Динамика субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови в предгестационной подготовке женщин с привычным выкидышем

Кречетова Л.В., Вторушина В.В., Голубева Е.Л., Сарибегова В.А., Хачатрян Н.А., Агаджанова А.А., Тетруашвили Н.К.

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва
В терапии идиопатического привычного выкидыша особое место занимает предгестационная подготовка, которая может проводиться как путем иммуноцитотерапии (ИЦТ), так и медикаментозными методами (лечение гестагенами).
Цель работы. Исследовать динамику субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови после различных вариантов иммуномодулирующей терапии в процессе предгестационной подготовки женщин с привычным выкидышем аллоиммунного генеза.
Материал и методы. Основная группа исследования состояла из 51 женщины с установленным диагнозом привычного выкидыша неясного (аллоиммунного) генеза. Контрольную группу составили 15 фертильных женщин. Предгестационная подготовка женщинам проводилась по трем схемам –
ИЦТ аллогенными клетками партнеров, ИЦТ совместно с дидрогестероном, медикаментозное лечение дидрогестероном. Оценивали содержание основных субпопуляций иммунокомпетентных T-клеток (СD3+, CD4+, CD8+), В-клеток (CD19+), B1-клеток (CD19+CD5+), NK-клеток (СD56+, СD16+), а также содержание Трег (СD4+CD25highCD127low/-).
Результаты. После проведения ИЦТ происходит значимое увеличение субпопуляции лимфоцитов с фенотипом CD5+CD19+ по отношению к контролю, изменений в содержании остальных субпопуляций не отмечено; в группе ИЦТ в сочетании с дидрогестероном превышение содержания субпопуляций с фенотипом CD56,16+, CD56+ и CD3+CD56,16+ над содержанием в контроле стало значимым, а содержание Трег осталось без изменений. После двух курсов лечения дидрогестероном – без изменений по сравнению с контролем осталось содержание Трег, CD200+, CD19+, CD5+19+, CD3+8+, CD3+CD56,16+-клеток, но значимо увеличилось содержание субпопуляций с фенотипом CD3-CD8+, CD3-CD16+, CD16+, CD56+, CD3-CD56,16+, CD56,16+ и снизилось CD3+, CD3+CD4+.
Заключение. Каждый из видов терапии обладает определенным иммуномодулирующим эффектом, клиническую значимость которого предстоит оценить в последующих исследованиях, проводимых во время беременности.

Ключевые слова

привычный выкидыш
аллоиммунный генез
предгестационная подготовка
иммуноцитотерапия
дидрогестерон
гестагены
фенотип лимфоцитов периферической крови
CD200
Т-регуляторные клетки

Привычная потеря беременности ранних сроков (привычный выкидыш) представляет собой актуальную проблему современного акушерства. Установлено, что женщины с привычным выкидышем составляют группу риска, в которой существенно повышена вероятность развития плацентарной недостаточности, наступления ранних преждевременных родов, задержки роста плода, излития околоплодных вод при недоношенном сроке беременности, отслойки плаценты во втором и третьем триместрах беременности [1, 2].

Поэтому в настоящее время наличие даже двух последовательных выкидышей от одного партнера рассматривается как основание для постановки диагноза «привычный выкидыш», последующего обязательного обследования, в том числе и иммунологического, и оптимизации подготовки к беременности [3].

Особое место занимает идиопатический привычный выкидыш (от 5 до 20% в структуре невынашивания), этиологию которого на настоящий момент связывают с нарушениями функционирования материнской иммунной системы, развивающей неадекватный ответ на отцовские антигены плода, то есть с аллоиммунными причинами [4]. По данным зарубежных авторов, шанс доносить беременность без терапии после трех выкидышей, обусловленных аллоиммунными механизмами, составляет 30%, после четырех – 25%, после пяти – 5% [5, 6]. Своевременная диагностика и назначение иммунокорригирующей терапии составляет основу предгестационной подготовки пациенток с идиопатическим привычным выкидышем.

