивной диагностики на сроке беременности 12 недель 3 дня по желанию женщины в Центре осуществлен забор крови на неинвазивный пренатальный ДНК-скрининг. Исследование выполнялось с применением полногеномного подхода, был выявлен высокий риск трисомии по хромосоме 16 у плода женского пола, при этом доля плодовой ДНК составила 8,4% (значительно выше порога чувствительности метода). Риск по остальным хромосомам, включая хромосомы 21, 18 и 13, – низкий.

По данным ультразвукового исследования в сроке беременности 15 недель 4 дня установлено отсутствие аномалий развития плода и плаценты, биометрические показатели плода в пределах нормативных значений для данного срока. Было рекомендовано пролонгировать беременность и продолжить обследование, так как хромосомный дисбаланс мог быть ограничен только плацентой.

В сроке 16 недель 2 дня нами проведена инвазивная пренатальная диагностика посредством амниоцентеза с последующим проведением цитогенетического и молекулярного кариотипирования амниотической жидкости. Молекулярное кариотипирование проводилось по клеткам амниотической жидкости без культивирования, с применением ДНК-микроматриц Optima (Affymetrics, США). Анализируемый образец содержал ДНК с нормальным сбалансированным женским генотипом arr(X,1-22)x2, анеуплоидии, патогенные микроделеции и микродупликации не выявлены, исключена однородительская изодисомия по хромосоме 16.

После проведения культивирования амниоцитов произведен анализ 30 метафаз, во всех был выявлен нормальный женский кариотип 46,ХХ.

В сроке 19–20 недель были проведены плановое ультразвуковое исследование и Эхо-КГ плода, патологии не выявлено.

В сроке 35 недель впервые по УЗИ обнаружено маловодие, по результатам допплерометрии плодово-плацентарный и маточно-плацентарный кровотоки в норме, в сроке беременности 36 недель отмечалась тенденция к маловесному плоду.

В сроке беременности 40 недель 2 дня по совокупности акушерских показаний проведено оперативное родоразрешение. Родилась девочка массой 2340 г (менее 3 перцентили), длиной 46 см, с оценкой по шкале Апгар 8/9 баллов (на 1-й и 5-й минуте соответственно), плацента массой 450 г, овальной формы 20×17×4 см с дополнительной долей 9×9 см. Ребенок выписан из родильного дома на 8-е сутки жизни. Кариотип новорожденного 46,ХХ[30] – нормальный, женский.

По данным гистологического исследования плаценты выявлены обширные афункциональные зоны, свидетельствующие о хронической плацентарной недостаточности. Проведен молекулярно-цитогенетический анализ клеток плаценты методом FISH c использованием зондов KBI-20016R (Kreatech Biotechnology B.V., Нидерланды). Полученные результаты: nuc ish 16(D16Z2x3)[100], т.е. обнаружена трисомия по хромосоме 16 в 100% исследованных клеток.

На момент написания статьи ребенку исполнилось 9 месяцев, его вес составляет 7100 г (на уровне 3 перцентиля), рост 68 см, психомоторное развитие по возрасту.

Обсуждение

Трисомия 16 является одной из наиболее изученных аутосомных аномалий при самопроизвольных выкидышах или неразвивающихся беременностях в I триместре. Полная трисомия 16 несовместима с жизнью, поэтому почти все случаи трисомии 16, выявляемые с помощью НИПС или биопсии ворсин хориона на сроках более 10 недель беременности, имеют мозаичный тип. Клиническая значимость ограниченного плацентой мозаицизма по редким аутосомным трисомиям остается предметом дискуссии на протяжении десятилетий [8, 9, 14, 15]. Присутствие аномальной клеточной линии в плаценте при нормальном кариотипе плода наблюдается в 1–2% всех беременностей [16]. Примерно в 20% случаев с диагностированным мозаицизмом в плаценте наблюдается осложненное течение беременности: преэклампсия, преждевременные роды, задержка роста плода, аномалии развития плода [14, 17, 18]. Большинство авторов сходятся во мнении, что для трисомии по хромосоме 16 имеется четкая корреляция с неблагоприятными перинатальными исходами [12, 13, 19].

