Mycoplasma hominis как этиологический агент тубоовариального абсцесса и пиосальпинкса. Миф или реальность?
Актуальность. Несмотря на то, что M. hominis принято относить к условно-патогенным микроорганизмам, описано множество клинических случаев с участием M. hominis как единственного микроорганизма в развитии тяжелых воспалительных процессов в легких, межпозвоночных дисках, почках, печени, сердце и головном мозге. Роль M. hominis в развитии воспалительных заболеваний органов малого таза (ВЗОМТ) остается неизученной.Гущин А.Е., Румянцева Т.А., Хайруллина Г.А., Махова Т.И., Духин А.О.
Описание клинических наблюдений. Представлены данные по двум пациенткам, поступившим в стационар для лечения тубоовариального абсцесса и пиосальпинкса. Пациенткам проведено комплексное обследование, выполнена лапароскопия, в ходе которой получен интраоперационный материал, исследованный с применением полимеразной цепной реакции для обнаружения ДНК широкого спектра микроорганизмов. В материале, полученном от двух пациенток с ВЗОМТ, обнаружена ДНК M. hominis в концентрации 108 ГЭ/мл (соответствует суммарной концентрации ДНК бактерий, присутствующих в биоматериале). Других микрооорганизмов в одном случае обнаружено не было, во втором случае их концентрация была ниже таковой M. hominis в 100 и более раз.
Заключение. В двух клинических наблюдениях ВЗОМТ было установлено, что наиболее вероятная этиологическая роль принадлежит M. hominis. Возможная роль M. hominis в развитии ВЗОМТ должна учитываться при построении тактики обследования и лечения пациенток с ВЗОМТ.
Ключевые слова
тубоовариальный абсцесс
пиосальпинкс
Mycoplasma hominis
воспалительные заболевания органов малого таза (ВЗОМТ)
Список литературы
1. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) STD Treatment Guidelines. MMWR Recomm. Rep. 2010; 59: 45.
2. Ross J., Judlin P., Jensen J. 2012 European guideline for the management of pelvic inflammatory disease. Int. J. STD AIDS. 2014;25: 1-7.
3. Yang T.K., Chung C.J., Chung S.D., Muo C.H., Chang C.H., Huang C.Y. Risk of endometrial cancer in women with pelvic inflammatory disease: a nationwide population-based retrospective cohort study. Medicine(Baltimore). 2015; 94(34): e1278. doi: 10.1097/MD.0000000000001278.
4. Ness R.B., Kip K.E., Hillier S.L., Soper D.E., Stamm C.A., Sweet R.L. A cluster analysis of bacterial vaginosis-associated microflora and pelvic inflammatory disease. Am. J. Epidemiol. 2005; 162(6): 585-90.
5. Haggerty C.L., Totten P.A., Tang G., Astete S.G., Ferris M.J., Norori J. et al. Identification of novel microbes associated with pelvic inflammatory disease and infertility. Sex. Transm. Infect. 2016; 92(6): 441-6. doi: 10.1136/sextrans-2015-052285.
6. Hussain S.T., Gordon S.M., Tan C.D., Smedira N.G. Mycoplasma hominis prosthetic valve endocarditis: the value of molecular sequencing in cardiac surgery. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2013; 146(1): e7-9. doi: 10.1016/j.jtcvs.2013.03.039.
7. Vogel U., Lüneberg E., Kuse E.R., Neulinger A.L., Frosch M. Extragenital Mycoplasma hominis infection in two liver transplant recipients. Clin. Infect. Dis. 1997; 24(3): 512-3.
8. Camara B., Mouzin M., Ribes D., Esposito L., Guitard J., Game X. et al. Perihepatitis and perinephric abscess due to Mycoplasma hominis in a kidney transplant patient. Exp. Clin. Transplant. 2007; 5(2): 708-9.
9. Flouzat-Lachaniette C.H., Guidon J., Allain J., Poignard A. An uncommon case of Mycoplasma hominis infection after total disc replacement. Eur. Spine J. 2013; 22(Suppl. 3): S394-8. doi: 10.1007/s00586-012-2511-9.
10. Hos N.J., Bauer C., Liebig T., Plum G., Seifert H., Hampl J. Autoinfection as a cause of postpartum subdural empyema due toMycoplasma hominis. Infection. 2015; 43(2): 241-4. doi: 10.1007/s15010-014-0713-2.
11. Randall C.L., Baetz R.W., Hall D.W., Birtch P.K. The effect of treatment on the incidence of abortion. N. Y. State J. Med. 1950; 50(21):2525-30.
12. Melen B., Gotthardson A. Complement fixation with human pleuropneumonia-like organisms. Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1955; 37(2):196-200.
13. Mardh P.A., Weström L. Tubal and cervical cultures in acute salpingitis with special reference to Mycoplasma hominis and T-strain mycoplasmas. Br. J. Vener. Dis. 1970; 46(3): 179-86.
14. Mardh P.A., Weström L. Antibodies to Mycoplasma hominis in patients with genital infections and in healthy controls. Br. J. Vener. Dis. 1970;46(5): 390-7.
15. Møller B.R., Taylor-Robinson D., Furr P.M., Freundt E.A. Acute upper genital-tract disease in female monkeys provoked experimentally by Mycoplasma genitalium. Br. J. Exp. Pathol. 1985; 66(4): 417-26.