Одним из вариантов иммуномодулирующей терапии является иммуноцитотерапия (ИЦТ) – иммунизации женщин с привычным выкидышем аллогенными лимфоцитами партнеров. Показано, что ИЦТ в предгестационной подготовке способствует формированию состояния иммунной системы, необходимого для успешной имплантации, а во время беременности – для стимуляции развития плаценты и обеспечения нормального развития эмбриона [7, 8]. ИЦТ широко используется в лечении привычного выкидыша как в России [9, 10], так и за рубежом [11, 12], однако механизмы влияния аллоиммунизации на имплантацию и последующую гестацию остаются неизученными.

Много внимания в мире уделяется изучению иммуномодулирующего действия прогестерона на развитие и течение беременности. Эффекты иммуномодуляции прогестерона связывают с индукцией образования активированными лимфоцитами прогестрон-индуцированного блокирующего фактора (ПИБФ). ПИБФ – важный иммуномодуляторный белок, способствующий формированию иммунологического фона, поддерживающего внутриутробное развитие полуаллогенного плода. Среди биологических эффектов ПИБФ – снижение цитолитической активности НК-клеток через блокирование экзоцитоза перфорина и ингибирование интерферона-γ, фактора некроза опухоли-α и интерлейкин-2-опосредованной трансформации НК-клеток в активированные киллерные клетки и активация Jak1 и STAT6 сигнального пути, поддерживающего Th2-тип цитокиновой продукции [13]. Представленные данные указывают на значимость прогестерон-зависимой иммуномодуляции в формировании толерантности иммунной системы матери к антигенам плода [14].

Эндогенным стимулом для увеличения секреции ПИБФ служат события, происходящие сразу после имплантации [15]. ПИБФ необходим для нормального протекания беременности, являясь медиатором с антиабортивной активностью. Низкий уровень сывороточного ПИБФ ассоциирован с потерями беременности в первом триместре или с преждевременными родами до 34 недель гестации [16, 17].

Экзогенным стимулом для синтеза ПИБФ является стресс и аллогенный стимул. Например, переливание крови или пересадка печени также увеличивают экспрессию рецепторов к прогестерону [18]. Данный факт явился обоснованием создания третьего типа иммунотерапии привычного выкидыша неясного генеза – сочетание ИЦТ и приема прогестероновых препаратов, например, дидрогестерона [19].

Оценка клеточных субпопуляций периферической крови – необходимая составляющая анализа эффектов иммунокорригирующей терапии, поскольку главной целью такой терапии рассматривается подавление агрессивных эффекторных реакций, связанных, в первую очередь, с увеличенным содержанием в периферической крови пациенток с привычным выкидышем субпопуляций клеток с естественной киллерной активностью.

Киллерные клетки с фенотипом CD56+, CD16+, CD3-CD56,16+, CD3-CD8+ являются клетками врожденного иммунитета. Цитотоксические клетки, появляющиеся в эффекторной фазе иммунного ответа и имеющие фенотип CD3+CD8+ и CD3+CD56,16+, относят к клеткам адаптивного иммунитета. Пред­полагается, что в генезе привычного выкидыша большую роль играет нарушение взаимодействий НК-клеток (CD56+, CD16+) и клеток адаптивного иммунитета. Однако, несмотря на довольно продолжительный период изучения НК-клеток периферической крови в генезе привычного выкидыша, значимость их оценки для прогноза ранней беременности остается невыясненной [20].

Особую значимость в последнем десятилетии приобрели исследования субпопуляции Т-регуляторных клеток с фенотипом CD4+CD25+ и конститутивной экспрессией фактора Foхр3 (Т-рег). Считается, что осуществляемая Т-рег специфическая иммуносупрессия способствует формированию состояния толерантности, необходимого для реализации гестационных процессов в первом триместре беременности [21]. В связи с этим обсуждается точка зрения, что целью иммунотерапии должна быть не иммуносупрессия, а стимуляция толерантности к аллоантигенам плода отцовского происхождения [22].

Показано, что важная роль в иммунорегуляции принадлежит толерогенной молекуле СD200. В результате взаимодействия CD200 с рецепторами как дендритных клеток, так и клеток с естественной киллерной активностью, индуцируется секреция индоламиндиоксигеназы, и они приобретают способность посредством продукции трансформирующего фактора роста-β стимулировать генерацию Трег, соответственно, индуцировать формирование специфической периферической толерантности [23–26].