В нашем наблюдении мозаицизм по трисомии хромосомы 16 явился причиной хронической плацентарной недостаточности, задержки роста плода.

Сверхчисленная маркерная хромосома диагностируется пренатально примерно в 1 случае на 2000 беременностей [20]. В случае если маркерная хромосома наследуется от фенотипически здоровых родителей, ожидается благоприятный прогноз для плода и новорожденного [21].

В клиническом наблюдении пациентки С. результаты неинвазивного пренатального ДНК-скрининга позволили предположить наличие трисомии по хромосоме 16 (или ее производной) в плаценте, однако оценить истинный кариотип плода представлялось возможным путем проведения амниоцентеза.

Анализ амниотической жидкости с применением молекулярного кариотипирования на ДНК-микроматрицах в случае наличия у плода маркерной хромосомы позволил бы верифицировать, производным от какой хромосомы она является, а также размер хромосомного дисбаланса. Цитогенетическое исследование амниотической жидкости культуральным методом позволило исключить мозаицизм низкого уровня с вовлечением хромосомы 16.

По результатам амниоцентеза был сделан вывод об ограниченном плацентарном мозаицизме. Пациентка была информирована о повышенном риске таких осложнений беременности, как преэклампсия, задержка роста плода, преждевременные роды.

Пациентке были рекомендованы тщательное наблюдение акушера-гинеколога, динамический контроль за состоянием плода (показатели фетометрии, допплерометрии маточных артерий), родоразрешение в стационаре 3-го уровня.

Заключение

В заключение хотелось бы отметить, что ограниченный плацентой мозаицизм является основной причиной дискордантных результатов НИПС и истинного кариотипа плода. В первую очередь это относится к редким анеуплоидиям. По нашему мнению, возможность выявления фетоплацентарного мозаицизма позволяет улучшить тактику ведения беременности. При обнаружении редкой анеуплоидии по данным НИПС требуется консультация врача-генетика для решения вопроса о необходимости назначения инвазивной пренатальной диагностики, проведение экспертного УЗ-мониторинга за состоянием плода, тщательное наблюдение врачом акушером-гинекологом. Подтверждающую инвазивную диагностику в подобных случаях желательно проводить с помощью амниоцентеза, а не биопсии хориона. Исключение однородительских дисомий целесообразно в первую очередь для трисомий по хромосомам 7, 11 и 15, содержащих импринтированные регионы и являющихся причиной таких серьезных генетических заболеваний, как синдромы Рассела–Сильвера, Беквита–Видеманна, Прадера–Вилли и Ангельмана.