16. Румянцева Т.А., Савочкина Ю.А., Долгова Т.И., Зайцева С.В., Кахерская М.А., Кудрявцева Л.В., Гущин А.Е. Диагностика вульвовагинального кандидоза: сопоставление информативности клинических данных и результатов лабораторных исследований. Акушерство и гинекология. 2015; 3: 55-61.
17. Румянцева Т.А., Варламова А.В., Гущин А.Е., Безруков В.М. Сравнение тестов для количественной оценки Ureaplasma parvum, Ureaplasma urealyticum, Mycoplasma hominis: «Mycoplasma Duo», «Уреаплазма Микротест», «Микоплазма Микротест» и «Флороценоз-Микоплазмы». Клиническая лабораторная диагностика. 2014; 8: 52-7.
18. Rumyantseva T., Golparian D., Nilsson C.S., Johansson E., Falk M., Fredlund H. et al. Evaluation of the new AmpliSens multiplex real-time PCR assay for simultaneous detection of Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma genitalium, and Trichomonas vaginalis. APMIS. 2015; 123(10): 879-86 doi: 10.1111/apm.12430.
19. Rumyantseva T., Shipitsyna E., Guschin A., Unemo M. Evaluation and subsequent optimizations of the quantitative AmpliSens Florocenosis/Bacterial vaginosis-FRT multiplex real-time PCR assay for diagnosis of bacterial vaginosis. APMIS. 2016; Oct 7. doi: 10.1111/apm.12608.
20. Rumyantseva T.A., Bellen G., Savochkina Y.A., Guschin A.E., Donders G.G. Diagnosis of aerobic vaginitis by quantitative real-time PCR. Arch. Gynecol. Obstet. 2016; 294(1): 109-14.
21. Sonnex C. Toll-like receptors and genital tract infection. Int. J. STD AIDS. 2010; 21(3): 153-7.
22. Peltier M.R., Freeman A.J., Mu H.H., Cole B.C. Characterization and partial purification of a macrophage-stimulating factor from Mycoplasma hominis. Am. J. Reprod. Immunol. 2005; 54(6): 342-51.
23. Hasebe A., Mu H.H., Cole B.C. A potential pathogenic factor from Mycoplasma hominis is a TLR2-dependent, macrophage-activating, P50-related adhesin. Am. J. Reprod. Immunol. 2014; 72(3): 285-95. doi: 10.1111/aji.12279.
24. Menard J.P., Fenollar F., Henry M., Bretelle F., Raoult D. Molecular quantification of Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae loads to predict bacterial vaginosis. Clin. Infect. Dis. 2008; 47(1): 33-43. doi: 10.1086/588661.
25. Cox C., Watt A.P., McKenna J.P., Coyle P.V. Mycoplasma hominis and Gardnerella vaginalis display a significant synergistic relationship in bacterial vaginosis. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2016; 35(3): 481-7. doi: 10.1007/s10096-015-2564-x.
26. Hedges S.R., Barrientes F., Desmond R.A., Schwebke J.R. Local and systemic cytokine levels in relation to changes in vaginal flora. J. Infect. Dis. 2006; 193(4): 556-62.
27. Allen-Daniels M.J., Serrano M.G., Pflugner L.P., Fettweis J.M., Prestosa M.A., Koparde V.N. Identification of a gene in Mycoplasma hominis associated with preterm birth and microbial burden in intra-amniotic infection Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 212(6): 779. e1-779. e13.
28. Taylor B.D., Darville T., Ferrell R.E., Ness R.B., Haggerty C.L. Racial variation in toll-like receptor variants among women with pelvic inflammatory disease. J. Infect. Dis. 2013; 207(6): 940-6. doi: 10.1093/infdis/jis922.
Поступила 23.11.2016
Принята в печать 23.12.2016
Об авторах / Для корреспонденции
Гущин Александр Евгеньевич, к.б.н., руководитель лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора.Адрес: 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а. Телефон: 8 (495) 974-96-46, доб. 1122, 8 (916) 144-05-56. E-mail: aguschin1965@pcr.ru
Румянцева Татьяна Андреевна, научный сотрудник лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции; врач акушер-гинеколог Научно-консультативного клинико-диагностического центра ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора.
Адрес: 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а. Телефон: 8 (495) 974-96-46, доб. 1313, 8 (916) 154-70-67. E-mail: Ivanovatatiana86@yandex.ru
Хайруллина Гузель Анваровна, к.б.н., научный сотрудник лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора.
Адрес: 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а. Телефон: 8 (495) 974-96-46, доб. 1108, 8 (916) 070-25-95. E-mail: guzel.khairullina@gmail.com
Махова Тамара Игоревна, м.н.с. лаборатории молекулярной диагностики и эпидемиологии инфекций органов репродукции ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора.
Адрес: 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д. 3а. Телефон: 8 (495) 974-96-46, доб. 1108, 8 (905) 547-12-10. E-mail: tamara.dolgova89@gmail.com
Духин Армен Олегович, д. м. н., профессор кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии медицинского факультета ФГАОУВО РУДН Минобрнауки России. Адрес: 117198, Россия, ул. Миклухо-Маклая, д. 6. Телефон: 8 (495) 787-38-27, 8 (968) 901-30-83. E-mail: aodukhin@mail.ru
Для цитирования: Гущин А.Е., Румянцева Т.А., Хайруллина Г.А.,
Махова Т.И., Духин А.О. Mycoplasma hominis как этиологический агент
тубоовариального абсцесса и пиосальпинкса. Миф или реальность?
Акушерство и гинекология. 2017; 6: 176-82
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.6.176-82.
Также по теме