Исследований, посвященных одновременной оценке динамики субпопуляций лимфоцитов периферической крови, включая субпопуляции с киллерной активностью, Трег и CD200+-клеток, в течение предгестационной иммунотерапии с использованием ИЦТ или дидрогестерона как монотерапии, а также сочетания дидрогестерона с ИЦТ, не проводилось.

Целью работы было исследование динамики субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови после различных вариантов иммуномодулирующей терапии в процессе предгестационной подготовки женщин с привычным выкидышем аллоиммунного генеза.

Материал и методы исследования

Основная группа исследования состояла из 51 женщины с двумя и более потерями беременности от одного партнера в анамнезе (если в каждом случае был подтвержден нормальный кариотип плода), произошедшими в первом триместре беременности, с установленным диагнозом привычного выкидыша неясного (аллоиммунного) генеза.

Критериями включения женщин в исследование явились: подписание формы информированного согласия на участие в исследовании, возраст женщины от 20 до 40 лет, самопроизвольное наступление беременностей, нормальный кариотип обоих партнеров, нормозооспермия у партнера, отсутствие анатомических, генетически обусловленных, аутоиммунных, гормональных нарушений, препятствующих наступлению и вынашиванию беременности, отсутствие тяжелых экстрагенитальных заболеваний.

Предгестационная подготовка женщинам проводилась по трем схемам. Первой группе была назначена процедура ИЦТ – иммунизация женщин аллогенными клетками партнеров (1-я основная группа, n=24). Второй группе была назначена процедура ИЦТ совместно с дидрогестероном (2-я основная группа, n=17). Третьей группе пациенток был назначен дидрогестерон (3-я основная группа, n=10). Пациентки были разделены по группам случайным образом.

ИЦТ проводили дважды с интервалом в один месяц на 5–9-й день менструального цикла. При этом пациенткам подкожно вводили 50 млн клеток лейкоцитарной взвеси партнера в ладонную поверхность предплечья в 10–12 точек.

В контрольной группе было обследовано вне беременности 15 фертильных женщин без соматических заболеваний с неотягощенным акушерско-гинекологическим анамнезом, имеющих одного ребенка не старше 2 лет или более одного ребенка, последний из которых не старше 2 лет.

Дидрогестерон назначался в дозе по 10 мг 2 раза в день с 14-го по 25-й день менструального цикла, как минимум за 2 месяца до зачатия.

Кровь у женщин 1-й и 2-й групп для анализа забирали натощак из локтевой вены до иммунизации и после каждого введения клеток на 18–22-й день менструального цикла; у женщин 3-й группы – до назначения дидрогестерона и после 2 курсов дидрогестерона также на 18–22-й день менструального цикла.

Поверхностный фенотип клеток периферической крови определяли с помощью стандартного набора моноклональных антител (мАт), меченных флуоресцеин-изотиоцианатом (FITC) или фикоэритрином (PE), против антигенов CD3, CD4, CD5, CD8, CD16, CD19, CD16, CD56, CD200 (Becton Dickinson и eBioscience, США). Оценивали содержание основных субпопуляций иммунокомпетентных T-клеток (СD3+, CD4+, CD8+), В-клеток (CD19+), B1-клеток (CD19+CD5+), NK-клеток (СD56+, СD16+), а также содержание Т-рег (СD4+CD25highCD127low/-). Лимфоцитарный гейт, позволяющий исключить из анализа другие клетки крови, выявляли с помощью мАт к СD45, меченных перидинин-хлорофилл протеином (Per-CP) (Dako, Дания). Для оценки процентного содержания Т-рег использовали набор, содержащий моноклональные антитела к антигенам CD4, меченые Per-CP (eBioscience, США), CD25, меченые FITC (Becton Dickinson, США) и СD127, меченые PE (eBioscience, США). Моноклональные антитела добавляли непосредственно к цельной крови, затем лизировали с помощью раствора FACS Lysing Solution (Becton Dickinson, США). Анализ проводили с использованием проточного цитофлуориметра FACSСalibur (Becton Dickinson, США).

Статистическую обработку данных производили общепринятыми методами вариационной статистики. Данные представлены как среднее±ошибка среднего. Соответствие расчетных выборок показателей нормальному распределению оценивали с помощью критерия Колмогорова–Смирнова с использованием пакета Statistica 6 для Windows XP. Значимость наблюдаемых отклонений средних значений измеренных параметров оценивали с помощью двухвыборочного t-критерия Стьюдента с различными дисперсиями для средних значений с использованием пакета статистического анализа для Microsoft Office Excel 2007.