Список литературы

  1. Rose N.C., Barrie E.S., Malinowski J., Jenkins G.P., McClain M.R., LaGrave D., Leung M.L.; ACMG Professional Practice and Guidelines Committee. Systematic evidence-based review: The application of noninvasive prenatal screening using cell-free DNA in general-risk pregnancies. Genet. Med. 2022; 24(7): 1379-91. https://dx.doi.org/10.1016/j.gim.2022.03.019.https://dx.doi.org/10.21518/2079-701X-2021-13-138-143.
  2. Калашникова Е.А., Глотов А.С., Андреева Е.Н., Барков И.Ю., Бобровник Г.Ю., Дубровина Е.В., Жученко Л.А. Современное значение неинвазивного пренатального исследования внеклеточной ДНК плода в крови матери и перспективы его применения в системе массового скрининга беременных в Российской Федерации. Журнал акушерства и женских болезней. 2021; 70(1): 19-50.
  3. Alberry M., Maddocks D., Jones M., Abdel Hadi M., Abdel-Fattah S., Avent N., Soothill P.W. Free fetal DNA in maternal plasma in anembryonic pregnancies: confirmation that the origin is the trophoblast. Prenat. Diagn. 2007; 27(5):415-8. https://dx.doi.org/10.1002/pd.1700.
  4. Gregg A.R., Skotko B.G., Benkendorf J.L., Monaghan K.G., Bajaj K., Best R.G. et al. Noninvasive prenatal screening for fetal aneuploidy, 2016 update: a position statement of the American College of Medical Genetics and Genomics. Genet. Med. 2016; 18(10): 1056-65. https://dx.doi.org/10.1038/gim.2016.97.
  5. American College of Obstetricians and Gynecologists’ Committee on Practice Bulletins - Obstetrics; Committee on Genetics; Society for Maternal-Fetal Medicine. Screening for fetal chromosomal abnormalities: ACOG Practice Bulletin, Number 226. Obstet. Gynecol. 2020; 136(4): e48-e69.https://dx.doi.org/10.1097/AOG.0000000000004084.
  6. Савельева Г.М., Сухих Г.Т., Серов В.Н., Радзинский В.Е., ред. Акушерство. Национальное руководство. 2-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2018. 1088с.
  7. Сухих Г.Т., Тетруашвили Н.К., Ким Л.В., Трофимов Д.Ю., Барков И.Ю., Шубина Е.С., Парсаданян Н.Г., Федорова Н.И., Гольцов А.Ю. Неинвазивный пренатальный ДНК-скрининг методом высокопроизводительного секвенирования у беременных с привычным выкидышем. Акушерство и гинекология. 2018; 8: 48-55.
  8. Benn P. Trisomy 16 and trisomy 16 Mosaicism: a review. Am. J. Med. Genet. 1998; 79(2): 121-33.
  9. Yong P.J., Barrett I.J., Kalousek D.K., Robinson W.P. Clinical aspects, prenatal diagnosis, and pathogenesis of trisomy 16 mosaicism. J. Med. Genet. 2003; 40(3):175-82. https://dx.doi.org/10.1136/jmg.40.3.175.
  10. McKinlay Gardner R.J., Amor D.J. Chromosome abnormalities and genetic counseling. Oxford University Press; 2018: 479.
  11. Del Gaudio D., Shinawi M., Astbury C., Tayeh M.K., Deak K.L., Raca G.; ACMG Laboratory Quality Assurance Committee. Diagnostic testing for uniparental disomy: a points to consider statement from the American College of Medical Genetics and Genomics (ACMG). Genet. Med. 2020; 22(7): 1133-41.https://dx.doi.org/10.1038/s41436-020-0782-9.
  12. Sparks T.N., Thao K., Norton M.E. Mosaic trisomy 16: what are the obstetric and long-term childhood outcomes? Genet. Med. 2017; 19(10): 1164-70.https://dx.doi.org/10.1038/gim.2017.23.
  13. Grati F.R., Ferreira J., Benn P., Izzi C., Verdi F., Vercellotti E. et al. Outcomes in pregnancies with a confined placental mosaicism and implications for prenatal screening using cell-free DNA. Genet. Med. 2020; 22(2): 309-16. https://dx.doi.org/10.1038/s41436-019-0630-y.
  14. Kalousek D.K., Vekemans M. Confined placental mosaicism. J. Med. Genet. 1996; 33(7): 529-33. https://dx.doi.org/10.1136/jmg.33.7.529.
  15. Scott F., Bonifacio M., Sandow R., Ellis K., Smet M.E., McLennan A. Rare autosomal trisomies: Important and not so rare. Prenat. Diagn. 2018; 38(10): 765-71. https://dx.doi.org/10.1002/pd.5325.
  16. Wapner R.J. Genetics of stillbirth. Clin. Obstet. Gynecol. 2010; 53(3): 628-34. https://dx.doi.org/10.1097/GRF.0b013e3181ee2793.
  17. Wolstenholme J., Rooney D.E., Davison E.V. Confined placental mosaicism, IUGR, and adverse pregnancy outcome: a controlled retrospective U.K. collaborative survey. Prenat. Diagn. 1994; 14(5): 345-61.https://dx.doi.org/10.1002/pd.1970140505.
  18. Kalousek D.K. The effect of confined placental mosaicism on development of the human aneuploid conceptus. Birth Defects Orig. Artic. Ser. 1993; 29(1): 39-51.
  19. Сивик А.А., Тетруашвили Н.К. Плацентарный мозаицизм и осложнения беременности. Медицинский cовет. 2021; 13: 138-43.
  20. Warburton D. De novo balanced chromosome rearrangements and extra marker chromosomes identified at prenatal diagnosis: clinical significance and distribution of breakpoints. Am. J. Hum. Genet. 1991; 49(5):995-1013.
  21. Brøndum-Nielsen K., Mikkelsen M. A 10-year survey, 1980-1990, of prenatally diagnosed small supernumerary marker chromosomes, identified by FISH analysis. Outcome and follow-up of 14 cases diagnosed in a series of 12,699 prenatal samples. Prenat. Diagn. 1995; 15(7): 615-9. https://dx.doi.org/10.1002/pd.1970150705.