Результаты исследования

Было проанализировано содержание лимфоцитов различных фенотипов в периферической крови женщин с привычным выкидышем трех основных групп до назначения соответствующего лечения. Результаты исследования представлены в табл. 1.

Как видно из представленных данных, содержание исследованных субпопуляций во 2-й и 3-й группах до проведения предгестационной подготовки не отличалось, все отмеченные различия были от содержания субпопуляций в 1-й группе. Обращает на себя внимание меньшее, чем в первой группе, содержание субпопуляций с киллерной активностью (CD56+, SCD16+, CD3-CD56,16+, SCD56,16+, CD3-CD8+), меньшее содержание CD200+-клеток, большее содержание Трег и общей популяции CD3+.

Содержание лимфоцитов различных фенотипов в периферической крови женщин с привычным выкидышем после проведения предгестационной подготовки представлены в табл. 2.

После проведенной предгестационной подготовки различия во 2-й и 3-й группах по сравнению с 1-й группой и между собой по содержанию Трег и CD200+-клеток остались без изменений. Во 2-й группе минимальным по сравнению с другими группами оказалось содержание субпопуляций с киллерной активностью и фенотипом CD3-CD8+ и CD3-CD56,16+ и максимальным – общее содержание клеток фенотипом CD3+. Содержание лимфоцитов с киллерной активностью и фенотипом CD3+CD56,16+ стало одинаковым в группах с использованием ИЦТ (и 1-й, и 2-й) и минимальным – в группе с дидрогестероном.

На диаграммах (рис. 1) представлены результаты анализа содержания субпопуляций лимфоцитов после предгестационной подготовки в каждой группе по отношению к исходному содержанию субпопуляций.

Из представленных данных видно, что в 1-й и 2-й группах значимых отличий от исходного уровня не зарегистрировано, а в 3-й группе зарегистрировано значимое увеличение содержания субпопуляций с киллерной активностью (CD3-CD16+, CD16+, CD56+, CD3-CD56,16+, CD56,16+).

На диаграммах (рис. 2) представлены результаты анализа в каждой группе до предгестационной терапии (цифра 1 на рисунке) и после нее (цифра 2 на рисунке) по отношению к содержанию тех же субпопуляций в контрольной группе фертильных женщин.

Из представленных данных видно, что в 1-й группе пациенток (диаграммы А-1 и А-2) после иммунотерапии произошло значимое увеличение субпопуляции лимфоцитов с фенотипом CD5+CD19+ по отношению к контролю, изменений в содержании остальных субпопуляций не было.

Во 2-й группе (диаграммы Б-1 и Б-2) после предгестационной подготовки превышение содержания субпопуляций с фенотипом CD56,16+, CD56+ и CD3+CD56,16+ над содержанием в контроле стало значимым, а содержание Трег осталось без изменений.

В 3-й группе (диаграммы В-1 и В-2) исходный уровень субпопуляций до начала иммунотерапии не отличался от содержания в контроле. После 2 курсов дидрогестерона без изменений по сравнению с контролем осталось содержание Т-рег, CD200+, CD19+, CD5+19+, CD3+8+, CD3+CD56,16+ -клеток, но значимо увеличилось содержание субпопуляций с фенотипом CD3-CD8+, CD3-CD16+, CD16+, CD56+, CD3-CD56,16+, CD56,16+ и снизилось – CD3+, CD3+CD4+.

Обсуждение

Использование иммуномодулирующей терапии для лечения привычного выкидыша аллоиммунного генеза не вызывает сомнений, и различные варианты ее использования насчитывают более чем 30-летнюю историю. Основным мотивом ее назначения служат теоретические предпосылки, рассматривающие плод как аллогенный трансплантат и объясняющие иммунные взаимоотношения материнской иммунной системы и плода с позиций достаточности или недостаточности снижения агрессивности реакций со стороны материнского организма. В этой связи эффективность иммуномодулирующей терапии связывают с формированием противовоспалительной направленности материнского иммунного ответа на отцовские антигены плода. Следовательно, успех иммунокоррекции выражается, прежде всего, в снижении содержания субпопуляций с естественной киллерной активностью, а также в продукции активированными клетками цитокинов Th2-типа, способствующими развитию гуморального, антительного иммунного ответа на аллоантигены.

В данной работе оценивалось соотношение субпопуляций лимфоцитов в периферической крови пациенток с привычным выкидышем аллоиммунного генеза после трех схем предгестационной подготовки с использованием различных вариантов иммунотерапии – ИЦТ, дидрогестерона и их сочетания. Обращает на себя внимание, что изначально, до назначения иммунотерапии, исследуемые группы пациентов (1-я, 2-я, 3-я) отличались по субпопуляционному составу лимфоцитов периферической крови, причем в группе с ИЦТ у пациентов были большие значения в содержании киллерных субпопуляций и CD200+-клеток, но меньшие – в содержании Трег. После проведения иммунотерапии выявленные закономерности практически не изменились. Изменения выявлены по отношению к исходным значениям и по отношению к содержанию субпопуляций в контрольной группе фертильных женщин.

Оказалось, что после ИЦТ изменений в содержании субпопуляций не выявлено, кроме увеличения субпопуляции лимфоцитов с фенотипом CD5+CD19+ по отношению к контролю, что может свидетельствовать о влиянии иммунизации на состояние гуморального иммунитета. Известно, что большинство антител, секретируемых CD5+CD19+-лимфоцитами, специфично к собственным белкам организма (ДНК, антигенам групп крови и др.) и многие из них полиреактивны. В норме эти антитела имеют низкое сродство к антигенам, включая аутоантигены, и не способны вызывать повреждение тканей. Признаком активации В-клеточного звена иммунитета является также появление антиотцовских антилейкоцитарных антител в крови пациенток после иммунизации [22, 27].

После предгестационной подготовки с использованием ИЦТ в сочетании с дидрогестероном по отношению к контролю увеличилось содержание только субпопуляций с фенотипом CD56,16+, CD56+ и CD3+CD56,16+, без изменений в содержании субпопуляции B1-лимфоцитов, что может отражать разное состояние иммунной системы пациенток после ИЦТ и после ИЦТ в сочетании с дидрогестероном.

Иммуномодулирующий эффект дидрогестерона в качестве монотерапии был выражен значительнее, чем ИЦТ и сочетания ИЦТ с дидрогестероном, поскольку после предгестационной подготовки с использованием дидрогестерона изменения коснулись всего спектра основных субпопуляций лимфоцитов. По отношению к исходному уровню наблюдалось увеличение содержания киллеров с фенотипом CD3-CD16+, CD16+, CD56+, CD3-CD56,16+, CD56,16+ без драматических изменений в содержании Трег и CD200+-клеток. По отношению к контролю выявлено увеличение, в дополнение к перечисленным киллерным субпопуляциям, клеток с фенотипом CD3-CD8+, снижение содержания общей популяции CD3+Т-лимфоцитов, популяции хелперных клеток CD3+CD4+ и отсутствие изменений в содержании Т-рег, CD200+, CD19+, CD5+19+, CD3+8+, CD3+CD56,16+ -клеток.

Резонно отметить, что активационное состояние лимфоцитов периферической крови пациенток с привычным выкидышем вне беременности отличается от такового при беременности, поскольку ранние сигналы от оплодотворенной яйцеклетки, продвигающейся к месту имплантации, служат эндогенным стимулом для увеличения рецепторов к прогестерону на лимфоцитах и к продукции ПИБФ. Именно с ПИБФ связывают иммуномодулирующие эффекты гестагенных препаратов. Иммунизация клетками полового партнера является тем аллогенным стимулом, который должен влиять на активационное состояние лимфоцитов, и, следовательно, на состояние рецепторов к прогестерону. Однако отсутствие изменений в субпопуляционном составе лимфоцитов в группах с ИЦТ (и 1-й, и 2-й) по отношению к исходным значениям позволяет предположить, что такое влияние не имеет такого биологического эффекта, какой наблюдается во время беременности. При наступлении беременности терапия привычного выкидыша обоснованно включает сочетание ИЦТ и гестагенных препаратов. В результате вне зависимости от типа предгестационной подготовки все пациенты в I триместре получают два курса ИЦТ в сочетании с лечением дидрогестероном.