Поступила 05.07.2022

Принята в печать 08.07.2022

Об авторах / Для корреспонденции

Барков Илья Юрьевич, к.м.н., заведующий лабораторией пренатального ДНК-скрининга Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-24-10, i_barkov@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва ул. Ак. Опарина, д. 4.
Шубина Екатерина, к.б.н., заведующий лабораторией биоинформатического анализа геномных данных Института репродуктивной генетики,
НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)531-44-44, e_shubina@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва ул. Ак. Опарина, д. 4.
Ким Людмила Викторовна, к.м.н., врач акушер- гинеколог, 2-е отделение акушерское патологии беременности, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России, +7(916)233- 83-72, kimika@list.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Большакова Анна Сергеевна, врач-генетик отделения клинической генетики Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России, +7(495)438-24-11, a_bolshakova@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Трофимов Дмитрий Юрьевич, д.б.н., профессор РАН, чл.-корр. РАН, директор Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-49-51, d_trofimov@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Гольцов Андрей Юрьевич, н.с. лаборатории молекулярно-генетических методов Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, +7(495)438-24-11, a_goltsov@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Саделов Игорь Олегович, врач-генетик лаборатории анализа геномных данных Института репродуктивной генетики, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России, +7(495)438-24-10, i_sadelov@oparina4.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Парсаданян Нанэ Геворковна, к.м.н., врач акушер- гинеколог, 2-е отделение акушерское патологии беременности, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России, +7(926)330-42-41, nnnpars@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Булатова Юлия Сергеевна, к.м.н., врач акушер-гинеколог, 2-е отделение акушерское патологии беременности, НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России, +7(495)438-14-77, yu.bulatova@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.
Тетруашвили Нана Картлосовна, д.м.н., профессор, заведующая отделением, 2-е отделение акушерское патологии беременности,
НМИЦ АГП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, +7(495)438-14-77, tetrauly@mail.ru, 117997, Россия, Москва, ул. Ак. Опарина, д. 4.

Вклад авторов: Барков И.Ю. – разработка дизайна исследования, сбор клинического материала, обработка, анализ и интерпретация данных, написание текста; Шубина Е. – обзор публикаций по теме статьи, биоинформатический анализ геномных данных; Ким Л.В. – сбор клинического материала, ведение пациенток, написание текста; Большакова А.С. – сбор клинического материала, ведение пациенток, написание текста, проведение молекулярно-генетических исследований; Трофимов Д.Ю. – выбор темы публикации, анализ и интерпретация данных, утверждение рукописи для публикации; Гольцов А.Ю. – проведение молекулярно-генетических исследований, анализ и интерпретация данных; Саделов И.О. – биоинформатический анализ геномных данных, сбор клинического материала; Парсаданян Н.Г., Булатова Ю.С. – сбор клинического материала, ведение пациенток; Тетруашвили Н.К. – разработка дизайна исследования, сбор клинического материала, ведение пациенток, интерпретация результатов исследования, написание текста.
Конфликт интересов: Авторы заявляют об отсутствии возможных конфликтов интересов.
Финансирование: Работа выполнена в рамках государственного задания № Э-2 – 122030300377-6.
Согласие пациентов на публикацию: Пациентка подписала информированное согласие на публикацию своих данных.
Для цитирования: Барков И.Ю., Шубина Е., Ким Л.В., Большакова А.С., Трофимов  Д.Ю., Гольцов А.Ю., Саделов И.О., Парсаданян Н.Г., Булатова Ю.С., Тетруашвили Н.К. Плацентарный мозаицизм при беременности с высоким риском трисомии 16 по результатам полногеномного неинвазивного пренатального ДНК-скрининга анеуплоидий.
Акушерство и гинекология. 2022; 7: 131-136
https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.7.131-136

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.