Заключение

Все вышеизложенное позволяет оценить влияние различных видов предгестационной подготовки на субпопуляционный состав лимфоцитов периферической крови у женщин с привычным выкидышем аллоиммунного генеза. Показано, что каждый из видов терапии обладает определенным иммуномодулирующим эффектом, клиническую значимость которого предстоит оценить в последующих исследованиях, проводимых во время беременности.

Список литературы

1. Saraswat L., Bhattacharya S., Maheshwari A., Bhattacharya S. Maternal and perinatal outcome in women with threatened miscarriage in the first trimester: a systematic review. BJOG. 2010; 117(3): 245-57.

2. van Oppenraaij R.H., Jauniaux E., Christiansen O.B., Horcajadas J.A., Farquharson R.G., Exalto N.; ESHRE Special Interest Group for Early Pregnancy (SIGEP). Predicting adverse obstetric outcome after early pregnancy events and complications: a review. Hum. Reprod. Update. 2009; 15(4):409-21.

3. Сидельникова В.М., Сухих Г.Т. Невынашивание беременности. Руководство для практикующих врачей. М.: МИА; 2011. 516с.

4. Carp Howard J.A., ed. Recurrent pregnancy loss: causes, controversies and treatment. Informa UK ltd.; 2007. 290p.

5. Chong P.J., Matzner W.L., Ching W.T. Benefit of leukocyte immunizations? Fertil. Steril. 1993; 59(1): 247-9.

6. Chong P.J., Matzner W.L., Ching W.T. Controversy about immunotherapy. Fertil. Steril. 1993; 59(5): 1138-9.

7. Сухих Г.Т., Ванько Л.В. Иммунология беременности. М.: Издательство РАМН; 2003. 400с.

8. Посиссева Л.В., Малышкина А.И., Бойко Е.Л., Сотникова Н.Ю., Перетятко Л.П., Фетисова И.Н. Реабилитация репродуктивного здоровья супружеских пар с невынашиванием беременности. Иваново: «Изд-во Иваново»; 2008. 240с.

9. Петросян Л.А. Оптимизация лимфоцитоиммунотерапии в лечении привычной потери беременности первого триместра: автореф. дисс. … канд. мед. наук. М.; 2009. 24с.

10. Khonina N.A., Broitman E.V., Shevela E.Y., Pasman N.M., Chernykh E.R. Mixed lymphocyte reaction blocking factors (MLR-Bf) as potential biomarker for indication and efficacy of paternal lymphocyte immunization in recurrent spontaneous abortion. Arch. Gynecol. Obstet. 2013; 288(4): 933-7.

11. Nonaka T., Takakuwa K., Ooki I., Akashi M., Yokoo T., Kikuchi A, Tanaka K. Results of immunotherapy for patients with unexplained primary recurrent abortions--prospective non-randomized cohort study. Am. J. Reprod. Immunol. 2007; 58(6): 530-6.

12. Recurrent Miscarriage Immunotherapy Trialists Group. Worldwide collaborative observational study and meta-analysis on allogenic leukocyte immunotherapy for recurrent spontaneous abortion. Am. J. Reprod Immunol. 1994; 32(3): 255.

13. Raghupathy R., Al-Mutawa E., Al-Azemi M., Makhseed M., Azizieh F., Szekeres-Bartho J. Progesterone-induced blocking factor (PIBF) modulates cytokine production by lymphocytes from women with recurrent miscarriage or preterm delivery. J. Reprod. Immunol. 2009; 80(1-2): 91-9.

14. Arck P., Hansen P.J., Mulac Jericevic B., Piccinni M.P., Szekeres-Bartho J. Progesterone during pregnancy: endocrine-immune cross talk in mammalian species and the role of stress. Am. J. Reprod. Immunol. 2007; 58(3): 268-79.

15. Check J.H., Szekeres-Bartho J., O’Shaughnessy A. Progesterone induced blocking factor seen in pregnancy lymphocytes soon after implantation. Am. J. Reprod. Immunol. 1996; 35(3): 277-80.

16. Ku C.W., Allen J.C. Jr., Malhotra R., Chong H.C., Tan N.S., Østbye T. et al. How can we better predict the risk of spontaneous miscarriage among women experiencing threatened miscarriage? Gynecol. Endocrinol. 2015; 31(8): 647-51.

17. Hudić I., Stray-Pedersen B., Szekeres-Bartho J., Fatušić Z., Dizdarević-Hudić L., Tomić V. et al. Maternal serum progesterone-induced blocking factor (PIBF) in the prediction of preterm birth. J. Reprod. Immunol. 2015;109: 36-40.

18. Szekeres-Bartho J., Weill B.J., Mike G., Houssin D., Chaouat G. Progesterone receptors in lymphocytes of liver-transplanted and transfused patients. Immunol. Lett. 1989; 22(4): 259-61.

19. Сидельникова В.М. Подготовка и ведение беременности у женщин с привычным невынашиванием. Методические пособия и клинические рекомендации. М.: МЕДпресс-информ; 2011. 224с.

20. Chaouat G. Inflammation, NK cells and implantation: friend and foe (the good, the bad and the ugly?): replacing placental viviparity in an evolutionary perspective. J. Reprod. Immunol. 2013; 97(1): 2-13.

21. Saito S., Shima T., Nakashima A., Shiozaki A., Ito M., Sasaki Y. What is the role of regulatory T cells in the success of implantation and early pregnancy? J. Assist. Reprod. Genet. 2007; 24(9): 379-86.

22. Williams Zev. Inducing tolerance to pregnancy. N. Engl. J. Med. 2012; 367(12): 1159-61.

23. Vacca P., Cantoni C., Vitale M., Prato C., Canegallo F., Fenoglio D. et al. Crosstalk between decidual NK and CD14+ myelomonocytic cells results in induction of Tregs and immunosuppression. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010; 107(26): 11918-23.

24. Trabanelli S., Ocadlikova D., Evangelisti C., Parisi S., Curti A. Induction of regulatory T Cells by dendritic cells through indoleamine 2,3-dioxygenase: a potent mechanism of acquired peripheral tolerance. Curr. Med. Chem. 2011; 18(15): 2234-9.

25. Clark D.A., Wong K., Banwatt D., Chen Z., Liu J., Lee L. et al. CD200-dependent and nonCD200-dependent pathways of NK cell suppression by human IVIG. J. Assist. Reprod. Genet. 2008; 25(2-3):67-72.

26. Clark D.A. Cell surface CD200 may predict efficacy of paternal mononuclear leukocyte immunotherapy in treatment of human recurrent pregnancy loss. Am. J. Reprod. Immunol. 2009; 61: 75-84.

27. Krechetova L.V., Nikolaeva M.A., Van’ko L.V., Ziganshina M.M., Golubeva E.L., Stepanova E.O., Sukhikh G.T. Optimal detection of serum antipaternal antileukocytic antibodies after injection of allogenic lymphocytes in woman with habitual abortions. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2012; 153(5): 726-9.

Поступила 25.04.2017

Принята в печать 28.04.2017

Об авторах / Для корреспонденции

Кречетова Любовь Валентиновна, к.м.н., с.н.с., зав. лабораторией лаборатории клинической иммунологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-11-83. E-mail: k_l_v_@mail.ru
Вторушина Валентина Валентиновна, к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-11-83. E-mail: vtorushina@inbox.ru
Голубева Елена Львовна, к.м.н., врач-лаборант лаборатории клинической иммунологии ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-11-83. E-mail: e_golubeva@oparina4.ru
Хачатрян Нелли Артуровна, аспирант, 2-е отделение акушерское патологии беременности ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-14-77. E-mail: nelly1986@mail.ru
Сарибегова Виктория Александровна, аспирант, 2-е отделение акушерское патологии беременности ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-14-77. E-mail: saribegova_v@rambler.ru
Агаджанова Анна Арамовна, в.н.с. 2-го отделения акушерского патологии беременности ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России.
Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-14-77. E-mail: aagadjanova@mail.ru
Тетруашвили Нана Картлосовна, д.м.н., профессор, зав. 2-м отделением акушерским патологии беременности ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова
Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (495) 438-11-83. E-mail: n_tetruashvili@oparina4.ru

Для цитирования: Кречетова Л.В., Вторушина В.В., Голубева Е.Л., Сарибегова В.А., Хачатрян Н.А., Агаджанова А.А., Тетруашвили Н.К. Динамика субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови в предгестационной подготовке женщин с привычным выкидышем. Акушерство и гинекология. 2017; 6: 55-63.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.6.55-63

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.